Diéguez FL, Borge PM, Rodríguez SMA, Vásquez BYE, Alarcón-Elbal PM

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 1-11
Archivo PDF: 310.97 Kb.

RESUMEN

Introducción: A nivel mundial, Aedes aegypti es el culícido más importante en cuanto a la transmisión de arbovirus de impacto en salud pública.
Objetivo: Profundizar en los conocimientos ecológicos de Ae. aegypti en República Dominicana, a través de los recipientes o contenedores que utiliza para desarrollar sus formas preimaginales.
Métodos: El estudio se extendió desde octubre a diciembre de 2017. Se muestrearon aleatoriamente 100 viviendas, en las que se revisaron todos los recipientes con potencialidad para albergar larvas y/o pupas de mosquitos, dentro y fuera del domicilio. Se cuantificó el tipo y total de cada depósito positivo según su ubicación en cada vivienda, para calcular el porcentaje de representatividad, junto al Índice Pupal por Depósitos específicos (IPDe) para cada receptáculo con pupas.
Resultados: Se detectó presencia de Ae. aegypti en el 41 % de las casas visitadas. De los 419 recipientes analizados, 74 resultaron positivos a larvas y/o pupas (17,66 %). Se clasificaron 28 tipos de depósitos atendiendo a su función y material. Cuantitativamente, los depósitos permanentes fueron los más representativos con un 54,05 %. Las mayores capturas se realizaron en el peridomicilio. El tanque plástico fue el más relevante, pues aportó el 28,37 % del total de depósitos positivos, así como un elevado IPDe.
Conclusiones: Los resultados evidencian elevados niveles de infestación en los domicilios de Jarabacoa que deben ser controlados a fin de disminuir el riesgo en la transmisión de arbovirosis. El control de los recipientes artificiales, como los contenedores desechables, los neumáticos y sobre todo los tanques de agua, es la piedra angular de cualquier esfuerzo para prevenir estas enfermedades.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Alarcón-Elbal PM, Paulino-Ramírez R, Diéguez-Fernández L, Fimia-Duarte R, Guerrero KA, González M. Arbovirosis transmitidas por mosquitos (Diptera: Culicidae) en la República Dominicana: Una revisión. The Biologist. 2017;15(1):193-219.

2. Dirección General de Epidemiología (DGE), Ministerio de Salud Pública. Boletín Epidemiológico 52-2013. Santo Domingo: Ministerio de Salud Pública. 2013. p. 9. [citado 8 Ago 2018]. Disponible en: http://digepisalud.gob.do/documentos/?drawer=Boletines%20epidemiologicos*Boletines%20semanales*2009-2015

3. OPS/OMS 2015. Chikungunya: Datos, mapas y estadísticas de OPS/OMS. 2014. p. 1. [citado 8 Ago 2018]. Disponible en: https://www.paho.org/hq/dmdocuments/2014/2014-dic-29-cha-CHIKV-casos-se-52.pdf

4. Freitas ARR, Alarcón-Elbal PM, Paulino-Ramírez R, Donalisio MR. Excess mortality profile during the Asian genotype chikungunya epidemic in the Dominican Republic, 2014. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2018; doi: 10.1093/trstmh/try072.

5. PAHO/WHO, 2016. Zika - Actualización Epidemiológica. 20 de octubre de 2016. p. 4. [citado 8 Ago 2018]. Disponible en: https://www.paho.org/hq/dmdocuments/2016/2016-oct-20-phe-actualizacion-epi-virus-zika.pdf

6. Colome-Hidalgo M, Skewes-Ramm R, Herrera-Morban D, Gil-Fernández M, Donado-Campos J. Análisis del sistema de vigilancia de microcefalia - República Dominicana, 2016-2017. Rev SaludJalisco. 2018; Nº Especial:67-73.

7. Parks W, Lloyd L. Planificación de la movilización y comunicación social para la prevención y el control del dengue. Guía paso a paso. OMS/WMC/OPS/TDR. Ginebra: OMS-OPS. 2004. p. 145. [citado 8 Ago 2018]. Disponible en: https://www.who.int/tdr/publications/documents/planificacion_dengue.pdf

8. Borge de Prada M, Rodríguez-Sosa MA, Vásquez-Bautista YE, Guerrero KA, Alarcón-Elbal PM. Mosquitos (Diptera, Culicidae) de importancia médica asociados a residuos sólidos urbanos en Jarabacoa, República Dominicana. Rev Salud Jalisco. 2018; Nº Especial:20-27.

9. González Broche R. Culícidos de Cuba. La Habana: Editorial Científico-Técnico. 2006. p. 184.

10. González MA, Rodríguez Sosa MA, Vásquez Bautista YE, Diéguez Fernández L, Borge de Prada M, Guerrero KA, et al. Micro-environmental features associated to container-dwelling mosquitoes (Diptera: Culicidae) in an urban cemetery of the Dominican Republic. Rev Biol Trop. 2019;67(1):132-45.

11. Rodríguez Sosa MA, Rueda J, Vásquez Bautista YE, Fimia-Duarte R, Borge de Prada M, Guerrero KA, et al. Diversidad de mosquitos (Diptera: Culicidae) de Jarabacoa, República Dominicana. Graellsia. 2019;75(1):e084.

12. Rey J, Lounibos P. Ecología de Aedes aegypti y Aedes albopictus en América y transmisión de enfermedades. Biomedica. 2015;35(2):177-85.

13. Lounibos LP. Habitat segregation among African treehole mosquitoes. Ecol Entomol. 1981;6:129-54.

14. Martín Díaz I, Fuster Callaba C, French Pacheco L, Marquetti Fernández MC. Vigilancia entomológica con énfasis en Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en campos de desplazados en Haití, 2010-2011. Rev Cubana Med Trop. 2014;66(2):228-40.

15. Bisset JA, Marquetti MC, Suárez S, Rodríguez MM. Application of the pupal/demographic survey methodology in an area of Havana, Cuba, with low densities of Aedes aegypti (L). Annals Trop Med Parasitol. 2006;100(Suppl.1):545-51.

16. Marquetti MC, Leyva M, Bisset J, García, A. Recipientes asociados a la infestación por Aedes aegypti en el municipio La Lisa. Rev Cubana Med Trop. 2009;61(3):232-8.

17. Diéguez L, Cabrera SM, Prada Y, Cruz C, Rodríguez R. Aedes (St.) aegypti en tanques bajos y sus implicaciones para el control del dengue en Camagüey. Rev Cubana Med Trop. 2010;62(2):93-7.

18. Diéguez L, García JA, Alarcón-Elbal PM, Rodríguez RA, San Martín JL. Reporte de reservorios domiciliares de agua colonizados por Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762) en un área de Camagüey (Cuba). An Biol. 2014;36:85-92.

19. Diéguez L, Pino R, Andrés J, Hernández A, Alarcón-Elbal PM, San Martín JL. Actualización de los hábitats larvarios de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en Camagüey, Cuba. Rev Biol Trop. 2017;64(4):1487-93.

20. Chadee DD. Dengue cases and Aedes aegypti indices in Trinidad, West Indies. Acta Tropica. 2009;112:174-80.

21. Vinicio M, Rodríguez J, Diéguez L, Yax PM, Iannacone J. Culícidos de relevancia médico-veterinaria de Jutiapa, Guatemala: 2010-2017. Biotempo. 2018;15(1):49-58.

22. Arredondo-Jiménez JI, Valdez-Delgado KM. Aedes aegypti pupal/demographic surveys in southern Mexico: consistency and practicality. Ann Trop Med Parasitol. 2006;1:17-32.

23. Quintero J, Brochero H, Manrique-Saide P, Barrera-Pérez M, Basso C, Romero S, et al. Ecological, biological and social dimensions of dengue vector breeding in five urban settings of Latin America: a multi-country study. BMC Infect Dis. 2014;14(38):1-13.

24. García-Rejón JE, López-Uribe MP, Loroño-Pino MA, Farfán-Ale JA, Del Nájera-Vázquez MR, Lozano-Fuentes S, et al. Productive container types for Aedes aegypti immatures in Mérida, México. J Med Entomol. 2011;48(3):644-50.

25. Mackay AJ, Amador M, Diaz A, Smith J, Barrera R. Dynamics of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus in septic tanks. J Am Mosq Control Assoc. 2009;25(4):409-16.

26. Diéguez-Fernández L, Hernández-Mojena A, Alarcón-Elbal PM, San Martín-Martínez JL. Diversidad e importancia de reservorios domiciliares colonizados por formas preimaginales de Aedes (Stegomyia) aegypti en Camagüey, Cuba. Rev Salud Jalisco. 2018;Nº Especial:37-43.

27. Focks D. A review of entomological sampling methods and indicators for dengue vectors. WHO/TDR/IDE/Den/2003.1. Geneva: WHO; 2003. p. 38.

28. Maciel-de-Freitas R, Lourenço-de-Oliveira R. Does targeting key-containers effectively reduce Aedes aegypti population density? Trop Med Int Health. 2011;16:965-73.

29. Barrera R, Amador M, MacKay AJ. Population Dynamics of Aedes aegypti and Dengue as Influenced by Weather and Human Behavior in San Juan, Puerto Rico. PLoS Negl Trop Dis. 2011;5(12):1378.

30. Diéguez L, Sosa I, Pérez AE. La impostergable participación comunitaria en la lucha contra el dengue. Rev Cubana Med Trop. 2013;65(2):272-6.