2018, Número 3
<< Anterior Siguiente >>
Rev Cubana Med Trop 2018; 70 (3)
Susceptibilidad de diferentes estadios larvarios de Aedes albopictus (S) (Diptera: Culicidae) a la infección por dos especies de nematodos mermítidos en condiciones de laboratorio
Menéndez DZ, García GI, Hernández CN, González RA, Companioni IA, Berovides AV
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 83-91
Archivo PDF: 252.90 Kb.
RESUMEN
Introducción: La combinación de insecticidas, la reducción de criaderos y el control biológico se proponen como una alternativa para el control de culícidos. Los nematodos entomoparásitos, Romanomermis iyengari y Strelkovimermis spiculatus, han sido empleados con éxito en estudios de laboratorio y campo, pero aún no se han evaluado en Cuba contra larvas de Aedes albopictus, mosquito vector de dengue, chikungunya, zika y otras arbovirosis.
Objetivo: Determinar la susceptibilidad de tres estadios larvales deAe. albopictus a la infección de R. iyengari y S. spiculatus en condiciones de laboratorio.
Métodos: Se aplicó una dosis de 7:1 (preparásitos/larva) a 100 larvas de Ae. albopictus en diferentes estadios de desarrollo (I, II y III). Después de 96 h de la posinfección, se tomaron al azar 30 larvas y se disectaron para determinar la intensidad y frecuencia de la infección. Cada estadio larval de Ae. albopictus por especie de nematodo, constó de 12 réplicas y se colocaron controles.
Resultados: S. spiculatus mostró mayor frecuencia de la infección en los estadios larvales estudiados (97,22 %; 96,66 % y 73,33 %) que R. iyengari (90,27 %; 83,61 % y 57,22 %), mientras que la intensidad de la infección por estadios fue de 2,54; 2,44 y 1,55 para S. spiculatus y 2,39; 2,46 y 1,97 para R. iyengari.
Conclusiones: Aunque S. spiculatus fue superior a R. iyengari, con mayores valores de frecuencia de infección en los tres estadios, ambas especies demostraron ser buenos candidatos como agentes de biocontrol de Ae. Albopictus; se recomiendan estudios posteriores antes de su uso en condiciones naturales.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Platzer EG. Mermithid Nematodes. J Am Mosq Control Assoc. 2007;23(Supl 2):58-64.
Cruz AS. Caracterización morfológica de cuatro especies de nematodos parásitos de larvas de mosquitos. [Tesis para optar por el grado de Máster en Conservación y Aprovechamiento de Recursos Naturales]. Oaxaca: Instituto Politécnico Nacional, Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Regional Integral de Oaxaca, México; 2011.
Iyengar MOT. Parasitic nematodes of Anopheles in Bengal. Far Eastern Assoc Trop Med Trans. 1927;(3):128-35.
Poinar GO Jr, Camino NB. Strelkovimermis spiculatus n.sp. (Mermithidae: Nematoda) parasitizing Aedes albifasciatus Macquart (Culicidae: Diptera) in Argentina. J Nematol. 1986;18:317-9.
Pérez R, Rodriguez C, Lara J, Montes B, Ruíz J. Parasitism of Romanomermis iyengari in larvae of three species of mosquito in the laboratory and in Anopheles pseudopunctipennis in the field. Agrociencia. 2004;38(4):413-21.
Achinelly MF, Micieli MV, Marti GM, García JJ. Susceptibility of neotropical mosquito larvae (Diptera: Culicidae) and non-target acuatic organisms to the entomoparasitic nematode Strelkovimermis spiculatus Poinar and Camino, 1986 (Nematoda: Mermithidae). Nematology. 2004;6:299-302.
Rodríguez J, García I, Menéndez Z, García Ávila I, Sánchez J, Pérez R. Efecto patogénico de 3 nematodos parásitos en larvas de Aedes aegypti en condiciones de laboratorio, en Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2005;57(3):219-22.
Santamarina A, García I, Rivera J, Solís A. Release ofRomanomermis iyengari (Nematoda:Mermithidae) to control Aedes taeniorhynchus (Diptera:Culicidae) in Punta del Este, Isla de la Juventud, Cuba. J Med Entomol. 1996;33(4):680-2.
Santamarina AM. Actividad parasitaria de Romanomermis iyengari (Nematoda, Mermithidae) en criaderos naturales de larvas de mosquitos. Misc Zool. 1993-1994;17:59-65.
Gratz N. Critical review of the vector status of Aedes albopictus. Medical and Veterinary Entomology. 2004;18:215-27.
Metselaar D, Grainger CR, Oei KG, Reynolds DG, Pudney M, Leake CJ, et al. An outbreak of type 2 dengue in the Seychelles, probably transmitted by Aedes albopictus (Skuse). Bull WHO.1980;58(6):937-43.
Paupy C, Girod R, Salvan M, Rodhain F, Failloux AB. Population structure of Aedes albopictus from La Reunion Island (Indian Ocean) with respect to susceptibility to a dengue virus. Heredity. 2001;87:273-83.
Gómez A, Suaza J, Castaño S, Triana O, Uribe S. Aedes albopictus (Skuse, 1894) infected with the American-Asian genotype of dengue type 2 virus in Medellín suggests its possible role as vector of dengue fever in Colombia. Biomédica. 2017;37(Supl. 2):135-42.
Reiter P, Fontenille D, Paupy C. Aedes albopictus as an epidemic vector of chikungunya virus: another emerging problem? The Lancet. 2006;6:463-64.
González R, Marro E. Aedes albopictus in Cuba. J Am Mosq Control Assoc. 1999;15(4):569-70.
Fuster CA. Distribución espacial y temporal de Aedes aegypti y Aedes albopictus en Pinar del Rio 2003-2010 [Tesis para optar por el grado de Máster en Entomología y Control de Vectores]. La Habana: Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kourí"; 2012.
Castillo RM, Pérez M, Mesa A, Silva I, Alfonso Y, Marquetti MC. Presencia y sitios de cría de Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) en la región oriental de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2014;66(1):143-7.
Pérez O, Rodríguez J, Bisset JA, Leyva M, Díaz M, Fuentes O. Manual de indicaciones técnicas para insectarios. La Habana: Editorial Ciencias Médicas; 2004.
Santamarina A. Cría masiva de Romanomermis culicivorax (Nematoda: Mermithidae) en las condiciones tropicales de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 1996;48(1):26-33.
Rodríguez J, García I, Díaz M, García Ávila I, Sánchez J. Pathogenic effect of the parasitic nematodeStrelkovimermis spiculatus on larvae of the mosquito Culex quinquefasciatus under laboratory conditions in Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2003;55(2):124-5.
Petersen JJ. Nematodes as biological control agents: Part I. Mermithidae. Advances in Parasitology. 1985;24:307-44.
Sanad M, Shamseldean M, Elgindi A, Gaugler R. Host penetration and emergence patterns of the mosquito-parasitic mermithids Romanomermis iyengari and Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae). J Nematol. 2013;45(1):30-8.
Clements AN. The physiology of mosquitoes. Oxford: Pergamon Press; 1963.
García I, Menéndez Z, Hernández N, García GI, Anaya J, Companioni A, et al. Susceptibilidad de larvas deAedes albopictus (Diptera:Culicidae) a Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae) en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2014;66(3):453-7.
Achinelly MF, Micieli MV. Host range of the parasite Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae) in Argentina mosquitoes. J Vector Ecology. 2013;38(1):69-73.
Achinelly MF, Micieli MV. Optimizing laboratory production of Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae) with a discussion of potential release strategies for mosquito biological control. Biol Control. 2011;57:31-6.
Santamarina A, Pérez R. Efecto patogénico del nematodo parásito Romanomermis iyengari (Nematoda: Mermithidae) en larvas del mosquito Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en condiciones de laboratorio en el Estado de Oaxaca, México. Rev Cubana Med Trop. 1998;50(1):8-11.
Di Battista C, Fischer S, Campos R. Prevalence of parasitism and adult survival time of Aedes albifasciatus (Diptera: Culicidae) parasitized by Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae). J Vector Ecology. 2015;40(2):393-7.
Paily KP, Balaraman K. Susceptibility of ten species of mosquito larvae to the parasitic nematode Romanomermis iyengari and its development. Med Vet Entomol. 2000;14:426-9.
Paily K, Chandhiran K, Vanamail P, Pradeep Kumar N, Jambulingam, P. Efficacy of a mermithid nematode Romanomermis iyengari (Welch) (Nematoda: Mermithidae) in controlling tree hole-breeding mosquito Aedes albopictus (Skuse) (Diptera: Culicidae) in a rubber plantation area of Kerala, India. Parasitol Res. 2013;112:1299-304.