2013, Número 4
<< Anterior Siguiente >>
Rev Mex Med Repro 2013; 5.6 (4)
Evaluación de la morfología de los organelos de espermatozoides móviles en el programa de reproducción asistida del Centro Mexicano de Fertilidad de Culiacán, Sinaloa, México
López NJA, Ríos MS, Chávez-Olivares VMA, Serrano NOS
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 186-191
Archivo PDF: 926.11 Kb.
RESUMEN
Antecedentes: con la introducción de la evaluación de la morfología de los organelos de espermatozoides móviles (MSOME por sus siglas en inglés) se han desarrollado estudios retrospectivos, prospectivos y con distribución al azar para valorar los beneficios que puede ofrecer este método en los resultados de un centro de reproducción asistida. Independientemente de la óptica usada para la selección espermática (Hoffman o Nomarski), la tendencia es mejorar las tasas de fecundación y calidad embrionaria. Cuando más de 20% de los espermatozoides tienen vacuolas o las vacuolas son de gran tamaño, se producen embriones con baja probabilidad de implantación.
Objetivo: comparar el diagnóstico de la MSOME y la morfología descrita en el manual de la Organización Mundial de la Salud 2010 (OMS, 2010) de la alteración espermática en varones infértiles, que después de ser sometidos a procedimientos de baja o alta complejidad no lograron el embarazo o se produjo una pérdida gestacional.
Pacientes y método: a 50 varones que ingresaron a protocolos de baja o alta complejidad en el Centro Mexicano de Fertilidad se les realizó un examen básico de semen según el “Manual de laboratorio para el examen y proceso del semen humano” (OMS, 2010), para realizar inmediatamente después la MSOME y determinar las alteraciones de los organelos celulares.
Resultados: se determinó en el exámen básico de semen que 17 pacientes (35%) tenían astenozoospermia, 11 (19%) oligozoospermia, 10 (21%) teratozoospermia y 12 (25%) oligoastenoteratozoospermia. Al realizar la MSOME se observó que en los pacientes con teratozoospermia y oligoastenoteratozoospermia más de 20% de los espermatozoides tenían vacuolas. Aunque también se observaron vacuolas en los espermatozoides de los pacientes con astenozoospermia y oligozoospermia, en una concentración que no sobrepasó 20%.
Conclusiones: optimizar la selección de gametos es una de las mejores herramientas en un laboratorio de reproducción asistida. Analizar el esperma con la técnica MSOME antes de incluir a los pacientes en procedimientos de alta o baja complejidad es una herramienta de diagnóstico muy valiosa para mejorar las tasas de embarazo.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. Cambridge: Cambridge University Press, 2010.
Bartoov B, Berkovitz A, Eltes F, Kogosowski, A, et al. Real-time fine morphology of motile human sperm cells is associated with IVF-ICSI outcome. J Androl 2002;23:1-8.
Berkovitz A, Eltes F, Yaari S, Katz N, et al. The morphological normalcy of the sperm nucleus and pregnancy rate of intracytoplasmic injection with morphologically selected sperm. Hum Rep. 2005;20:185-190.
Berkovitz A, Eltes F, Ellenbogen A. Peer S, et al. Does the presence of nuclear vacuoles in human sperm selected for ICSI affect pregnancy outcome? Hum Rep 2006;21:1787- 1790.
Knez K, Zorn B, Tomazevic T, Vrtacnik-Bokal E, Virant-Klun I. The IMSI procedure improves poor embryo development in the same infertile couples with poor semen quality: A comparative prospective randomized study. Reprod Biomed Online 2005;123:2-8.
Wu TF, Chu DS. Sperm chromatin. Mol Cell Proteomics 2008;7:1876-1886.
Franco JG Jr, Baruffi R, Mauri AL, Petersen C, et al. Significance of large nuclear vacuoles in human spermatozoa: implications for ICSI. Reprod Biomed Online 2008;17:42-45.
Antinori M. Intracytoplasmic morphologically selected sperm injection: a prospective randomized trial. Reprod Biomed Online 2008;16:835-841.
Walach E. Sperm DNA fragmentation: mechanisms of origin, impact on reproductive outcome, and analysis. Fertil Steril 2010;93:1027-1036.
Akl L, Oliveira J, Petersen C, Mauri A, Silva L, et al. Efficacy of the motile sperm organelle morphology examination (MSOME) in predicting pregnancy after intrauterine insemination. Reprod Biomed Online 2011;120:3-9.
Oliveira J, Massaro F, Mauri A, Petersen C, et al. Motile sperm organelle morphology examination is stricter than Tygerberg criteria. Reprod Biomed Online 2009;18:320-326.
Bar-Chama N, Schiff J, Luna MB. Dann, A, et al. The level of sperm vacuoles in the fresh post-processed sperm sample significantly affects IVF cycle outcomes. Fertil Steril 2007;88:S18.
Van Waart J, Kruger T, Ombart C, Ombelet W. Predictive value of normal sperm morphology in intrauterine insemination (IUI): a structured literature review. Hum Rep 2001;5:495-500.
Figueira D, Braga D, Setti A, Iaconelli A, Borges E. Morphological nuclear integrity of sperm cells is associated with preimplantation genetic aneuploidy screening cycle outcomes. Fertil Steril 2011;95:990-993.
French D, Sabanegh E, Goldfarb J, Desai N. Does severe teratozoospermia affect blastocyst formation, live birth rate, and other clinical outcome parameters in ICSI cycles? Fertil Steril 2010;93:1097-1103.
De Vos A, Van De Velde H, Joris H, Verheyen G, et al. Influence of individual sperm morphology on fertilization, embryo morphology, and pregnancy outcome of intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2003;79:42-48.
Nallella K, Sharma R, Aziz N, Agarwal A. Significance of sperm characteristics in the evaluation of male infertility. Fertil Steril 2006;85:629-634.
Sripada S, Townend J, Campbell D, Murdoch L, et al. Relationship between semen parameters and spontaneous pregnancy. Fertil Steril 2010;94:624-630.
Morelli S, Seungdamrong A, McCulloh D, McGovern P. Abnormal sperm count and motility on semen analysis are not sufficiently predictive of abnormal Kruger morphology. Fertil Steril 2010;7:2882-2884.
Morbeck D, Leonard P, Weaver A, Shimek M, et al. Sperm morphology: classification drift over time and clinical implications. Fertil Steril 2012;96:1350-1354.
Palermo G, Neri Q, Monahan D, Kocent J, Rosenwaks Z. Development and current applications of assisted fertilization. Fertil Steril 2012;97:248-259.
Stephanus S, Gokul S, Agarwal A. Semen hyperviscosity: causes, consequences, and cures. Frontiers in Bioscience 2013;5:224-231.