2005, Número 2
Efecto del virus de artritis encefalitis caprina en el aparato reproductor de machos caprinos
Martínez RHA, Ramírez ÁH, Tórtora PJ, Aguilar SA, Garrido FGI, Montaraz CJA
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 34
Paginas: 159-176
Archivo PDF: 553.80 Kb.
RESUMEN
Se evaluó el efecto del virus de artritis encefalitis caprina (AEC) en el aparato reproductor de machos caprinos. Catorce machos se dividieron en 4 grupos de estudio: I) testigos no infectados (n=3), II) infectados experimentalmente con la cepa FES-C.UNAM (n=3), III) naturalmente infectados (n=5) y IV) infectados experimentalmente con una cepa de referencia de la colección americana de tipos de cultivo (ATCC) (n=3). Cada 30 días durante todo el experimento (10 meses), se colectó sangre y semen para evaluar estado general y posibles alteraciones en sus genitales externos. No se encontraron diferencias entre los grupos en el diámetro escrotal, motilidad seminal, pH seminal, color y volumen del semen. Fueron detectados anticuerpos contra AEC por ELISA en suero y líquido seminal, en animales infectados con la cepa autóctona después de siete meses, los animales infectados experimentales con la cepa de referencia tres meses después y los animales naturalmente infectados permanecieron positivos durante todo el experimento. En líquido seminal se detectaron por inmunotransferencia proteínas a p14, p16, p19, p25 p45, p71, p90 y gp135 mil kDa y en suero anticuerpos contra las proteínas p16, p19, p25, p27, p71, p90 y gp 135 mil kDa. Después de diez meses los animales fueron sacrificados. A la necropsia no se encontraron alteraciones patológicas en los órganos genitales en los grupos I y IV. En el grupo II, solo un animal se encontró con granuloma en cabeza de epidídimo del testículo derecho con una sustancia cremosa amarillenta. En el grupo III, un animal fue encontrado con hidrocele y líquido seroso, otro con edema en la cabeza del epidídimo del testículo derecho y otro que presentó sincicios en vesícula seminal. Estudios inmunohistoquímicos evidenciaron antígenos del virus de AEC viral, en células epiteliales de vesícula seminal, ámpula y glándulas bulbouretrales en los grupos II, III y IV. Por PCR fue detectado el virus de AEC en líquido seminal al final del experimento. Histológicamente no se encontraron alteraciones, excepto un animal del grupo III que presentó sincicios en vesícula seminal. La presencia de antígeno en los tejidos, demuestra que pueden actuar como diseminador de AEC.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Rowe J D, East N E. Risk factors for transmission and methods for control of caprine arthritis-encephalitis virus infection. Vet Clin North Am Food Anim Retrovirus Pract 1997; 13 (I): 25-53.
East N E, Rowe JD, Dahlberg JE, Theilen GH, Pedersen NC. Modes of transmission of caprine arthritis encephalitis virus infection.Small Rumin Res 1993;10: 251-261.
Martinez HA, Ramirez AH, Tortora PJL, Montaraz CJA. Detection of antibodies in seminal liquid of animals infected with goats arthritis encephalitis by western blotting. International Conference and Workshop on animals Retroviruses 2000 September 3-5. Queens´ College Cambridge UK: 62.
Novelo BP, Martinez RHA, Tortora PJ, Ramirez AH. Serologic diagnosis of caprine arthritis encephalitis using an immunodiffusion test on bucks. 7th International Conference on goats 2000 May 15-21 Tours. France. 819 pp. Round. Table 3. Detection and prevention of CAE. International Goats Association 2000. Proceedings. Tome II. Nouzilly. France.37380.
Travassos C, Benoit C, Valas S, Da Silva A, Perrin G. Détection du virus de l´arthritis encéfalite caprine dans le sperma de boucs infectés expérimentalement. Vet Res 1998; 29:578-579.
Travassos CE, Benoit C., Valas S, Da Silva AG, Perrin G. Caprine arthritis-encephalitis virus in semen of naturally infected bucks. Small Rumin Res 1999; 32:101-106.
Van Voorhis BJ, Martinez A, Mayer K, Anderson DJ. Detection of Human immunodeficiency virus type 1 in semen from seropositive men using culture and polimerasa chain reaction deoxyribonucleic acid amplification techniques. Fertil Steril 1991; 55:588-594.
Nash JW, Hanson LA, Coats KSC. Bovine immunodeficiency virus in stud bull semen. Am J Vet Res 1995; 56:760-763.
De la Concha-Bermejillo A, Magnus-Corral S, Brodie SJ, Demartin JC. Venereal shedding of ovine lentivirus in infected rams. Am J Vet Res 1996; 57: 684-688.
Jordan HL, Liang Y, Hudson LC, Tompkins WA. Shedding of feline immunodeficiency virus in semen of domestic cats during acute infection. Am J Vet Res 1999; 60:211-215.
Nazara SJ, Trigo FJ, Suberbie E, Madrigal V. Estudio serológico de la artritis encefalitis caprina en México.Téc Pec Méx 1985; 48:99-101.
Vitu C, Russo P, Vignoni M, Arthrite-Encephalite caprine: Essai D´une preparation vaccinale adjuvee-II. Etude de la reponse anticorps. Com Immun Microbiol Infect Dis 1993;2:137-144.
Russo P, Vitu C, Fontaine JJ, Vignoni M. Arthrite- encéfalite caprine : Essai d´une préparation vaccinale adjuvée.I Étude clinique et virologique. Com Immun Microbiol Infect Dis 1993;16:131-136.
Beyer JC, Chebloune Y, Lakhal-Mselli L, Hötzel I, Mcwhirter-Kumpula N, Cheevers WP. Immunization with plasmad DNA expressing the caprine arthritis-encephalitis virus envelope gene. Quantitative and qualitative aspects of antibodies response to viral surface glycoprotein. Vaccine 2001; 19:1643-1651.
Foote RH. Value of testicular and sperm profiles in optimizing reproductive success: lessons learned from selective breeding programs of domestic and laboratory animals. Sperm measures and reproductive success. Institute for Healt Policy Analysis. Forum on Science health and environmental risk assessment. In:Burger Jr EJ, Tardiff RG, Scialli AR, Zenick H, editors. Progress in Clinical and Biological Research 32. New York, Ithaca. Alan R. Liss, Inc. 1989:107-126.
Laemmli VK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227: 680-685.
Clavijo A, Thorsen J. Chemilumininescent detection of caprine arthitis encephalitis virus with a PCR-generated single stranded non radiolabelled probe. Vet Microbiol 1995; 43:295-305.
Miller CJ, Vogel P, Alexander NJ, Dandekar AS, Hendrickx AG, MarxP A. Pathology and localization of simian immunodeficiency virus in the reproductive tract of chronically infected male Rhesus macaques. Lab Invest 1994; 70:255-262.
Ellis TM, Wilcox GE, Robinson WF. Antigenic variation of caprine arthritis encephalitis virus during persistent infection of goats. J Gen Virol 1987; 68:3145-3152.
Adams DS, Klevjer-Anderson P, Carlson JL, McGuire TC, Gorham JR. Transmission and control of caprine artritis-encephalitis virus. Am J Vet Res 1983; 44:837-840.
Cheveers WP, Knowles DP, McGuire TC, Cunningham DR, Adams DS, Gorham JR. Chronic disease in goats orally infected with two isolates of the caprine arthritis encephalitis lentivirus. Lab Invest 1988; 58: 510-517.
LechnerF, Machado J, Bertoni G, Seow HF, Dobbelaere DA, Peterhans E. Caprine arthritis encephalitis virus dysregulates the expression of cytokines in macrophages. J Virol 1997; 71:7488-7497.
Adeyemo O, Gao RJ, Lan HC. Cytoquine production in vitro by macrophages of goats with caprine arthritis encephalitis. Cell Mol Biol 1997; 43:1031-1037.
York DF, Vigne R, Verwoerd DW, Querat G. Nucleotide sequence of jaagsiekte retrovirus, an exogenous and endogenous type D and B retrovirus of sheep and goats. J Virol 1992; 66:4930-4939.
Belov L, Whalley MJ. Virus-specific polipeptides of caprine arthritis encephalitis virus recognized by monoclonal antibodies to virion protein p24 and p14. J Gen Virol 1988;69:1097-1103.
Meas S, Usui T, Ohashi K, Sugimoto Ch, Onuma M. Vertical transmission of bovine leukemia virus and bovine immunodeficiency virus in dairy cattle herds. Vet Microbiol 2002; 84:275-282.
Kashuba ADM, Dyer JR, Kramer LM, Raasch RH, Eron JJ, Cohens MS. Antiretroviral-Drugs concentration in semen: implications for sexual transmission of human immunodeficiency virus type 1. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43:1817-1826.
Kiessling AA, Crowell RC, Connell RS. Sperm-associated retrovirus in the mouse epididymis. Proc Natl Acad Sci USA 1987; 84:8667-8671.
Mselli-Lakhal L, Guiguen F, Fornazero C, Du J, Favier C, Durand J, et al. Goat milk epithelial cells are permissive to CAE infection in vitro. Virology 1999; 259:67-73.
Jan CL, Greenland T, Gounel F, Balleydier S, Mornex JF. Activation of small ruminant aortic endothelial cells after in vitro infection by caprine arthritis encephalitis virus. Res Vet Sci 2000; 69:225-231.
Lamara A, Fieni F, Mselli-Lakhal L, Taintuier D, Chebloune Y. Efficient replication of caprine arthritis-encephfalitis virus in goats granulosa cells. Virus Res 2001; 79:165-172.
Zacharopoulus VR, Phillips DM. Cell-mediated HTLV-I infection of a cervix-derived epithelial cell-line. Microb Pathog 1997; 23:225-233.
Pudney J, Anderson D. Orchitis and human immunodeficiency virus type 1 infected cells in reproductive tissues from men with the acquired immune deficiency syndrome. Am J Pathol 1991; 139:149-161.
Ali O A. Caprine arthritis-encephalitis related changes in the uterus of a goat. Vet Rec 1987;121:131-132.