medigraphic.com
ISSN 1561-3054 (Digital)

2019, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Rev Cubana Med Trop 2019; 71 (2)


Efecto de la temperatura y salinidad en la eclosión y supervivencia de Aedes aegypti (L) (Diptera: Culicidae) procedentes del occidente de México

Galavíz-Parada JD, Vega-Villasante F, Marquetti MC, Guerrero-Galván S, Chong-Carrillo O, Navarrete HJL, Cupul-Magaña FG

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 34
Paginas: 1-15
Archivo PDF: 365.47 Kb.


RESUMEN

Introducción: Aedes aegypti (L) (Diptera: Culicidae), es una especie cosmopolita y vector de arbovirosis. Las variaciones de la temperatura y salinidad del agua influyen en la eclosión y supervivencia de fases larvales.
Objetivo: Evaluar el efecto de diferentes temperaturas y salinidades en la eclosión de huevos y la supervivencia de larvas, pupas y adultos bajo condiciones de laboratorio.
Métodos: Se colectaron larvas de Ae. aegypti, de reservorios artificiales en la zona periurbana de Puerto Vallarta, Jalisco, México, y se mantuvieron hasta la fase adulta. Los huevos obtenidos se sometieron a ocho temperaturas (15, 17, 20, 25, 27, 30, 32 y 35 °C). Se colocaron 15 huevos por quintuplicado y se evaluó la eclosión durante 96 h. Se colocaron 100 huevos con agua ajustada a 0.3, 2, 5, 10, 15,18 y 22 ups y se evaluó la eclosión hasta las 96 h. Adicionalmente se utilizaron larvas del estadio IV, por quintuplicado, sometiéndose a las mismas salinidades y se evaluó la supervivencia hasta las 48 h. El efecto de la salinidad en la ovoposición de las hembras se llevó a cabo introduciendo recipientes con las mismas concentraciones salinas, dentro en las jaulas entomológicas.
Resultados: Se registró el 100 % de eclosión a las 24 y 48 h; la temperatura de 35° C no registró eclosión. Las salinidades de 22 y 18 ups, provocaron mortalidad del 100 % a las 24 h. En la salinidad de 15 ups, sobrevivió el 50 %. Las concentraciones de 2, 5 y 10 ups demostraron 100 % de supervivencia hasta la fase de adulto. La supervivencia de larvas del estadio IV en los tratamientos 2, 5 y 10 fue del 100 % y en 15,18 y 22 ups disminuyó a 50, 80 y 100 %, respectivamente (p˂ 0,05). Las diferentes concentraciones salinas no afectaron significativamente la ovoposición. La eclosión solo se presentó en las concentraciones de 0,3; 2; 5 y 10 ups. Los huevos ovopositados en concentraciones de 15, 18 y 22 ups no eclosionaron hasta que fueron transferidos a agua dulce con porcentajes de eclosión de entre el 80 y 90 %.
Conclusiones: Los embriones de Ae. aegypti poseen una amplia plasticidad para soportar cambios drásticos de temperatura y salinidad. El control efectivo de sus poblaciones debe incluir la revisión de charcas o reservorios que contengan aguas salobres hasta 18 ups.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Marquetti MC, Carranza MT, Silva ML, Bisset JL. Factores relacionados con la presencia de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en dos regiones de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2010;64(2):112-8.

  2. World Health Organization. Dengue guidelines for diagnosis, treatment, prevention and control. WHO/ HTM/NTD/DEN/2009.1 [cited 2017 July 15]. Available: http://whqlibdoc. who.int/publications/2009/9789241547871_eng.pdf

  3. Gubler DJ. Dengue and dengue hemorrhagic fever. Clin Microbiol Rev. 1998;11:3:480-96.

  4. Marquetti MC. Aspectos bioecológicos de importancia para el control de Aedes aegypti y otros culícidos en el ecosistema urbano [Tesis para optar por el grado de doctor en Ciencias de la Salud]. Ciudad de La Habana, Cuba: Instituto "Pedro Kourí"; 2006.

  5. Chadee DD, Ward RA, Novak RJ. Natural habitats of Ae. aegypti in the Caribbean: A Review. J Am Mosq Control Assoc. 1998;14:5-11.

  6. Bradley TJ. The physiology of osmoregulation in mosquitoes. Ann Rev Entomol. 1987;32:439-62.

  7. Jetten TH, Focks DA. Potential changes in the distribution of dengue transmission under climate warming. Am J Trop Med and Hyg.1997;57(3):285-97.

  8. Farnesi LC, Martins AJ, Valle D, Rezende GL. Embryonic development of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae): influence of different constant temperatures. Mem Inst Oswaldo Cruz.2009;104(1):124-6.

  9. Weaver SC, Reisen WK. Present and future arboviral threats. Antiviral Res. 2010;85:328.

  10. Mourya DT, Yadav P, Mishra AC. Effect of temperature stress on immature stages and susceptibility of Aedes aegypti mosquitoes to chikungunya virus. Am J Trop Med and Hyg. 2004;70:346-50.

  11. Clark TM, Flis BJ, Remold SR. Differences in the effects of salinity on larval growth and developmental programs of a freshwater and a euryhaline mosquito species (Insecta: Diptera, Culicidae). J Exp Biol. 2004;207:2289-95.

  12. Bradley TJ, Philips JE. Regulation of rectal secretion in saline-water mosquito larvae living in waters of diverse ionic composition. J Exp Biol. 1977;66 (1):83-96.

  13. Ramasamy R, Jude PJ, Veluppillai T, Eswaramohan T, Surendran SN. Biological differences between brackish and fresh water-derived Aedes aegypti from two locations in the Jaffna peninsula of Sri Lanka and the implications for arboviral disease transmission. PLoS ONE. 2014;9:8:e104977.

  14. Surendran SN, Jude PJ, Thabothiny V, Raveendran S, Ramasamy R. Pre-imaginal development of Aedes aegypti in brackish and fresh water urban domestic wells in Sri Lanka. J Vector Ecol. 2012;37(2):471-3.

  15. Ibáñez-Bernal S, Martínez-Campos C. Clave para la identificación de larvas de mosquitos comunes en las áreas urbanas y suburbanas de la República Mexicana. Fol Entomol Mex. 1994;92:43-73.

  16. Darsie RF, Ward RA. Identification and geographical distribution of the mosquitoes of North America, North of México. Mosquito Systematics Supplement. J Am Mosq Control Assoc. 1981;1:1-313.

  17. Carpenter SJ, LaCasse WJ. Mosquitoes of north America (North of Mexico). Berkeley, Los Ángeles, London: University of California Press; 1974. p. 10-65.

  18. Conde-Osorio AM. Estudio de la longevidad y el ciclo gonotrófico del Aedes (S.) aegypti (Linnaeus, 1762), cepa Girardot (Cundinamarca) en condiciones de laboratorio. [Tesis de Licenciatura en Biología]. Colombia: Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana; 2003.

  19. 19.Rueda LM, Patel KJ, Axtell RC, Stinner RE. Temperature-dependent development and survival of Culex quinquefascialus and Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). J Med Entomol.1990;27:892-8. 20. De Carvalho SC, Martins Junior A de J, Lima JB, Valle D. Temperature influence on embryonic development of Anopheles albitarsis and Anopheles aquasalis. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1117-20.

  20. Monteiro LCC, JRB De Souza, De Albuquerque ECMR.. Eclosion rate, development and survivorship of Aedes albopictus (Skuse) (Diptera: Culicidae) under different water temperatures. Neo Trop Entomol. 2007;36:966-71.

  21. Sharpe Peter JH, De Michele Don W. Reaction Kinetics of Poikilotherm Development. J Theor Biol. 1977;64:649-70.

  22. Bar-Zeev M. The effect of temperature on the growth rate and survival of the immature stages of Aedes aegypti (L.). Bull Entomol Res. 1958;49:157-63.

  23. Tun-Lin W, Burkot TR, Kay BH. Effects of temperature and larval diet on development rates and survival of the dengue vector Aedes aegypti in north Queensland, Australia. Med Veterinary Entomol. 2000;14(1):31-7.

  24. Monteiro, LCC, JRB, De Souza, and ECM R. De Albuquerque. Eclosion rate, development and survivorship of Aedes albopictus (Skuse) (Diptera: Culicidae) under different water temperatures. Neotrop Entomol. 2007;36:966-71.

  25. Farnesi LC, Martins AJ, Valle D, Rezende GL. Embryonic development of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae): influence of different constant temperatures. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104:124-6.

  26. Delatte H, Gimonneau G, Triboire A, Fontenille D. Influence of temperature on immature development, survival, longevity, fecundity, and gonotrophic cycles of Aedes albopictus, vector of chikungunya and dengue in the Indian. Ocean. J Med Entomology. 2009;46(1):33-41. 28. Neves, DP, Espínola HN. Tigre-asiático: outro Aedes nos ameaça. Ciência Hoje. 1987;27(5):82.

  27. Clark, TM, Flis BJ, Remold SK. Differences in the effects of salinity on larval growth and developmental programs of a freshwater and a euryhaline mosquito species (Insecta: Diptera, Culicidae). J Exp Biology. 2004;207:2289-e2295. 30. Surendran SN, Singh OP, Jude PJ, Ramasamy R. Genetic evidence for the presence of malaria vectors of the Anopheles sundaicus complex in Sri Lanka with morphological characteristics attributed to Anopheles subpictus species B. Malaria J. 2010;9:343.

  28. Ramasamy R, Jude PJ, Veluppillai T, Eswaramohan T, Surendran SN. Biological differences between brackish and fresh water-derived Aedes aegypti from two locations in the Jaffna peninsula of Sri Lanka and the implications for arboviral disease transmission. PloS ONE. 2014;9:8:e104977.

  29. Madushika KKWT, Dayananda PD, Fernando HSD, Fernando AL, De Silva H, Nanayakkara L,19. High Salinity Tolerance of Aedes to Breed in Brackish Waters around the Negombo Estuary. Proceedings of the International Forestry and Environment Symposium. Sri Lanka, 2016.

  30. Stein M, Oria GI, Willener JA. Fluctuación estacional de Aedes aegypti en Chaco, Argentina. Rev Saú Públ.2005:39;559-64

  31. Chadee DD. Key premises, a key to Aedes aegypti surveillance and control. Bull Entomol Res. 2004:94;201-7.

  32. Kumar S, Wahab N, Warikoo R. Bioefficacy of Mentha piperita essential oil against dengue fever mosquito Aedes aegypti L. Asian Pac. J Trop Biomed. 2011:2;85-8.

  33. Galavíz-Parada JD, Vega-Villasante F, Cupul-magaña FG, Navarrete-Heredia JL, Ruiz González E, Vargas-Ceballos MA, et al. Control químico y biológico de larvas de Aedes aegypti en la costa norte de Jalisco, México. Rev Cubana Med Trop. 2016;68(2):111-24.

  34. Nesterkina M, Ulrich RB, Nurhayat T, Kravchenko I. Repellent activity of Monoterpenoid esteres with neurotransmitter amino acids against yellow fever mosquito. Aedes aegypti. Open Chemistry. 2018:16;95-8.




2020     |     www.medigraphic.com