2013, Número 2
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AbanicoVet 2013; 3 (2)
El cerdo joven como bioindicador de concentraciones bajas de genotóxicos mediante eritrocitos micronucleados
Cedano DA, Martínez-González S, Torres-Bugarín O, Trujillo-Hernández B, Zúñiga-González G, Peña-Parra B
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 32
Paginas: 39-47
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RESUMEN
El objetivo del presente fue establecer la respuesta eritrocitaria micronucleada del
cerdo joven (10 a 13 semanas/edad) expuesto a la ciclofosfamida (0.5, 1.0 2.0 y 4.0
mg/Kg), para utilizarlo como un bioindicador de concentraciones bajas de genotóxicos.
Así, en los cerdos inducidos con ciclofosfamida encontramos incrementos significativos
en el número de células micronucleadas en los tratamientos de 0.5, 1.0 y 4 mg/Kg de
ciclofosfamida. Por lo que concluimos que los cerdos jóvenes (10 a 13 semanas/edad),
muestran respuesta eritrocitaria micronucleogénica a la ciclofosfamida, aún a
dosis más bajas de las recomendadas para los roedores en pruebas de daño
cromosómico. Por lo tanto, el cerdo puede ser considerado, como una prueba confiable
para detectar agentes genotóxicos micronucleogénicos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
BEAULA KD, Subramanyam S. Genotoxic evaluation of ara-c by multiple parameters. Mutat Res. 1991; 263:185-196.
CEDANO DA, Martínez GS, Torres BO, Zúñiga GG, Trujillo HB. Estudio de la factibilidad del cerdo como modelo indicador de agentes genotóxicos mediante el conteo de eritrocitos micronucleados. Abanico Vet. 2011; 1(2): 21-28.
CORAZZA G, Ginaldi L, Zoli G, Frisoni M, Lalli G, Gasbarrini G, Quaglino D. Howell- Jolly body counting as a measure of splenic function. A ressessment. Clinical Lab Haematol.1990; 12: 269-275.
CUENCA P, Ramírez V. Aberraciones cromosómicas en trabajadoras expuestas a plaguicidas. Rev Biol Trop. 2004; 52(3):623-628.
DAVIS LE. Drugs disposition in neonatal animals. J. A. Vet. Med Admon. 1989; 320: 1161-1162.
FUCHS A, Eder H. Zahl und reifegradverteilung der retikulozyten von sechs tierarten. J. Vet Med Assoc. 1991; 38:749 –754.
FUIC A, Mijic A. In vitro and in vivo micronucleus tests in genotoxicity research. Arh Hig Rada Toksikol. 1999; 50: 299-306.
HAYASHI M, Kodama Y, Awogi T, Suzuki T, Asita AO, Sofuni T. The micronuclous assay using peripherial blood reticulocytes from mitomycin-C and eye clophosphamidetreated rats. Mutat Res. 1992; 278:209-213.
HEDDLE J, Cimino M, Hayashi M, Romagna F, Shelby M, Tucker J, McGregor J. Micronuclei as and index of cytogetic damage : past, present and future. Environ Mol Mutag, 1991; 18: 277- 291.
JENA GB, Bhunya SP. Use of chick, Gallus domesticus, as an in vivo model for the study of chromosome aberration: A study mitomycin C and probable location of a “hot spot”. Mutat Res. 1985 ; 334 : 167-174.
KISHI M, Horiguchi Y, Watanabe S, Hayashi M. Validation of the mouse peripheral blood micronucleus assay using acridine orange supravital staining with urethane. Mutat Res. 1992; 278:205-208.
KROGT P. Ochratoxins in food. En: Mycotoxins in food. Food science and technology series of monographs, USA: Oxford University Press, Inc. New York.1987.
LOPEZ A, Siles-Vallejos M, Toscano E, Melchor B, Alvarez G, Heredia V, Norberto V. Efecto genotóxico del plaguicida fipronil en alevinos de “Gamitana” Colossoma macropomum en condiciones de laboratorio. Scientia Agropecuaria 2011; 2: 247 – 253.
LUDEWIG E, Koch F, Kamprad F, Melzer R. The micronucleus test in pigs: induction of micronuclei in polychromatic erythrocytes by various doses of x-rays. Mutat. Res. 1991; 249: 1-6.
LUDEWIG E, Koch F, Kamprad F, Melzer R. The micronucleus test in pigs: induction of micronuclei in polychromatic erythrocytes by various doses of x-rays. Mutat. Res. 1991; 249:1-6.
MUKHERJEE A, Agarwal K, Aguilar MA, Sharma A. Anticlastogenic activity of Bcaroteno against ciclophosphamide in mice in vivo. Mutat Res. 1991; 263:41- 46.
NORMANN CA, Fonseca JC, Veiga V. Micronuclei in red blood cells of armored catfish Hypostomus plecotomus exposed to potassium dichromate. African Journal of Biotechnology. 2008; 7(7): 893-896.
RODRÍGUEZ-ROMERO MI, Hernández-González R, Calderón-Segura ME. Estudio comparativo de la morfología cromosomica del cerdo (sus scrofa domesticus), bajo tres diferentes inhibidores mitoticos: colchicina, colcemid y vinblastina. Salud Pública y Nutrición. 2000; No. 2.
RUTQVIST L, Björklund NE, Hult K, Hokby E, Carlsson B. Ochratoxin A as the cause of spontaneous nephropathy in fattening pigs. App Environ Microb. 1978; 36:920-925.
SCHMID W. The micronucleus test. Mutat Res. 1975; 31: 9-15.
SE RK, Tae HK, Si YR, Hae JL, Heon O, Sung KJ, Ki SO, In CP, Jong CK, Chang MK, Sung HK. Measurement of micronuclei by cytokinesis-block method in human, cattle, goat, pig, rabbit, chicken and fish peripheral blood lymphocytes irradiated in vitro with gamma radiaton. In Vivo. 2003; 17: 433-438.
SE RK, Tae HK, Si YR, Hae JL, Heon O, Sung KJ, Ki SO, In CP, Jong CK, Chang MK, Sung HK. Measurement of micronuclei by cytokinesis-block method in human, cattle, goat, pig, rabbit, chicken and fish peripheral blood lymphocytes irradiated in vitro with gamma radiaton. In vivo. 2003; 17:433-438.
SHAW IC. Species differences in the metabolism and toxicity of agrochemicals and veterinary medicines. St. Vet. J. 1990; 44: 54-65.
TORRES-BUGARÍN O, Ventura Aguilar A, Zamora-Perez A, Gómez-Meda BC, Ramos-Ibarra ML, Morgan-Villela G, Gutiérrez-Franco A, Zúñiga-González G. Evaluation of cisplatin +5-FU, carboplatin +5FU, and ifosfamida + epirubicine regimens using the micronuclei test and nuclear abnormalities in the bucal mucosa. Mut Res Genetc Toxicology. 2003; 539:177-186.
TORRES-BUGARÍN O, De Anda-Casillas A, Ramírez-Múñoz MP, Sánchez-Corona J, Cantú JM, Zúñiga G. Determination of diesel genotoxicity in firebreathers by micronuclei and nuclear abnormalities in buccal mucosa. Mutat Res. 1988; 413: 277-281.
TORRES-BUGARÍN O, Zamora-Pérez A, Esparza-Flores A, López-Guido B. Feria- Velasco A, Cantú JM, Zúñiga G. Eritrocitos micronucleados en niños esplenectomizados con y sin quimioterapia. Bol Méd Hos Infan Méx. 1999; 56: 212- 217.
WILEY J. Mutation and the environment. Part. A: Basic mechanisms. John Wiley. 1990:340.
ZÚÑIGA G, Torres O, Zamora A, Gómez B, Ramos M, Martínez S, González A, Luna J, Ramos A, Ontiveros D, Gallegos M. Differences in the number of micronucleated erythrocytes among young and adult animals including humans spontaneous micronuclei in 43 species. Mutat Res. 2001b; 494:161-167.
ZÚÑIGA G, Torres O, Ramos M, Zamora A, Gómez B, Ventura A, Ramos A, Ortíz G., Álvarez C, González A, Luna J, Gallegos M. Variation of micronucleated erythrocytes in peripheral blood of Sciurus aureogaster in relation to age: An increment of micronucleated polychromatic erythrocytes after the administration of colchicine. Environ Mol Mutagen. 2001a; 37: 173-177.
ZÚÑIGA G, Ramírez MP, Torres O, Pérez J, Ramos A, Zamora A, Gallegos MP, Sánchez J. Induction of micronuclei in the domestic cat (felis domesticus) peripheral blood by colchicine and cytosine-arabinoside. Mutat Res. 1998; 413: 187-189.
ZÚÑIGA G, Torres O, Ramírez MP, Delgado JL, De Loza R, Cantú JM. Micronucleated erythrocytes in splenectomized patients with and without chemotherapy. Mutat Res. 1996b; 361: 107-112.
ZÚÑIGA G, Torres O, Ramírez MP, Ramos A, Fanti E, Portilla E, García D, Cantú JM, Gallegos MP, Sánchez J. Spontaneous micronuclei in peripheral blood erythrocytes from 35 mammalian species. Mutat Res. 1996a; 369: 123-127.