2002, Número 4
<< Anterior Siguiente >>
Rev Inst Nal Enf Resp Mex 2002; 15 (4)
Caracterización preliminar de la composición proteica del polvo de casas localizadas en diferentes puntos de la Zona Metropolitana de la Ciudad de México
Haselbarth LMMM, Pérez NJ, Arreguín ER
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 50
Paginas: 206-213
Archivo PDF: 84.43 Kb.
RESUMEN
Introducción: Uno de los problemas respiratorios más importantes en niños es el asma. Actualmente, se reconoce que el principal factor de riesgo para esta enfermedad es la exposición a alergenos intramuros y se sabe que, el polvo casero contiene muchos de éstos. En México no existen este tipo de estudios, a pesar de que el asma se presenta entre el 5 y el 10% de la población.
Objetivo: Caracterizar cualitativa y cuantitativamente las proteínas presentes en el polvo de casas de niños que viven en la Zona Metropolitana de la Ciudad de México (ZMCM) y determinar la posible relación de esta caracterización con algunas condiciones de vivienda (como son: humedad, presencia o ausencia de mascotas y de alfombra).
Material y métodos: Se analizó un total de 31 muestras de polvo de casas de niños seleccionados aleatoriamente, quienes provienen de escuelas públicas donde prevalece un alto índice de síntomas respiratorios. Al polvo se le cuantificó las proteínas por método colorimétrico y estas últimas, fueron caracterizadas por medio de la electroforesis en gel de sodio dodecil sulfato de poliacrilamida.
Resultados: En este estudio se encontró que el polvo está constituido por el 0.2% de proteínas, con concentraciones que van de 0.036 a 9.03mg/g (de polvo colectado). No hubo ninguna relación entre las concentraciones de proteínas y las condiciones de vivienda anteriormente mencionadas (prueba de Mann-Whitney). Con respecto al análisis cualitativo y considerando todas las condiciones de vivienda estudiadas, el grupo de proteínas más frecuente y abundante de todas, fue el que presentó un peso molecular entre 13.6-16.5kDa. Otros grupos de proteínas importantes por su frecuencia de aparición tuvieron 10.6-13.5, 34.6-37.5, 40.6-43.5 y 58.6-61.5kDa. La presencia de estas proteínas no dependió de las condiciones de vivienda aquí estudiadas; sin embargo, las proteínas de 40.6-43.5kDa sí presentaron una asociación estadísticamente significativa (p‹0.05) con el uso de alfombra (prueba exacta de Fisher). Asimismo, se encontró que estas mismas proteínas tienen una probabilidad de 6.86 veces más (I.C. 1.10,42.76) de encontrarse en casas con alfombras que en las casas que no la tienen (razón de momios). Este es el primer estudio preliminar sobre la caracterización proteica del polvo intramuros hecho en México que servirá de base para estudios posteriores de contaminación biológica.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Hyde HA. Atmospheric pollens grains and spores in relation to allergy II. Clin Allergy 1973;3:109-126.
Chapman MD, Platts-Mills TAE. Purification and characterization of the allergen from Dermatophagoides pteronyssinus-antigen p1. J Immunol 1980;125:587-592.
Second international workshop. England. J Allergy Clin Immunol 1992;89:1046-1060.
Jöelle LM, Christiane EM, Gabriel P, Francois XD, Bernard D, Anne W, et al. Mapping of Dermatophagoides farinae mite allergens by two dimensional immunoblotting. J Allergy Clin Immunol 1998;102:631-636.
Mills KL, Hart BJ, Lynch NR, Thomas WR, Smith W. Molecular characterization of the group 4 house dust mite allergen from Dermatophagoides pteronyssinus and its amylase homologue from Euroglyphus maynei. Int Arch Allergy Immunol 1999;120:100-107.
Shwu HL, Hsin-Zu C, Gan-Guang L, Kaw-Yan C. Acid-induced polymerization of the group 5 mite allergen from Dermatophagoides pteronyssinus. Biochem Biophys Res Commun 2001;285:308-312.
Cecile K, Richard JS, Robert LM, Gaven ER, Philip JT, Geoffrey AS. The isolation and characterization of a novel collagenolytic serine protease allergen (Der p 9) from the dust mite Dermatophagoides pteronyssinus. J Allergy Clin Immunol 1996;98:739-747.
Stewart GA, Butcher A, Turner KJ. Characterization of a very high density lipoprotein allergen, Dpt 4, from house dust mite Dermatophagoides pteronyssinus. Int Arch Allergy Appl Immunol 1983;71:340-345.
Lin KL, Hsieh KH, Thomas WR, Chiang BL, Chua KY. Characterization of Der p V allergen, cDNA analysis, and IgE-mediated reactivity to the recombinant protein. J Allergy Clin Immunol 1994;94(6 Pt 1):989-996.
Stewart GA. Isolation and characterization of the allergen Dpt 12 from Dermatophagoides pteronyssinus by chromatofocising. Int Arch Allergy Appl Immunol 1982;69:224-230.
Lind P. Purification and partial characterization of two major allergens from the house dust mite Dermatophagoides pteronyssinus. J Allergy Clin Immunol 1985;76:753-761.
Tsai LC, Chao PL, Hung MW, Sun YC, Kuo IC, Chua KY, et al. Protein sequence analysis and mapping of IgE and IgG epitopes of an allergenic 98-kDa Dermatophagoides farinae paramyosin, Der f 11. Allergy 2000;55:141-147.
Seiji K, Takayuki S, Tsunehiro A, Takashi K, Shinji T, Seiko S. Der f 16: a novel gelsolin-related molecule identified as an allergen from the house dust mite, Dermatophagoides farinae. FEBS Lett 2002;516:234-238.
Smith AM, Benjamin DC, Derewenda U, Smith WA, Thomas WR, Chapman MD. Sequence polymorphisms and antibody binding to the group 2dust mite allergens. Int Arch Allergy Immunol 2001;124:61-63.
Karla LA, Virginia PLF, Constance O, Martin DC, Candida RM, Charles KN. Blomia tropicalis and cockroaches as important allergens. Research Trends ACI International 1999;11:167-170.
Caraballo L, Puerta L, Jiménez S, Martínez B, Mercado D, Avjiouglu A, et al. Cloning and IgE binding of a recombinant allergen from the mite Blomia tropicalis, homologous with fatty acid-binding proteins. Int Arch Allergy Immunol 1997;112:341-347.
Puerta L, Caraballo L, Fernández-Caldas E, Avjioglu A, Marsh DG, Lockey RF, et al. Nucleotide sequence analysis of a complementary DNA coding for a Blomia tropicalis allergen. J Allergy Clin Immunol 1996;98(5 Pt 1):932-937.
Eriksson TL, Johansson E, Whitley P, Schmidt M, Elsayed S, Van Hage-Hamsten M. Cloning and characterization of a group II allergen from the dust mite Tyrophagus putrescentiae. Eur J Biochem 1998;251:443-447.
Eriksson TL, Whitley P, Johansson E, Van Hage-Hamsten M, Gafvelin G. Identification and characterization of two allergens from the dust mite Acarus siro, homologous with fatty acid-binding proteins. Int Arch Allergy Immunol 1999;119:275-281.
Varela J, Ventas P, Carreira J, Barbas JA, Gimenez-Gallego G, Polo F. Primary structure of Lep d I, the main Lepidoglyphus destructor allergen. Eur J Biochem 1994;225:93-98.
Elfman LH, Whitley P, Schmidt M, Van Hage-Hamsten M. IgE binding capacity of synthetic and recombinant peptides of the mayor storage mite (Lepidoglyphus destructor) allergen, Lep d 2. Int Arch Allergy Immunol 1998;117:167-173.
Arlian LG, Neal JS, Morgan MS, Rapp CM, Clobes AL. Distribution and removal of cat, dog and mite allergens on smooth surfaces in homes with and without pets. Ann Allergy Asthma Immunol 2001;87:296-302.
Lewis RD, Breysse PN, Lees PS, Diener-West M, Hamilton RG, Eggleston P. Factors affecting the retention of dust mite allergen on carpet. Am Ind Hyg Assoc J 1998;59:606-613.
Van Strien RT, Verhoeff AP, Van Wijnen JH, Doekes G, De Meer GE, Brunekreef B. Der p I concentrations in mattress surface and floor dust collected from infant’s bedroom. Clin Exp Allergy 1995;25:1184-1189.
Jones AP. Asthma and the home environment. J Asthma 2000;37:103-124.
Moscato G, Perfetti L, Galdi E, Pozzi V, Minoia C. Levels of house-dust-mite allergen in homes of nonallergic people in Pavia, Italy. Allergy 2000;55:873-878.
Mihrshahi S, Marks G, Vanlaar C, Tovey E, Peat J. Predictors of high house dust mite allergen concentrations in residential homes in Sydney. Allergy 2002;57:137-142.
Paolo C, Marco M, Daniela A, Domenico C. Allergens in indoor air: environmental assessment and health effects. Sci Tot Environ 2001;270:33-42.
Fernández-Caldas E, Codina R, Ledford DK, Trudeau WL, Lockey RF. House dust mite, cat, and cockroach allergen concentrations in daycare centers in Tampa, Florida. Ann Allergy Asthma Immunol 2001;87:196-200.
Perfetti L, Galdi E, Pozzi V, Moscato G. Sampling of allergens in dust deposited in the workplace. G Ital Med Lav Ergon 2001;23:52-54.
Perzanowski MS, Ronmark E, Nold B, Lundback B, Platts-Mills TA. Relevance of allergens from cats and dogs to asthma in the northernmost province of Sweden: schools as a major site of exposure. J Allergy Clin Immunol 1999;103: 1018-1024.
Almqvist C, Larsson PH, Egmar AC, Hedren M, Malmberg P, Wickman M. School as a risk environment for children allergic to cats and a site for transfer of cat allergen to homes. J Allergy Clin Immunol 1999;103:1012-1017.
33 Sidenius KE, Hallas TE, Brygge T, Poulsen LK, Mosbech H. House dust mites and their allergens at selected locations in the homes of house dust mite-allergic patients. Clin Exp Allergy 2002;32:1299-1304.
34 Gianna M, Luca P. The role of indoor pollution on bronquial hyperreactivity and asthma. Indoor Environ 1995;4:95-101.
35 Ian B. Allergic reactions to arthropods. Indoor Environ 1993;2:64-70.
36 Munir AKM. Environmental factors influencing the levels of indoor allergens. Pediatr Allergy Immunol 1995;6(7 Suppl):13S-21S.
37 Prieto UL, Sienra MJJ, Del Río NBE, Mercado OVM. Skin tests for different species of acari in asthmatic children from Mexico City. Rev Alerg Mex 1995;42:49-53.
38 Alvarez MJ, Olaguibel JM, Acero S, Quirce S, García BE, Carrillo T, et al. Indoor allergens and dwelling characteristics in two cities in Spain. J Investig Allergol Clin Immunol 1997;7:572-577.
39 De Lucca SD, O’meara TJ, Tovey ER. Exposure to mite and cat allergens on a range of clothing items at home and the transfer of cat allergen in the workplace. J Allergy Clin Immunol 2000;106:874-879.
40 Liccardi G, Cazzola M, D’Amato M, D’Amato G. Pets and cockroaches: two increasing causes of respiratory allergy in indoor environments. Characteristics of airways sensitization and prevention strategies. Respir Med 2000;94:1109-1118.
41 Spitzauer S, Pandjaitan B, Muhl S, Ebner C, Kraft D, Valenta R, et al. Major cat and dog allergens share IgE epitopes. J Allergy Clin Immunol 1997;99:100-106.
42 Smith PK, Krohn RI, Hermanson GT, Mallia AK, Gartner FH, Provenzano MD, et al. Measuremente of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem 1985;150:76-85.
43 Laemmli K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970;227: 680-685.
44 Martínez L. Evaluación de aeroalergenos en ambientes intramuros y extramuros de pacientes asmáticos. (Tesis de licenciatura). México: UNAM, 1994:61.
45 Egmar AC, Emenius G, Almqvist C, Wickman M. Cat and dog allergen in mattresses and textile covered floors of homes do or do not have pets, either in the past or currently. Pediatr Allergy Immunol 1998;9:31-35.
46 Ginger LC, Harriet AB, Douglas WD, Michael LM, Scott TW, Diane RG. Limitations of a home characteristics questionnaire as predictor of indoor allergen levels. Am J Respir Crit Care Med 1998;157:1536-1541.
47 Witteman AM, Van Leeuwen J, Perdok GJ, Van Der Zee JS, Stapel SO, Aalberse RC. Human proteins in house dust. Allergy 1993;48:383-384.
48 Custovic A, Simpson B, Simpson A, Hallam C, Craven M, Woodcock A. Relationship between mite, cat, and dog allergens in reservoir dust and ambient air. Allergy 1999;54:612-616.
49 Custovic A, Green R, Fletcher A, Smith A, Pickering CA, Chapman MD, et al. Aerodynamic properties of the major dog allergen Can f 1: distribution in homes, concentration, and particle size of allergen in the air. Am J Respir Crit Care Med 1997;155:94-98.
50 Custovic A, Simpson A, Pahdi H, Green RM, Chapman MD, Woodcock A. Distribution, aerodynamic characteristics, and removal of the major cat allergen Fel d 1 in British Homes. Thorax 1998;53:33-38.