2013, Número 2
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Rev Cubana Med Trop 2013; 65 (2)
Aislamiento de Leptospira borgpetersenii de fuentes de agua en Argentina
Francois BS, Brihuega FB, Grune LS, Gattarello MV, Correa PD, Petrakovsky MJ, Gualtieri SC, Arestegui LM
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 17
Paginas: 177-184
Archivo PDF: 130.22 Kb.
RESUMEN
Introducción: las especies del género Leptospira son los agentes causales de la
leptospirosis, enfermedad considerada como la zoonosis de mayor distribución en el
mundo. En Argentina reviste carácter endémico. La provincia de Santa Fe registra el
mayor número de casos humanos. Desde mediados de la década de 1980, las
especies patógenas de leptospiras aisladas de animales y humanos fueron
diferenciadas sobre la base de estudios de hibridización ADN-ADN, surgiendo
nuevas especies:
L. interrogans, L. kirschneri, L. weilii, L. noguchii, L.
borgpetersenii, L. santarosai, L. meyeri, L. inadai, L. faineri y L. alexanderi.
Objetivo: aislar y caracterizar mediante métodos moleculares, leptospiras de
fuentes de agua que vierten en un canal que atraviesa la ciudad de Casilda, Santa
Fe, en Argentina.
Métodos: se sembraron 6 muestras de agua de las vertientes al canal, previa
filtración con filtros Millipore de 0,22 µm, en medios EMJH y Fletcher para
aislamiento de leptospiras. Se incubaron en estufa a 30 °C durante 15 días, se
observaron semanalmente mediante microscopia de campo oscuro. Se implementó
la técnica de reacción en cadena de la polimerasa bajo las condiciones específicas
(Sugathan, 2005), con dos juegos de cebadores (Gravekamp, 1993), que permiten
detectar la presencia de ADN de leptospiras patógenas. La técnica molecular
utilizada para genotipificar fue
multiple-locus variable-number tandem repeats
analysis (MLVA).
Resultados: se obtuvieron 5 aislamientos de Leptospira spp., de los cuales 2
resultaron positivos a la reacción en cadena de la polimerasa, determinando que se
trataba de leptospiras patógenas. Mediante la genotipificación por MLVA se pudo
observar que uno de los aislamientos patógenos mostró un patrón correspondiente
a la especie
Leptospira borgpetersenii, no siendo identificable la otra cepa.
Conclusiones: en la ciudad del estudio, que tiene alrededor de 40 000 habitantes,
se logró identificar por primera vez una cepa de Leptospira borgpetersenii de
fuentes de aguas urbanas, con el peligro potencial que esto representa para la
población humana y animal.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Stanchi N, Martino P, Gentilini E, Reinoso E, Echeverría M, Leardini N, et al. Microbiología Veterinaria. Buenos Aires: Inter-Médica; 2010.
Sakamoto M, Kato T, Sato F, Yoshikawa K, Yoshida M, Shiba K, et al. A case of Leptospirosis caused by Leptospira borgpetersenii serovar sejroe infected in Bali Island, Indonesia. Kansenshogaku Zasshi. 2005;79(4):294-8.
Morgan J, Bornstein SL, Karpati AM. Outbreak of Leptospirosis among Triathlon participants and community residents in Springfield, Illinois, 1998. Clin Infect Dis. 2002;34:1593-9.
Sejvar J, Bancroft E, Winthrop K. Leptospirosis in "Eco Challenge" athletes, Malasysian Borneo, 2000. Emerg Infect Dis. 2003;9:702-7.
Schereier S, Doungchawee G, Triampo D, Wangroongsarb P, Hartskeerl RA, Triampo W. Development of a magnetic bead fluorescence microscopy immunoassay to detect and quantify Leptospira in environmental water samples. Acta Trop. 2012;122(1):119-25.
Giraldo de León G, Orrego Uribe A, Santa Cruz M, Yepes E. Leptospirosis. Las aguas de la explotación porcina como vehículo de la leptospira, en la zona central Cafetera de Colombia. Arch Med Vet. 2002;34(1):79-87.
Sugathan S, Varghese TP. Multiplex PCR on leptospiral isolates from Kolenchery, Kerala, India. Indian. J Med Microbiol. 2005;23(2):114-6.
Gravekamp C, Van De Kemp H, Franzen M, Carrington D, Schoone GJ, Van Eys GJJM. Detection of seven species of pathogenic leptospires by PCR using two sets of primers. J Gen Microbiol. 1993;139(8):1691-700.
Majed Z, Bellenger E, Postic D, Pourcel C, Baranton G, Picardeau M. Identification of variable-number tandem-repeat loci in Leptospira interrogans sensu stricto. J Clin Microbiol. 2005;43:539-45.
Pavan ME, Cairó F, Pettinari MJ, Samartino L, Brihuega B. Genotyping of Leptospira interrogans strains from Argentina by multiple-locus variable-number tandem repeat Analysis (MLVA). Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2011;34(2):135-41.
Salaün L, Mérien F, Gurianova S, Baranton G, Picardeu M. Application of multilocus variable-number tandem-repeat analysis for molecular typing of the agent of Leptospirosis. J Clin Microbiol. 2006;44(11):3954-62.
Brihuega B, Auteri C, Romero G, Samartino L. Aislamiento de una cepa patógena de leptospira de un río urbano: Respuesta frente a quinolonas fluoradas. Rev Med Vet. 2006;87(4):144-6.
Yang W, Pang J, Li C. An investigation on the distribution of Leptospira interrogans in water and soil in southwest of Yunnan Province. Zhonghua Liu Xing Bing Xue Za Zhi. 1994;15(5):289-91.
Moreno N, Agudelo-Flórez P. Application of conventional and multiplex PCR assays for identification of isolates of Leptospira spp. in Colombia. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2010;27(4):548-56.
Monte LG, Conceiçáo FR, Coutinho ML, Seixas FK, da Silva EF, Vasconcellos FA, et al. Monoclonal antibodies against the leptospiral immunoglobulin-like proteins A and B conserved regions. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2011;34(5):441-6.
Diniz JA, Félix SR, Bonel-Raposo J, Seixas Neto AC, Vasconcellos FA, Grasmann AA, et al. Highly virulent Leptospira borgpetersenii strain characterized in the Hamster model. Am J Trop Med Hyg. 2011;85(2):271-4.
Bulach DM, Zuerner RL, Wilson P, Seemann T, Mc Grath A, Cullen PA, et al. Genome reduction in Leptospira borgpetersenii reflects limited transmission potential. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103(39):14560-5.