2016, Número 2
Actividad ovicida de extractos de cuatro especies de plantas contra el nematodo gastrointestinalCooperia punctata
von-Son-de-Fernex E, Alonso-Díaz MÁ, Mendoza-de-Gives P, Valles-de-la-Mora B, Zamilpa A, González-Cortasar M
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 32
Paginas: 1-14
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RESUMEN
El uso de plantas bioactivas representa una alternativa para el control de
Cooperia punctata en el ganado de pastoreo. Los objetivos de este estudio
fueron: (1) evaluar la actividad ovicida de extractos de cuatro especies de
plantas contra
C. punctata, (2) determinar la participación de los compuestos polifenólicos (cp) en la actividad antihelmíntica (ah) y (3) evaluar el mejor método de extracción para alcanzar una actividad ovicida. El bioensayo de
inhibición de la eclosión de huevos (ieh) fue utilizado para evaluar el efecto
ovicida de
Leucaena leucocephala, Gliricidia sepium, Guazuma ulmifolia y
Cratylia argentea; con diferentes métodos de extracción: acuoso (aq), acetona:
agua (aw) y acetónico (ac). Los huevos de
C. punctata fueron incubados
por cuadruplicado a 0.6, 1.2, 2.4, 4.8 y 9.6 mg mL
-1 de cada uno de los
extractos de plantas. La participación de los cp fue determinada mediante
el uso de polietilenglicol (peg). Los 12 extractos de plantas inhibieron la eclosión de huevos de modo dosis-dependiente, y las mejores concentraciones
letales medias (CL
50) fueron: 1.03 ± 0.17 para
G. sepium-ac, y 7.90 ± 1.19 mg mL
-1 para L. leucocephala-aq. Se observaron diferencias en la actividad
ah según el método de extracción (P ‹ 0.05). A mayor concentración,
L. leucocephala-aq inhibió más del 50 % de la eclosión de
C. punctata,
entretanto, el extracto
G. sepium-ac inhibió la eclosión en su totalidad. La
adición de peg demostró la participación de los cp en la actividad ah de la
mayoría de los extractos; no obstante, con
G. sepium-ac, los cp no fueron los
principales compuestos bioactivos. En general, el mejor método de extracción
fue acetona:agua, pues permitió obtener una buena actividad ovicida,
con un mayor rendimiento del extracto. Las tasas de inhibición sugieren que
L. leucocephala y
G. sepium podrían ser evaluadas con la finalidad de reducir
la densidad larvaria en pastos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
1) Alonso-Diaz MA, Torres-Acosta JF, Sandoval-Castro, CA, Aguilar-Caballero, A.J., Hoste, H. 2008a. In vitro larval migration and kinetics of exsheathment of Haemonchus contortus larvae exposed to four tropical tanniniferous plant extracts. Veterinary Parasitology, 153:313-319.
2) Alonso-Diaz MA, Torres-Acosta JF, Sandoval-Castro CA, Capetillo-Leal C, Brunet S, Hoste H. 2008b. Effects of four tropical tanniniferous plant extracts on the inhibition of larval migration and the exsheathment process of Trichostrongylus colubriformis infective stage. Veterinary Parasitology, 153:187-192.
3) Alonso-Diaz MA, Torres-Acosta JF, Sandoval-Castro CA, Hoste H. 2010. Tannins in tropical tree fodders fed to small ruminants: A friendly foe? Small Ruminant Research, 89:164-173.
4) Arnaud-Ochoa R, Alonso Díaz MA. 2012. Unidades de producción bovina con nematodos gastrointestinales resistentes al albendazol (benzimidazoles) en México. Revista Cientifica, XXII (4):315-320.
5) Athanasiadou S, Kyriazakis I, Jackson F, Coop RL. 2001. Direct anthelmintic effects of condensed tannins towards different gastrointestinal nematodes of sheep in vitro and in vivo studies. Veterinary Parasitology, 99:205-219.
6) Barrau E, Fabre N, Fouraste I, Hoste H. 2005. Effect of bioactive compounds from Sainfoin (Onobrychis viciifolia Scop.) on the in vitro larval migration of Haemonchus contortus: Role of tannins and flavonol glycosides. Parasitology, 131:531-538.
7) Bartley DJ, McArthur CL, Devin LM, Sutra JF, Morrison AA, Lespine A, Matthews JB. 2012. Characterisation of macrocyclic lactone resistance in two field-derived isolates of Cooperia oncophora. Veterinary Parasitology, 190:454-460.
8) Becerra-Nava R, Alonso-Diaz MA, Fernandez-Salas A, Quiroz RH. 2014. First report of cattle farms with gastrointestinal nematodes resistant to levamisole in Mexico. Veterinary Parasitology, 204:285-290.
9) Biavatti MW. 2009. Synergy: An old wisdom, a new paradigm for pharmacotherapy. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences, 45:371-378.
10) Bizimenyera ES, Githiori JB, Eloff JN, Swan GE. 2006. In vitro activity of Peltophorum africanum Sond. (Fabaceae) extracts on the egg hatching and larval development of the parasitic nematode Trichostrongylus colubriformis. Veteri- nary Parasitology, 142:336-343.
11) Botura MB, dos Santos JD, da Silva GD, de Lima HG, de Oliveira JV, de Almeida MA, Batatinha MJ, Branco A. 2013. In vitro ovicidal and larvicidal activity of Agave sisalana Perr. (sisal) on gastrointestinal nematodes of goats. Veterinary Parasitology, 192:211-217.
12) Charlier J, Hoglund J, von Samson-Himmelstjerna G, Dorny P, Vercruysse J. 2009. Gastrointestinal nematode infections in adult dairy cattle: Impact on production, diagnosis and control. Veterinary Parasitology, 164:70-79.
13) Chavan UD, Amarowicz R. 2013. Effect of various solvent systems on extraction of phenolics, tannins and sugars from beach pea (Lathyrus maritimus L.). International Food Research Journal, 20(3):1139-44.
14) Chavan UD, Shahidia F, Naczkb M. 2001. Extraction of condensed tannins from beach pea (Lathyrus maritimus L.) as affected by different solvents. Food Chemistry, 75:509–512.
15) Coles GC, Bauer C, Borgsteede FHM, Geerts S, Klei TR, Taylor MA, Waller PJ. 1992. World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (WAAVP) methods for the detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance. Veterinary Parasitology, 44:35-44.
16) Demeler J, Krucken J, AlGusbi S, Ramunke S, De Graef J, Kerboeuf D, Geldhof P, Pomroy WE, von Samson-Himmelstjerna G. 2013. Potential contribution of P-glycoproteins to macrocyclic lactone resistance in the cattle parasitic nematode Cooperia oncophora. Molecular & Biochemical Parasitology, 188:10-19.
17) Dobson RJ, Donald AD, Waller PJ, Snowdown KL. 1986. An egg-hatch assay for resistance to levamisole in trichostrongyloid nematode parasites. Veterinary Parasitology, 19:77-84.
18) Fitzpatrick JL. 2013. Global food security: The impact of veterinary parasites and parasitologists. Veterinary Parasitology, 195:233-248.
19) Flores-Guido JS. 2001. Leguminosae. Florística, Etnobotánica y Ecología. Etnoflora Yucatense. Universidad Autónoma de Yucatán; Mérida, Yucatán, México.
20) Gasbarre LC. 2014. Anthelmintic resistance in cattle nematodes in the US. Veterinary Parasitology, 204:3-11.
21) Gibbons LM. 1981. Revision of the african species of the genus Cooperia Ransom, 1907 (Nematoda, trichostrongylidae). Systematic Parasitology, 2:219-252
22) Hoste H, Martinez-Ortiz-De-Montellano C, Manolaraki F, Brunet S, Ojeda-Robertos N, Fourquaux I, Torres-Acosta JF, Sandoval-Castro CA. 2012. Direct and indirect effects of bioactive tannin-rich tropical and temperate legumes against nematode infections. Veterinary Parasitology, 186:18-27.
23) Katiki LM, Chagas AC, Bizzo HR, Ferreira JF, Amarante AF. 2011. Anthelmintic activity of Cymbopogon martinii, Cymbopogon schoenanthus and Mentha piperita essential oils evaluated in four different in vitro tests. Veterinary Parasitology, 183:103-108.
24) Kenyon F, Jackson F. 2012. Targeted flock/herd and individual ruminant treatment approaches. Veterinary Parasitology, 186:10-17.
25) Kozan E, Anul SA, Tatli II. 2013. In vitro anthelmintic effect of Vicia pannonica var. purpurascens on trichostrongylosis in sheep. Experimental Parasitology, 134:299-303.
26) Makkar HPS. 2003. Quantification of tannins in tree and shrub foliage. A laboratory manual. Dordrecht, Netherlands: Kluwer Academic Publishers.
27) Makkar HPS, Blummel M, Becker K. 1995. Formation of complexes between polyvinyl pyrrolidones or polyethylene glycols and tannins, and their implication in gas production and true digestibility in vitro techniques. British Journal of Nutrition, 73:897-913.
28) Mansfield LS, Gamble HR, Fetterer RH. 1992. Characterization of the eggshell of haemonchus contortus-i. Structural components. Comparative Biochememistry and Physiology, 103B(3):681-686.
29) Martinez-Ortiz-de-Montellano C, Vargas-Magana JJ, Canul-Ku HL, Miranda-Soberanis R, Capetillo-Leal C, Sandoval-Castro CA, Hoste H, Torres-Acosta JF. 2010. Effect of a tropical tannin-rich plant Lysiloma latisiliquum on adult populations of Haemonchus contortus in sheep. Veterinary Parasitology,172:283-290.
30) Molan AL, Duncan AJ, Barry TN, McNabb WC. 2003. Effects of condensed tannins and crude sesquiterpene lactones extracted from chicory on the motility of larvae of deer lungworm and gastrointestinal nematodes. Parasitology International, 52:209-218.
31) Molan AL, Waghorn GC, Min BR, McNabb WC. 2000. The effect of condensed tannins from seven herbages on Trichostrongylus colubriformis larval migration in vitro. Folia Parasitologica, 47:39-44.
32) Novobilsky A, Mueller-Harvey I, Thamsborg SM. 2011. Condensed tannins act against cattle nematodes. Veterinary Parasitology, 182:213-220