medigraphic.com
ISSN 1028-4796 (Impreso)

2015, Número 3

<< Anterior Siguiente >>

Rev Cubana Plant Med 2015; 20 (3)


Efectos del extracto etanólico de Cenostigma macrophyllum Tul. (caneleiro) sobre parámetros reproductivos de ratas hembras

Barbosa SD, Guerra OJM, Neto BM, Bezerra SPA, Sena CCL, Chaves MH, Carvalho MMC, Raposo CAP

Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 38
Paginas: 265-276
Archivo PDF: 187.69 Kb.


RESUMEN

Introducción: Cenostigma macrophyllum Tul. conocido como Caneleiro demuestra actividades antiinflamatorio, antiulcerogénico y antinociceptiva.
Objetivo: evaluar los efectos del extracto etanólico de hojas de C. macrophyllum Tul. en los parámetros de reproducción de ratas Wistar.
Métodos: para el ensayo de actividad estrogénica se utilizaron 32 ratas hembras ovariectomizadas (n = 8) tratadas durante cuatro días: I- NaCl 0,9% 10 mL/kg de peso corporal por vía oral + aceite de maíz 1mL/kg por vía intramuscular (IM); IINaCl 0,9% por vía oral + estradiol 10 µg/kg IM; III - extracto 500mg/kg por vía oral + aceite de maíz IM y IV- extracto oral + estradiol IM. Los úteros fueron pesados. Para la evaluación del ciclo estral, 12 ratas hembra fueron examinadas diarias por frotis vaginal, antes, después y durante el tratamiento (16 días) con el extracto (500mg/kg). Se midió la duración de cada fase del ciclo estral y el intervalo entre ciclos. Para el estudio de toxicidad reproductiva se utilizaron 16 ratas hembras (n = 8) que fueron tratados, por vía oral, durante todo el período de gestación con NaCl 0,9% (10mL/kg) y extracto (500 mg/kg). Las ratas fueron anestesiadas y laparotomizadas para evaluar el útero y los fetos. Además, se recogieron el corazón, el hígado y los riñones y se sometieron a evaluación histopatológica.
Resultados: el peso del útero no fue diferente entre los grupos. Hubo una disminución en el número de estro y un aumento en la duración del ciclo estral en los grupos tratamiento y post-tratamiento. El extracto no causó toxicidad en ratas preñadas y ni muerte fetal o signos de alteraciones en los recién nacidos.
Conclusiones: el extracto interfiere en el ciclo estral, pero no presenta toxicidad sobre la gestación y ni altera macroscópicamente o microscópicamente las estructuras de los órganos analizados.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Ministério do Meio Ambiente, dos Recursos Hídricos e da Amazônia. Legal. Primeiro relatório nacional para a Convenção sobre Biodiversidade Biológica – Brasil. Ministério do Meio Ambiente, dos Recursos Hídricos e da Amazônia Legal, Brasília;1998.

  2. Torres AR, Oliveira RAG, Diniz MFFM, Araújo EC. Estudo sobre o uso de plantas medicinais em crianças hospitalizadas da cidade de João Pessoa: riscos e benefícios. Rev Bras Farmacogn. 2005;(15):373-80.

  3. Sousa CD, Silva HR, Vieira GM, Ayres MC, Costa CD, Araújo DS, et al. Fenóis totais e atividade antioxidante de cinco plantas medicinais. Quim Nova. 2007;30(2):351-55.

  4. Brandão MG, Consenza GP, Moreira RA, Monte RL. Medicinal plants and other botanical products from the Brazilian Official Pharmacopeia. Rev Bras Farmacog. 2006;(16):408-20.

  5. Brandão MG, Consenza GP, Moreira RA, Monte RL. Medicinal plants and other botanical products from the Brazilian Official Pharmacopeia. Rev Bras Farmacog. 2008;(18):127-34.

  6. Goldwyn S, Lazinsky A, Wei H. Promotion of health by soy isoflavones: efficacy, benefit and safety concerns. Drug Metabolism and Drug Interaction. 2000;(17):261–89.

  7. Suthar AC, Banavalikar MM, Biyani MK. Pharmacological activities of genistein, an isoflavone from soy (Glycine max): part Ianti- cancer activity. Indian Journal of Experimental Biology. 2001;(39):511–19.

  8. Suthar AC, Banavalikar MM, Biyani MK. Pharmacological activities of genistein, an isoflavone from soy (Glycine max): part IIanti- cholesterol activity, effects on osteoporosis and menopausal symptoms. Indian Journal of Experimental Biology. 2001;(39):520–25.

  9. Kuiper GG, Carlsson B, Gradien K. Comparison of the ligand binding specificity and transcript tissue distribution of estrogen receptors alpha and beta. Endocrinology. 1998;(70):138.

  10. Tham DM, Gardner CD, Haskell WL. Potential health benefits of dietary phytoestrogens: a review of the clinical, epidemiological and mechanistic evidence. J Clin Endocrinol Metab. 1998;(83):2223-35.

  11. Kurzer MS, Xu X. Dietary phytoestrogens. Annu Rev Nutr. 1997;(17):353-81.

  12. Hegnauer R, Barkmeijer RJG. Relevance of seed polyssacarides and flavonóides for the classification of the Leguminosae: a chemotaxonomic approach. Phytochemistry. 1993;(34):3.

  13. Sales BHLN. Flavonóides de Lonchocarpus subguacescens (Benth) – Leguminosae e síntese de α- Hidroxichalconas. [dissertation]. Campinas (SP): Instituto de Química da UNICAMP; 1994.

  14. Santos CA, Torres KR, Leonart R. Plantas medicinais: Herbarium, flora et scientia. 2nd ed. São Paulo: Editora Ícone; 1988.

  15. Rocha H, Silva CC, Neto LB, Lopes JA, Citó AM, Chaves MH. Constituintes químicos das cascas do caule de Cenostigma macrophyllum: ocorrência de colesterol. Quim Nova. 2007;30(8):1877-881.

  16. Kang DG, Yin MH, Oh H, Lee DH, Lee HS. Inhibiting activities of the secondary metabolites of Phlomis brunneogaleata against parasitic protozoa and plasmodia enoyl-ACP reductase, a crucial enzyme in fatty acid biosynthesis. Planta Medica. 2004;(70):718.

  17. Saponara R, Bosisio E. Inhibition of CAMP-Phosphodiesterase by biflavones of Ginkgo biloba in rat adipose tissue. Journal of Natural Products. 1997;(61):1386.

  18. Rodrigues MD, Martins-da-Silva RC, Secco RDS. Caesalpinieae (Leguminosae- Caesalpinioideae) from the Experimental field of the Embrapa Eastern Amazon, Moju, Pará State, Brazil. Hoehnea. 2012;39(3):489-516.

  19. Coelho NP, Nogueira VC, Cardoso MA, Lopes LD, Nascimento PP, Rocha ED, et al. Cenostigma macrophyllum Tul. on the healing of skin wounds in rats with Diabetes mellitus. Acta Cir Bras. 2013;28(8):594-600.

  20. Nascimento JM, Conceição GM. Plantas medicinais e indicações terapêuticas da comunidade quilombola olho d’água do raposo, Caxias, Maranhão, Brasil. BioFar. 2011;6(2):138-51.

  21. Hanrahan JR, Chebib M, Davucheron NL, Hall BJ, Johnston GAR. Semi synthetic Preparation of amentoflavone: a negative modator at GABA receptors Bioorganic. Medicinal Chemistry Letters. 2003;(13):2281.

  22. Silva MI, Gondim AP, Nunes IF, Sousa FC. Utilização de fitoterápicos nas unidades básicas de atenção à saúde da família no município de Maracanaú (CE). Rev Bras farmacogn. 1997;(16):455-62.

  23. Marcondes FK, Bianchi FJ, Tanno AP. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations. Braz. J Biol. 2001;(62):609-14.

  24. US EPA. Guidelines for reproductive toxicity risk assessment. EPA/630/R- 96/009: Washington;1996.

  25. Zenick H, Clegg ED. Assessment of male reproductive toxicity: A risk of assessment approach. In: Principles and methods of toxicology. In: New York: Raven Press; 1989. p. 275-309.

  26. Khera KS. Maternal toxicity of drugs and metabolic disorders: a possible etiologic factor in the intrauterine death and congenital malformations: a critique on human data. Rev Toxicol. 1987;(17):345-75.

  27. Paria BC, Lim K, Das SK, Reese J, Dey SK. Molecular signaling in uterine receptivity for implantation. Cell & Develop Biology. 2000;(11):67-76.

  28. Beaudoin AR. Embryology and teratology. In: Baker HJ, Lindsey JR, Weisbroth SH. The laboratory rat (Research application). New York: Academic Press. 1980;2:75-94.

  29. Allen WR. Maternal recognition and maintenance of pregnancy in the mare. Anim. Reprod. 2005;2(4):209-23.

  30. Jagadish VK, Rana AC. Preliminary study on fertility activity of Calotropis procera roots in female rats. Fitoterapia. 2002;(73):111-15.

  31. Dao B. Anti-Implantation Activity of Antiestrogens and Mifepristone. Contraception. 1996;(54): 253-8.

  32. Ghandi M, Lal R, Sankaranarayanan A, Sharma PL. Post-coital antifertility activity of Ruta gravoleolens in female rats and hamsters. Journal of Ethnopharmacology. 1991;(34):49-50.

  33. Lindzey J, Korach K. Estrogen Action on the Female Reproductive Tract. In: Knobil E, Neill JD. Encyclopedia of Reproduction. San Diego: Academic Press; 1999. p. 79-86.

  34. Frohberg H. An introduction to research teratology. In: Neubert D, Merker HJ, Kwasigroch TE. Methods in prenatal toxicology. Stuttgart: Georg Thieme Publisher; 1977. p. 1-13.

  35. Chahoud I, Ligensa A, Dietzel L, Faqi AS. Correlation between maternal toxicity and embryo/fetal effects. Reprod Toxicol. 1999;(13):375-81.

  36. Long JA, Evans HM. The oestrus cycle in the rat and its associated phenomena. Mem Univ Calif. 1922;(6):1-111.

  37. Cooper RL, Goldman JM, Vandenbergh JG. Monitoring of the estrous in the laboratory rodent by lavage vaginal. In: Heidell, JJ, Chapin RE. Methods in Toxicology: Female Reproductive Toxicology. San Diego: Academic Press; 1993. p. 45-56.

  38. Freeman ME. The neuroendocrine control of the ovarian cycle of the rat. In Knobill and Neill (Ed.). The Physiology of reproduction, 2nd ed. New York: Raven Press; 1994. p. 12.




2020     |     www.medigraphic.com