2009, Número 09
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Ginecol Obstet Mex 2009; 77 (09)
Los esfingolípidos en la implantación embrionaria
Espinosa CR
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 428-435
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RESUMEN
La implantación embrionaria es una compleja serie de procesos que se conectan entre el tejido materno y embrionario, y que requiere un programa de preparación uterina. Al inicio de la gestación, sobre todo en las especies con implantación invasora, el estroma uterino se remodela de manera muy importante: sucede la diferenciación de células fibroblasto-estromales en células de la decidua. Los lípidos, como moléculas de señalización, tienen diversas vías, con función importante durante el proceso de decidualización. La decidua mantiene una red vascular para la nutrición e intercambio de gases necesarios para el desarrollo embrionario, antes de establecer la función de la placenta. Debido a la correlación de eventos que transcurren en el útero durante el inicio de la implantación y a las funciones de los metabolitos bioactivos de los esfingolípidos establecida en otros órganos, se propone que el metabolismo de los esfingolípidos uterinos podría cambiar. Así, durante la implantación, el metabolismo de los esfingo lípidos regula la decidualización uterina y la estabilización de los vasos sanguíneos. Los hallazgos sugieren que la alteración en el metabolismo de éstos pueda ser una causa de pérdida del embarazo en los humanos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Skaznik-Wikiel ME, Kaneko-Tarui T, Kashiwagi A, Pru JK. Sphingosine-1-phosphate receptor expression and signaling correlate with uterine prostaglandin-endoperoxide synthase 2 expression and angiogenesis during early pregnancy. Biol Reprod 2006;74:569-76.
Dey SK, Lim, H, Das SK, Reese J, et al. Molecular cues to implantation. Endocr Rev 2004;25(3):341-73.
Kaneko-Tarui T, Zhang L, Austin KJ, Henkes LE. Maternal and embryonic control of uterine sphingolipid-metabolizing enzymes during murine embryo implantation. Biol Reprod 2007;77:658-65.
Suomalainen L, Hakala JK, Pentikäinen V, Otala, M, et al. Sphingosine-1-phosphate in inhibition of male germ cell apoptosis in the human testis. J Clin Endocrinol Metab 2003;88(11):5572-9.
Savtchouk IA, Mattie FJ, Ollis AA. Ceramide: from embryos to tumors. Science 2007;(394):1-3.
Hannun YA, Obeid LM. The ceramide-centric universe of lipidmediated cell regulation: stress encounters of the lipid kind. The J Biol Chem 2002;277(29):25847-50.
Merrill AH, Jones DD. An update of the enzymology and regulation of sphingomyelin metabolism. Biochim Biophys Acta 1990;1044:1-12.
Huwiler A, Kolter T, Pfeilschifter J, Sandhoff K. Physiology and pathophysiology of sphingolipid metabolism and signaling. Biochim Biophys Acta 2000;1485:63-99.
Ohanian J, Ohanian V. Sphingolipids in mammalian cell signaling. Cell Mol Life Sci 2001:58;2053-68.
Espinosa CR, Rosado GA. Angiogénesis en la fisiología reproductiva. Desarrollo folicular, formación y mantenimiento del cuerpo lúteo. Ginecol Obstet Mex 2002;70:17-27.
Tan J, Raja S, Davis MK, Tawfik O, et al. Evidence for coordinated interaction of cyclin D3 with p21 and cdk6 in directing the development of uterine stromal cell decidualization and polyploidy during implantation. Mech Dev 2002;111(1-2):99-113.
Mizugishi K, Li C, Olivera A, Bielawski J, et al. Maternal disturbance in activated sphingolipid metabolism causes pregnancy loss in mice. J Clin Invest 2007;(10):2993-3006.
Tilly JL, Kolesnick RN. Realizing the promise of apoptosisbased therapies: separating the living from the clinically undead. Cell Death Differ 2003;10:493-5.
Ogretmen B, Hannun YA. Biologically active sphingolipids in cancer pathogenesis and treatment. Nat Rev Cancer2004;4:604-16.
Siskind LJ, Fluss S, Bui M, Colombini M. Sphingosine forms hannels in membranes that differ greatly from those formed by ceramide. J Bioenerg Biomembr 2005;37:227-36.
Cremesti A, Paris F, Grassme H, Holler N et al. Ceramide enables Fas to cap and kill. J Biol Chem 2001;276:23954-61.
Eliyahu E, Park J-H, Shtraizent N, He X, et al. Acid ceramidase is a novel factor required for early embryo survival. FASEB J 2007;21:1403-9.
Perez GI, Jurisicova A, Matikainen T, Moriyama T, et al. A central role for ceramide in the age-related acceleration of apoptosis in the female germline. FASEB J 2005;862(19):860-62.
Morita Y, Perez GI, Paris F, Miranda SR, et al. Oocyte apoptosis is suppressed by disruption of the acid sphingomyelinase gene or by sphingosine-1-phosphate therapy. Nat Med 2000;6:1109-14.
Casper RF, Jurisicova A. Protecting the female germ line from cancer therapy. Nat Med 2000;6(10):1100-1.
Roth Z, Hansen PJ. Sphingosine 1-phosphate protects bovine oocytes from heat shock during maturation. Biol Reprod 2004;71:2072-8.
Spiegel S, Kolesnick R. Sphingosine 1-phosphate as a therapeutic agent. Leukemia 2002;16:1596-602.