2014, Número 2
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Rev Mex Patol Clin Med Lab 2014; 61 (2)
Perfil de resistencia bacteriana en hemocultivos realizados en población mexicana en los años del 2009 al 2011
Rodríguez MSE, Cervantes-Villagrana AR, Castañeda-Delgado JE, Presno-Bernal JM, Cervantes-Villagrana RD
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 19
Paginas: 108-114
Archivo PDF: 266.70 Kb.
RESUMEN
La resistencia farmacológica a los antibióticos es un problema muy importante de salud a nivel mundial. Se caracteriza por la baja o nula efectividad de los tratamientos contra infecciones bacterianas, lo cual favorece el incremento de la morbilidad y mortalidad en pacientes con septicemia. En México, parte del problema se ha atribuido a la automedicación y venta descontrolada de antibióticos. Sin embargo, hoy en día es necesario hacer énfasis en la regulación de productos farmacéuticos catalogados como genéricos o similares debido a que carecen de controles de calidad, lo que puede ocasionar una baja efectividad del medicamento y, por consiguiente, favorecer la resistencia farmacológica en la población mexicana. En el presente trabajo analizamos la prevalencia de la resistencia farmacológica en bacterias identificadas en hemocultivos de pacientes con septicemia en la Ciudad de México, Distrito Federal. Encontramos que los fármacos como linezolid, imipenem y gatifloxacina son los más efectivos contra las cepas bacterianas con mayor índice de farmacorresistencia en esta población. Las penicilinas fueron los fármacos con menor efectividad a causa de la farmacorresistencia bacteriana. Además, encontramos que las bacterias con mayor índice de farmacorresistencia en nuestro estudio fueron Staphylococcus hominis,
Acinetobacter baumannii y
Pseudomonas aeruginosa.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Acar JF, Goldstein FW. Consequences of increasing resistance to antimicrobial agents. Clin Infect Dis. 1998; 27 (suppl 1): S125-S130.
Heymann D, Dzenowagis J. Commentary: Emerging and other communicable diseases. Bull World Health Organ. 1998; 76 (6): 545-547.
Avorn J, Solomon DH. Cultural and economic factors that (mis)shape antibiotic use: the nonpharmacologic basis of therapeutics. Ann Intern Med. 2000; 133 (2): 128-135.
Benavides-Plascencia L, Aldama-Ojeda AL, Javier Vazquez H. Surveillance of antibiotic utilization and bacterial resistance profiles in tertiary level hospitals in Mexico City. Salud Pública Mex. 2005; 47 (3): 219-226.
Dreser A, Wirtz VJ, Corbett KK, Echaniz G. Antibiotic use in Mexico: review of problems and policies. Salud Pública Mex. 2008; 50 (suppl 4): S480- S487.
Jones RN, Fritsche TR, Moet GJ. In vitro potency evaluations of various piperacillin/tazobactam generic products compared with the contemporary branded (Zosyn, Wyeth) formulation. Diagn Microbiol Infect Dis. 2008; 61 (1): 76-79.
Lambert PA, Conway BR. Pharmaceutical quality of ceftriaxone generic drug products compared with Rocephin. J Chemother. 2003; 15 (4): 357-368.
Amabile-Cuevas C. Antibiotic resistance in Mexico: a brief overview of the current status and its causes. J Infect Dev Ctries. 2010; 4 (3): 126-131.
Martin CP, Talbert RL, Burgess DS, Peters JI. Effectiveness of statins in reducing the rate of severe sepsis: a retrospective evaluation. Pharmacotherapy. 2007; 27 (1): 20-26.
Pradipta IS, Sodik DC, Lestari K, Parwati I, Halimah E, Diantini A et al. Antibiotic resistance in sepsis patients: evaluation and recommendation of antibiotic use. N Am J Med Sci. 2013; 5 (6): 344-352.
Meletis G, Exindari M, Vavatsi N, Sofianou D, Diza E. Mechanisms responsible for the emergence of carbapenem resistance in Pseudomonas aeruginosa. Hippokratia. 2012; 16 (4): 303-307.
Mendoza-Olazaran S, Morfin-Otero R, Rodriguez-Noriega E, Llaca-Diaz J, Flores-Trevino S, Gonzalez-Gonzalez GM et al. Microbiological and molecular characterization of Staphylococcus hominis isolates from blood. PLoS One. 2013; 8 (4): e61161.
de Almeida LM, de Araujo MR, Sacramento AG, Pavez M, de Souza AG, Rodrigues F et al. Linezolid resistance in Brazilian Staphylococcus hominis strains is associated with L3 and 23S rRNA ribosomal mutations. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57 (8): 4082-4083.
Rumbo C, Gato E, Lopez M, Ruiz de Alegria C, Fernandez-Cuenca F, Martinez-Martinez L et al. The contribution of efflux pumps, porins and beta-lactamases to multi-drug resistance in clinical isolates of Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 12.
Lopez-Salas P, Llaca-Diaz J, Morfin-Otero R, Tinoco JC, Rodriguez-Noriega E, Salcido-Gutierres L et al. Virulence and antibiotic resistance of Enterococcus faecalis clinical isolates recovered from three states of Mexico. Detection of linezolid resistance. Arch Med Res. 2013; 21.
Flamm RK, Mendes RE, Ross JE, Sader HS, Jones RN. Linezolid surveillance results for the United States: LEADER surveillance program 2011. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57 (2): 1077-1081.
Chen H, Wu W, Ni M, Liu Y, Zhang J, Xia F et al. Linezolid-resistant clinical isolates of enterococci and Staphylococcus cohnii from a multicentre study in China: molecular epidemiology and resistance mechanisms. Int J Antimicrob Agents. 2013; 20.
Gutierrez O, Juan C, Cercenado E, Navarro F, Bouza E, Coll P et al. Molecular epidemiology and mechanisms of carbapenem resistance in Pseudomonas aeruginosa isolates from Spanish hospitals. Antimicrob Agents Chemother. 2007; 51 (12): 4329-4335.
Yang XJ, Chen Y, Yang Q, Qu TT, Liu LL, Wang HP et al. Emergence of cfr-harbouring coagulase-negative staphylococci among patients receiving linezolid therapy in two hospitals in China. J Med Microbiol. 2013; 62 (Pt 6): 845-850.