2015, Número 1
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Rev Cubana Farm 2015; 49 (1)
Actividad antibacteriana in vitro de diecinueve aceites esenciales frente a bacterias asociadas al acné
Matiz MGE, León MG, Osorio FMR
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 103-116
Archivo PDF: 210.41 Kb.
RESUMEN
Objetivos: evaluar la actividad antibacteriana de 19 aceites esenciales sobre tres cepas asociadas al desarrollo del acné, (
Propionibacterium acnes,
Staphylococcus epidermidis y
Staphylococcus aureus) y seleccionar los más promisorios con base
en sus respectivas concentraciones mínimas inhibitorias (CMI) y su composición química, con el propósito de diseñar formas farmacéuticas de uso tópico para tratamiento antiacné.
Métodos: las bacterias se replicaron en medios de agar y caldos específicos. Se determinó el momento de máxima densidad óptica (DO
620) para emplearlo como tiempo de incubación; luego se hicieron pruebas de evaluación de sensibilidad con la exposición de las cepas a concentraciones a 1000 ppm de cada uno de los aceites
en caldo. Para solubilizarlos se empleó la mezcla 95:4:1 de caldo:etanol:polisorbato-80. A los aceites que inhibieron el crecimiento en más de un 90%, se les determinó la concentración mínima inhibitoria mediante
metodologías de microdilución en caldo y su composición química por cromatografía de gases acoplada a espectroscopía de masas.
Resultados: de los 19 aceites, siete fueron capaces de inhibir el crecimiento en más del 90 % para las tres cepas a 1000 ppm. Las concentración mínima inhibitoria determinadas oscilaron entre 300 y 900 ppm. La composición química de todos los aceites fue consistente con la reportada en la literatura.
Conclusiones: los aceites de tomillo (
Thymus vulgaris L.), canela (
Cinnamomum verum J. Presl) y clavo (
Eugenia caryophyllata T.), en ese orden, alcanzaron las más bajas de concentración mínima inhibitoria; adicionalmente, de acuerdo con la literatura, los componentes más abundantes de los aceites promisorios, tienen reconocida actividad antiinflamatoria, y por tanto, es factible el diseño de formas farmacéuticas tópicas con base en ellos, para el tratamiento del acné.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Matiz G, Osorio MR, Camacho F, Atencia M, Herazo J. Diseño y evaluación in vivo de fórmulas para acné basadas en aceites esenciales de naranja (Citrus sinensis), albahaca (Ocimum basilicum L) y ácido acético. Biomédica: Revista del Instituto Nacional de Salud. 2012;32(1).
Williams HC, Dellavalle RP, Garner S. Acne vulgaris. Lancet. 2012;379(9813):361-72.
Fisk WA, Lev-Tov HA, Sivamani RK. Botanical and Phytochemical Therapy of Acne: A Systematic Review. Phytother Res. 2014;In Press:1-16.
CLSI. Performance standards for Antimicrobial susceptibility testing, 21st international supplements. CLSI Document M100-S21. Wayne, Pennysylavania, USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2011.
Sutton S. Measurement of cell concentration in suspension by optical density. Pharmaceutical Microbiology Forum Newsletter. 2006;12(8):3-13.
Bogut A, Niedźwiadek J, Kozio-Montewka M, Strzelec-Nowak D, Blacha J, Mazurkiewicz T, et al. Characterization of Staphylococcus epidermidis and Staphyloccocus warneri small-colony variants associated with prosthetic-joint infections. J Med Microbiol. 2014;63(Pt 2):176-85.
Pérez JE, Isaza G, Acosta S. Actividad antibacteriana de extractos de Phenax rugosus y Tabebuia chrysantha. Biosalud. 2007;6:59-68.
Rojas J, García A, López A. Evaluación de dos metodologías para determinar la actividad antimicrobiana de plantas medicinales. Boletín Latinoamericano y del Caribe de plantas medicinales y aromáticas. 2005;4(2):28-32.
Ramírez A, Stella L, Marín D. Metodologías para evaluar in vitro la actividad antibacteriana de compuestos de origen vegetal. Scientia et Technica. 2009;15(42):263-8.
López A, García A, Rojas J. Evaluación de dos metodologías para determinar la actividad antimicrobiana de plantas medicinales. Boletín Latinoamericano y del Caribe de plantas medicinales y aromáticas. 2005;4(002):28-32.
Gibbons S. Plants as a source of bacterial resistance modulators and antiinfective agents. Phytochem Rev. 2005;4(1):63-78.
Franco L, Matiz G, Pájaro Bolivar I, Gómez H. Actividad Antibacteriana in vitro de Extractos y Fracciones de Physalis peruviana L. y Caesalpinia pulcherrima (L.) Swartz. Boletín Latinoamericano y del Caribe de plantas medicinales y aromáticas. 2013;12(3):230-7.
Baharum SN, Bunawan H, Ghani MaA, Mustapha WAW, Noor NM. Analysis of the chemical composition of the essential oil of Polygonum minus Huds. using twodimensional gas chromatography-time-of-flight mass spectrometry (GC-TOF MS). Molecules. 2010;15(10):7006-15.
Tomy GT, Stern GA, Muir DC, Fisk AT, Cymbalisty CD, Westmore JB. Quantifying C10-C13 polychloroalkanes in environmental samples by highresolution gas chromatography/electron capture negative ion high-resolution mass spectrometry. Anal Chem. 1997;69(14):2762-71.
Akthar MS, Degaga B, Azam T. Antimicrobial activity of essential oils extracted from medicinal plants against the pathogenic microorganisms: A review. Issues in Biological Sciences and Pharmaceutical Research. 2014;2(1):1-7.
Ghosh V, Mukherjee A, Chandrasekaran N. Eugenol-loaded antimicrobial nanoemulsion preserves fruit juice against, microbial spoilage. Colloids Surf B Biointerfaces. 2014;114:392-7.
Gomes C, Moreira RG, Castell-Pérez E. Poly (DL-lactide-co-glycolide)(PLGA) Nanoparticles with Entrapped trans-Cinnamaldehyde and Eugenol for Antimicrobial Delivery Applications. J Food Sci. 2011;76(2):N16-N24.
Kavoosi G, Dadfar SMM, Mohammadi Purfard A, Mehrabi R. Antioxidant and antibacterial properties of gelatin films incorporated with carvacrol. J Food Saf. 2013;33(4):423-32.
Moreira A, Carmo E, Wanderley P, de Souza E, de Oliveira E. Inhibitory effect of the essential oil from Hyptis suaveolens (l.) Poit on the growth and aflatoxins synthesis of Aspergillus flavus. J Life Sci. 2013;7(3):276-81.
Nostro A, Scaffaro R, D’Arrigo M, Botta L, Filocamo A, Marino A, et al. Study on carvacrol and cinnamaldehyde polymeric films: mechanical properties, release kinetics and antibacterial and antibiofilm activities. J Microbiol Biotechnol. 2012;96(4):1029-38.
Ramos M, Jiménez A, Peltzer M, Garrigós MC. Characterization and antimicrobial activity studies of polypropylene films with carvacrol and thymol for active packaging. J Food Eng. 2012;109(3):513-9.
Reddy B, Angers P, Gosselin A, Arul J. Characterization and use of essential oil from Thymus vulgaris against Botrytis cinerea and Rhizopus stolonifer in strawberry fruits. Phytochemistry. 1998;47(8):1515-20.
Sanla-Ead N, Jangchud A, Chonhenchob V, Suppakul P. Antimicrobial activity of cinnamaldehyde and eugenol and their activity after incorporation into cellulosebased packaging films. Packag Technol Sci. 2012;25(1):7-17.
Sundrarajan M, Rukmani A. Durable antibacterial finishing on cotton by impregnation of limonene microcapsules. Advanced Chemistry Letters. 2013;1(1):40-3.
Ye H, Shen S, Xu J, Lin S, Yuan Y, Jones GS. Synergistic interactions of cinnamaldehyde in combination with carvacrol against food-borne bacteria. Food Control. 2013;34(2):619-23.
Wattanasatcha A, Rengpipat S, Wanichwecharungruang S. Thymol nanospheres as an effective anti-bacterial agent. Int J Pharm. 2012;434(1):360-5.