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ISSN 2070-8718 (Impreso)

2010, Número 1

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Rev Cub Gen 2010; 4 (1)


Marcadores de daño oxidativo y defensa antioxidante en pacientes con Ataxia Espinocerebelosa tipo 2

Riverón FG, Martínez BO, Gutiérrez GR, Pandolfi BA, Pupo BJ, Pereira N, Velazquez PL

Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 33
Paginas: 42-47
Archivo PDF: 313.62 Kb.


RESUMEN

Evidencias recientes sugieren que el aumento del daño oxidativo, así como deficiencias en los sistemas de defensa antioxidantes podrían estar relacionados a la patogénesis de algunas ataxias hereditarias. El objetivo de este estudio fue evaluar algunos marcadores del estado redox en pacientes con ataxia espinocerebelosa tipo 2. En el estudio se incluyeron, muestras de 33 pacientes y 22 sujetos como controles, todos provenientes de la provincia de Holguín. Se determinaron los niveles plasmáticos de malondialdehído y las actividades enzimáticas de las enzimas Cu/Zn superóxido dismutasa y catalasa, por métodos espectrofotométricos. Además, se evaluó el daño del ADN en las células de sangre periférica mediante el ensayo Cometa. Los resultados obtenidos demuestran un aumento del daño oxidativo en los pacientes con ataxia espinocerebelosa tipo 2 en comparación con el grupo control. Además, se observa un incremento en las actividades de las principales enzimas antioxidantes, en los sujetos afectados. Estos hallazgos sugieren que el estado redox a nivel sistémico está alterado en pacientes con ataxia espinocerebelosa tipo 2.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Novo E and Parola M. Redox mechanisms in hepatic chronic wound healing and fibrogenesis. Fibrogenesis & Tissue Repair. 2008;1:5.

  2. Barnham K, Masters C & Bush A. Neurodegenerative diseases and oxidative stress. Nature. 2004;3:205-12.

  3. Bonnefont-Rousselot D, Lacomblez L, Jaudon M, Lepage S, Salachas F, Bensimon G, Bizard C, Doppler V, Delattre J, Meininger V. Blood oxidative stress in amyotrophic lateral sclerosis. J Neurol Sci. 2000;178(1):57-62.

  4. Gilgun-Sherki Y, Melamed E & Offen D. Oxidative stress induced-neurodegenerative diseases: the need for antioxidants that penetrate the blood brain barrier. Neuropharmacology. 2001;40:959-75.

  5. Tozzi G, Nuccetelli M, Lo Bello M Bernardini S, Bellincampi L, Ballerini S, Gaeta LM et al. Antioxidant enzymes in blood of patients with Friedreich’s ataxia. Arch Dis Child. 2002;86(5):376-9.

  6. Reichenbach J, Schubert R, Schindler D, Muller K, Bohles H, Zielen S. Elevated oxidative stress in patients with ataxia telangiectasia. Antioxid Redox Signal. 2002;4(3):465-9.

  7. Migliore L, Fontana I, Colognato R, Coppede F, Siciliano G, Murrib L. Searching for the role and the most suitable biomarkers of oxidative stress in Alzheimer’s disease and in other neurodegenerative diseases. Neurobiology Aging. 2005;26:587-95.

  8. Migliore L, Petrozzi L, Lucetti C, Gambaccini G, Bernardini S, Scarpato R, Trippi F, Barale R, Frenzilli G, Rodilla V, Bonuccelli U. Oxidative damage and cytogenetic analysis in leukocytes of Parkinson’s disease patients. Neurology. 2002;58(12):1809-15.

  9. Imbert G, Saudou F, Yvert G, Devys D, Trottier Y, Garnier JM, Weber C, Mandel JL, Cancel G, Abbas N, Dürr A, Didierjean O, Stevanin G, Agid Y, Brice A. Cloning of the gene for spinocerebellar ataxia 2 reveals a locus with high sensitivity to expanded CAG/glutamine repeats. Nature Genet. 1996;14:285-91.

  10. Beuge JA & Aust SD. Microsomal lipids peroxidation. Methods Enzymol. 1978;52:302-10.

  11. Marklund S & Marklund G. Involvement of superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. Eur J Biochem. 1974;47:469-74.

  12. Aebi H. Catalase in vitro. Meth Enzymol. 1984;105:121.

  13. Hartmann A, Agurell E, Beevers C, Brendler-Schwaab S, Burlinson B, Clay P, Collins A, Smith A. Speit G, et al. Recommendations for conducting the in vivo alkaline Comet assay. Mutagenesis. 2003;18:45-51.

  14. Collins AR, Dobson VL, Dusinska M, Kennedy G, Stetina R. The comet assay: what can it really tell us?. Mutat Res. 1997;375:183-93.

  15. Mates JM, Pérez-Gómez C, & Nuñez de Castro I. Antioxidant Enzymes and Human Diseases. Clinical Biochemistry. 1999;32(8):595-603.

  16. Delgado R, García J.C, Marqués L, Martínez I, Rodríguez J, Sánchez GG, Santos N, Velázquez L. Estudio de algunos parámetros relacionados con el equilibrio redox en pacientes Atáxicos tipo SCA-2 de la Provincia de Holguín. Rev Cub Farmacol. 2002;36(2):50-2.

  17. Bradley JL, Homayoun S, Hart PE, Schapira AH, Cooper JM. Role of oxidative damage in Friedreich’s ataxia. Neurochem Res. 2004;29(3):561-7.

  18. Galbusera C, Facheris M, Magni F, Galimberti G, Sala G, Tremolada L, Isella V, et al. Increased susceptibility to plasma lipid peroxidation in Alzheimer disease patients. Curr Alzheimer Res. 2004;1(2):103-9.

  19. Kawamoto EM, Munhoz CD, Glezer I, et al. Oxidative state in platelets and erythrocytes in aging and Alzheimer’s disease. Neurobiol Aging. 2005;26(6):857-64.

  20. Bernabucci U, Ronchi B, Lacetera N, Nardone A. Markers of oxidative status in plasma and erythrocytes of transition dairy cows during hot season. Journal of Dairy Science. 2002;85(9):2173–79.

  21. Sies H. Strategies of antioxidant defence. Eur J Biochem. 1993;215: 213-19.

  22. Aksoy Y, Sanal O, Metin A, Tezcan I, Ersoy F, Ogus H, Ozer N. Antioxidant enzymes in red blood cells and lymphocytes of ataxia-telangiectasia patients. Turk J Pediatr. 2004;46(3):204-7.

  23. Toscano A, Messina S, Campo GM, Di Leo R, Musumeci O, Rodolico C, Aguennouz M, Annesi G, Messina C, Vita G. Oxidative stress in myotonic dystrophy type 1. Free Radic Res. 2005;39(7):771-6.

  24. Nakamura J, Asakura S, Hester S, de Murcia G, Caldecott KW & Swenberg JA. Quantitation of intracellular NADPH can monitor an imbalance of DNA single strand break repair in base excision repair deficient cells in real time. Nucleic Acids Research. 2003;31(17):e10.

  25. Burney S, Niles JC, Dedon PC, Tannenbaum SR. DNA damage in deoxynucleosides and oligonucleotides treated with peroxynitrite. Chem Res Toxicol. 1999;12:513-20.

  26. Pool-Zobel BL, Abrahamse SL, Collins AR, Kark W, Gugler R, Oberreuther D, Gunther E, Treptow-van Lishaut S and Rechkemmer G. Analysis of DNA Strand Breaks, Oxidized Bases, and Glutathione S-Transferase P1 in Human Colon Cells from Biopsies. Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention. 1999;8:609–14.

  27. Esterbauer H, Eckl P, and Ortner A. Possible mutagens derived from lipids and lipid precursors. Mutat. Res. 1990;238:223-33.

  28. Cooke MS, Evans MD, Dizdaroglu M & Lunec J. Oxidative DNA damage: mechanisms, mutation and disease. FASEB J. 2003;17:1195-1214.

  29. Rotman G, Siloh Y. Ataxia-telangiectasia: is ATM a sensor of oxidative damage and stress?. Bioessays.1997;19:911-17.

  30. Barlow C, Dennery PA, Shigenaga MK, et al. Loss of the ataxia-telangiectasia gene product causes oxidative damage in target organs. Proc Natl Acad Sci USA. 1999;96: 9915-19.

  31. Rolig RL, McKinnon PJ. Linking DNA damage and neurodegeneration. Trends Neurosci. 2000;23:417-24.

  32. Caldecott KW. DNA single-strand breaks and neurodegeneration. DNA Repair. 2004;3:875-82.

  33. Teunissen CE, de Vente J, Steinbusch HW, De Bruijn C. Biochemical markers related to Alzheimer’s dementia in serum and cerebrospinal fluid. Neurobiol Aging. 2002;23(4):485-508.




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