medigraphic.com
Órgano oficial de la Sociedad Mexicana de Cirugía Dermatológica y Oncológica, AC

2018, Número 1

<< Anterior Siguiente >>

Dermatología Cosmética, Médica y Quirúrgica 2018; 16 (1)


Entomodermatoscopía como herramienta diagnóstica en ectoparasitosis: una revisión

Aquino FCJ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 52
Paginas: 45-49
Archivo PDF: 203.22 Kb.


RESUMEN

La dermatoscopía como técnica no invasiva se ha convertido en una parte integral en la evaluación de lesiones cutáneas pigmentadas y tumorales, además de otras múltiples aplicaciones, se ha demostrado cada vez más su utilidad en el diagnóstico y seguimiento de las ectoparasitosis. El término “entomodermatoscopía” se utiliza en referencia a la dermatoscopía de infecciones e infestaciones de la piel. En el presente artículo se proporciona una breve revisión de los patrones dermatoscópicos descritos para el estudio de las ectoparasitosis.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Micali G, Lacarrubba F, Massimino G y Schwartz R, Dermatoscopy: alternative uses in daily clinical practice, J Am Acad of Dermatol 2011; 6(64):1135-46.

  2. Zalaudek I, Argenziano G, Di Stefani A et al., Dermoscopy in general dermatology, Dermatology 2006; 212(1):7-18.

  3. Errichetti E y Stinco G, Dermoscopy in general dermatology: a practical overview, Dermatol Ther (Heidelb) 2016; 6(4):471-507.

  4. Arenas R, Dermatología. Atlas, diagnóstico y tratamiento, 6ª ed., Mc- Graw-Hill Interamericana, México, 2015.

  5. Argenziano G, Fabbrocini G y Delfino M, Epiluminescence microscopy. A new approach to in vivo detection of Sarcoptes scabiei, Arch Dermatol 1997; 133(3):751-3.

  6. Zalaudek I, Giacomel J, Cabo H et al., Entodermoscopy: a new tool for diagnosing skin infections and infestations, Dermatology 2008; 216(1):14-23.

  7. Segura TS, Dermatoscopía en el diagnóstico de las infecciones cutáneas, Piel 2014; 29(1):20-8.

  8. Paštar Z y Lipozencˇic´ J, Significance of dermatoscopy in genital dermatoses, Clinic in Dermatology 2014; 32(2):315-8.

  9. Lacarrubba F, Verzi A, Dinotta F, Scavo S y Micali G, Dermatoscopy in inflammatory and infectious skin disorders, G Ital Dermatol Venereol 2015; 150(5):521-31.

  10. Del Pozo L, Giacaman A, Corral O y Escudero M, Dermatoscopía en las infecciones de la infancia, Piel 2017; 32(7):424-32.

  11. Lallas A, Zalaudek I, Argenziano G et al., Dermoscopy in general dermatology, Dermatol Clin 2013; 31(4):679-94.

  12. Grin CM, Friedman KP y Granst JM, Dermoscopy: a review, Dermatol Clin 2002; 20(4):1-8.

  13. Machado C, Historia de la entomología médica, Entomotrópica 2004; 19(2):65-77.

  14. García E, Praena J, Ruíz M et al., Aproximación clínica a la eosinofilia importada, Enferm Infec Microbiol Clin 2016; 34(10):661-84.

  15. Chosidow O, Scabies and pediculosis, Lancet 2000; 355(9206):819-26.

  16. Chosidow O, Scabies and pediculosis: neglected diseases to highlight, Clin Microbiol Infec 2012; l8(4):311-2.

  17. Feldmeier H, Jackson A, Ariza L et al., The epidemiology of scabies in an impoverished community in rural Brazil: presence and severity of disease are associated with poor living conditions and illiteracy, J Am Acad Dermatol 2009; 60(3):436-43.

  18. Korycin´ska J, Dzika E, Lepczyn´ska M y Kubiak K, Scabies: clinical manifestations and diagnosis, Polish Ann Med 2015; 22(1):63-6.

  19. Panés A, Piera L, López A et al., Larva migrans cutánea de origen autóctono en Guipúzcoa, Actas Dermosifiliogr 2016; 107(5):407-13.

  20. Ryan E, Wilson M y Kain K, Illness after international travel, N Engl J Med 2002; 347(7):505-16.

  21. Freedman D, Weld LH, Kozarsky PE et al., Spectrum of disease and relation to place of exposure among ill returned travelers, N Engl J Med 2006; 354:119-30.

  22. Zimmerman RF, Belanger ES y Pfeiffer CD, Skin infections in returned travelers: an update, Curr Infect Dis Rep 2015; 17(3):467.

  23. Caumes E y Bourée P, Diagnostic des parasitoses cutanées en France, Rev Francophone Lab 2008; (399):55-62.

  24. Gutiérrez R, Romero T y Olivo Z, Cutaneous larva migrans, welcome to a warmer Europe, J Eur Dermatol Venereol 2016; 31(1):e33-5.

  25. Crocker A, Sánchez L, Quiñones R, González R y Orendain N, Hallazgos dermatoscópicos en larva migrans, Dermatol Rev Mex 2015; 59(2):98-101.

  26. Heukelbach J, Tungiasis, Rev Inst Med Trop 2005; 47(6):307-13.

  27. Bada M, Arenas R, González M y Vergara L. Trombidiasis (“tlazahuate”) en Veracruz, México. Dermatol Rev Mex 2015; 59(3):233-37.

  28. Bernigaud C, Monsel G, Delaunay P et al., Principals parasitoses cutanées: mise au point, Rev Méd Interne 2017; 38(1):17-27.

  29. Weedon D, Arthropod-induced diseases, en Weedon’s Skin Pathology, 3a ed., Elsevier, 2010, pp. 651-663.

  30. Scanni G y Bonifazi E, Viability of the head louse eggs in pediculosis capitis. A dermoscopy study, Eur J Pediat Dermatol 2006; 16:201-4.

  31. Pérez L, Martínez W, Paradela S y Fonseca E, Tratamiento de la escabiasis, Piel 2011; 26(2):95-102.

  32. Viovy A, Ectoparasitosis, Rev Chil Pediatr 1999; 70(5):446-50.

  33. Jacobson C y Abel E, Parasitic infestations, J Am Acad Dermatol 2007; 56(6):1026-43.

  34. Prins C, Stucki L, French L, Saurat JH y Braun RP, Dermoscopy for the in vivo detection of sarcoptes scabiei, Dermatology 2004; 208:241-3.

  35. Lacarrubba F y Micali G, Videodermatoscopy and scabies, J Pediatr 2013; 163(4):1227.

  36. Bauer J, Blum A, Sonnichsen K, Metzler G, Rassner G y Garbe C, Nodular scabies detected by computed dermatoscopy, Dermatology 2001; 203(1):190-1.

  37. Weinstock M y Kempton S, Case report: teledermatology and epiluminescence microscopy for the diagnosis of scabies, Cutis 2000; 66(1):61-2.

  38. Brunetti B, Vitiello A, Delfino S y Sammarco E, Findings in vivo of Sarcoptes scabiei with incident light microscopy, Eur J Dermatol 1998; 8(4):266-7.

  39. Dupuy A, Dehen L, Bourrat E, Lacroix C et al., Accuracy of standard dermoscopy for diagnosing scabies, J Am Acad Dermatol 2007; 56:53-62.

  40. Ranalleta M y De Villalobos L, La pediculosis en América Latina, Arch Argent Dermatol 1996; 46:245-9.

  41. Scanni G y Bonifazi E, Head lice, Eur J Pediat Dermatol 2008; 18:33-64.

  42. Hernández A, Hinostroza D y Santamaría V, Pediculosis pubis, presentación de un caso, Rev Cent Dermatol Pascua 2001; 10(3):130-4.

  43. Lakjiri S, Gallouj S y Mernissi F, Ciliary phthiriasis: dermoscopic diagnosis, J Dermatol Surg 2015; 19(2):130-2.

  44. Aguirre I, Cruz S, González F y Aguilera A, A case report of cutaneous larva migrans in a Mexican population of high marginalization, Asian Pac J Trop Biomed 2014; 4(9):755-6.

  45. Elsner E, Thewes M y Worret W, Cutaneous larva migrans detected by epiluminescent microscopy, Acta Derm Venereol 1997; 77(6):487-8.

  46. Veraldi S, Schianchi R y Carrera C, Epiluminescence microscopy in cutaneous larva migrans, Act Derm Venereol 2000; 80(3):233.

  47. Ríos J, Mercadillo P et al., La tungiasis: una enfermedad entre la pobreza y el olvido, dcmq 2012; 10(4):282-7.

  48. Chinchilla K, Domínguez R, Domínguez A y Mercadillo P, Tungiasis, Dermatol Rev Mex 2016; 60(1):59-65.

  49. Bauer J, Forschner A, Garbe C y Rocken M, Dermoscopy of tungiasis, Arch Dermatol 2004; 140:761-3.

  50. Di Stefani A, Rudolph CM, Hofmann-Wellenhof R y Müllegger RR, An additional dermoscopic feature of tungiasis, Arch Dermatol 2005; 141(8):1045-6.

  51. Cabrera R y Daza F, Tungiasis: eggs seen with dermoscopy, Br J Dermatol 2008; 158(3):635-6.

  52. Nasca M, Lacarrubba F y Micali G, Diagnosis of trombiculosis by videodermatoscopy, Emerg Infect Dis J 2014; 20(6):1059-60.




2020     |     www.medigraphic.com