medigraphic.com
ISSN 1028-4796 (Impreso)

2015, Número 3

<< Anterior Siguiente >>

Rev Cubana Plant Med 2015; 20 (3)


Actividad antioxidante, contenido fenólico total y citotoxicidad de extractos polares obtenidos de plantas antidiabéticas colombianas

Rivas MKE, Muñoz DL, Pino BCN, Balcázar MN

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 32
Paginas: 277-289
Archivo PDF: 225.18 Kb.


RESUMEN

Introducción: El uso tradicional de especies vegetales como medicina natural antidiabética es una práctica común en el pacífico colombiano, A. altilis, B. picta, S. malaccensis, P. microphylla y P. quadrangularis; son cinco especies que gozan de un amplio reconocimiento como antidiabéticos naturales a nivel regional, sin la existencia de evidencias experimentales que validen dicha apreciación.
Objetivo: evaluar el contenido total en compuestos fenólicos, potencial antioxidante y actividad citotóxica de extractos polares preparados de cinco especies vegetales usadas como antidiabéticos naturales en la medicina tradicional colombiana.
Métodos: los extractos de hojas (hojas y tallos para P. microphylla) se obtuvieron por maceración en etanol al 96% o H2O destilada, según el caso. La actividad antioxidante fue evaluada por los ensayos espectrofotométricos DPPH 2,2-difenil-1- picrilhidracil y ABTS 2,2'-azino-bis (ácido 3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico), mientras que el contenido total en moléculas fenólicas se determinó por el método de folinciocalteu. Además, la actividad citotóxica fue comprobada en las líneas celulares HEP-G2 (hepatocarcinoma humano) y C2C12 (Miocarcinoma de ratón).
Resultados: los extractos etanólicos obtenidos de A. altilis, S. malaccensis y B. picta, evidenciaron el mejor comportamiento antioxidante en ambos métodos, con propiedades comparables a las vitaminas E y C. Así mismo, en cuanto a las propiedades tóxicas de los extractos A. altilisreporto el mayor porcentaje de mortalidad en células C2C12, con un valor LC50 de 24,9 ± 0,67µg/mL, comparable a la citotoxicidad ejercida por la Anfotericina B. Mientras, en células Hep-G2 el mayor efecto tóxico fue evidenciado para P. quadrangularis con un LC50 de 36,4 ± 5,79µg/mL.
Conclusiones: el potencial antioxidante evidenciado por los extractos etanólicos y acuosos de A. altilis, S. malaccensis, B. picta, P. quadrangularis y P. microphyllase correlacionó en 62,39% con su contenido total en moléculas fenólicas. Todos los extractos presentaron actividad citotóxica cincuenta a concentraciones superiores de sus rangos de actividad antioxidante.



REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Bernal HY, García H, Quevedo F. Pautas para el conocimiento, conservación y uso sostenible de las plantas medicinales nativas en Colombia; 2011. p. 236.

  2. Elekofehinti OO. Saponins: Anti diabetic principles from medicinal plants – A review. Pathophysiology. 2015;1:1–9.

  3. Gautam B, Vadivel V, Stuetz W, Biesalski HK. Bioactive compounds extracted from Indian wild legume seeds: antioxidant and type II diabetes-related enzyme inhibition properties. Int J Food Sci Nutr. 2012;63(2):242–5.

  4. Ospina LF, Pinzón R. plantas antidiabéticas colombianas. Rev Colomb ciencias Quim. 1995;23:1–14.

  5. Torres F, Paz G, Zapata M. Las plantas pueden ser fuente de compuestos antidiabéticos que aún no han sido científicamente validados. Ciencia & Salud. 2013;1(3):11–8.

  6. Joseph B, Jini D. Insisting into the role of antioxidant enzymes for salt tolerance in plants. Int J Bot. 2010;6(4):456–64.

  7. Gill NS, Dhawan S, Jain A, Arora R, Bali M. Antioxidant and anti-ulcerogenic activity of wild Punica granatum ethanolic seed extract. J Med Plant. 2012;6(1):47–55.

  8. Mahajan M, Kumar S. Effect of Quercetin and Epicatechin on the transcript Expression and Activity of Antioxidant Enzymes in Tobacco Seedlings. American J Biochem Mol Biol. 2013;3(1):81–90.

  9. Maldonado O, Nahúm E, Guapillo M, Ceballos G. Radicales libres y su papel en las enfermedades crónico degenerativas. Rev Médica Univ Veracruzana. 2010 Jul- Dic:32–9.

  10. Siddesha JM, Angaswamy N, Vishwanath BS. Phytochemical screening and evaluation of in vitro angiotensin-converting enzyme inhibitory activity of Artocarpus altilis leaf. Nat Prod Res. 2011;25(20):1931–40.

  11. Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Sci Technol. 1995;28(1):25–30.

  12. Bounatirou S, Smiti S, Miguel MG, Faleiro L, Rejeb MN, Neffati M, et al. Chemical composition, antioxidant and antibacterial activities of the essential oils isolated from Tunisian Thymus capitatus Hoff. et Link. Food Chem. 2007;105(1):146–55.

  13. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice C, et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol. 1999 May;26(9–10):1231–7.

  14. Erdemoglu N, Turan NN, Akkol EK, Sener B, Abacıoglu N. Estimation of antiinflammatory, antinociceptive and antioxidant activities on Arctium minus (Hill) Bernh. ssp. minus. J Ethnopharmacol. 2009 Jan 21;121(2):318–23.

  15. Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983 Dec 16;65(1–2):55–63.

  16. Prior RL, Cao G, Martin A, Sofic E, McEwen J, O’Brien C, et al. Antioxidant Capacity As Influenced by Total Phenolic and Anthocyanin Content, Maturity, and Variety of Vaccinium Species. J Agric Food Chem. 1998;46(7):2686–93.

  17. Ramirez C, Andersen M, Gardner PT, Morrice PC, Wood SG, Duthie SJ, et al. Anthocyanin-rich extract decreases indices of lipid peroxidation and DNA damage in vitamin E-depleted rats. Free Radic Biol Med. 2001;31(9):1033–7.

  18. Miller NJ, Rice-Evans CA. Factors influencing the antioxidant activity determined by the ABTS.+ radical cation assay. Free Radic Res. 1997;26(3):195–9.

  19. Wang Y, Xu K, Lin L, Pan Y, Zheng X. Geranyl flavonoids from the leaves of Artocarpus altilis. Phytochemistry. 2007;68(9):1300–6.

  20. Lin CN, Lu CM, Lin HC, Fang SC, Shieh BJ, Hsu MF, et al. Novel antiplatelet constituents from formosan moraceous plants. J Nat Prod. 1996;59(9):834–8.

  21. Lu YH, Lin CN, Ko HH, Yang SZ, Tsao LT, Wang JP, et al. Two Novel and Anti- Inflammatory Constituents of Artocarpus rigida. Helv Chim Acta. 2002;85(6):1626–32.

  22. Fukai T, Satoh K, Nomura T, Sakagami H. Antinephritis and radical scavenging activity of prenylflavonoids. Fitoterapia. 2003;74(7–8):720–4.

  23. Savitha RC, Padmavathy S, Sundhararajan A. Invitro antioxidant activities on leaf extracts of syzygium malaccense (L.) merr and perry. Anc Sci Life. 2011;30(4):110–3.

  24. Pino Benítez N. Plantas útiles del Departamento del Chocó. Parte 1, Extractos. 1st ed. Medellín-Colombia: Uryco Ltda; 2009. p. 312.

  25. Cerón I, Higuita J, Cardona C. Capacidad antioxidante y contenido fenólico total de tres frutas cultivadas en la región andina. Vector 5. 2011;5(2010):17–26.

  26. Bansal P, Paul P, Mudgal J, Nayak P, Thomas Pannakal S, Priyadarsini KI, et al. Antidiabetic, antihyperlipidemic and antioxidant effects of the flavonoid rich fraction of Pilea microphylla (L.) in high fat diet/streptozotocin-induced diabetes in mice. Exp Toxicol Pathol. 2012;64(6):651–8.

  27. Mishra A, Sharma AK, Kumar S, Saxena AK, Pandey AK. Bauhinia variegata leaf extracts exhibit considerable antibacterial, antioxidant, and anticancer activities. Biomed Res Int. 2013 August;1:10.

  28. Alade GO, Adebajo AC, Omobuwajo OR, Proksch P, Verspohl EJ. Quercetin, a minor constituent of the antihyperglycemic fraction of Bauhinia monandra leaf. J Diabetes. 2012;4:439–41.

  29. Ren Y, Kardono BS, Riswan S, Chai H, Farnsworth NR, Soejarto DD, et al. Cytotoxic and NF-kappaB inhibitory constituents of Artocarpus rigida. J Nat Prod. 2010;73(5):949–55.

  30. Su D, Cheng Y, Liu M, Liu D, Cui H, Zhang B, et al. Comparision of piceid and resveratrol in antioxidation and antiproliferation activities in vitro. PLoS One. 2013;8(1):54-50.

  31. Augusta IM, Resende JM, Borges SV, Cristina M, Maia A, Antonieta M, et al. Caracterização física e química da casca e polpa de jambo vermelho (Syzygium malaccensis, (L.) Merryl & Perry). Ciència e Tecnol Aliment. 2010;30(4):928–32.

  32. Asadujjaman M, Mishuk AU, Hossain MA, Karmakar UK. Medicinal potential of Passiflora foetida L. plant extracts: biological and pharmacological activities. J Integr Med. 2014;12(2):121–6.




2020     |     www.medigraphic.com