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2005, Número 73

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Rev Enfer Infec Pediatr 2005; 18.19 (73)


Evaluación de los valores de inmunoglobulinas y de complemento en una población de recién nacidos sanos mexicanos

Soria-Villa R, Reyna-Figueroa J, Lara-Sánchez J, Cérbulo-Vázquez A, Ortiz-Ibarra FJ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 8-12
Archivo PDF: 44.09 Kb.


RESUMEN

Objetivo: Conocer la concentración normal de las inmunoglobulinas M, G, y A además de componentes del complemento C3 y C4 en el recién nacido (RN) sano del INPer.
Pacientes y Métodos. Se obtuvo sangre de cordón umbilical de las placentas de RN captados en la unidad tocoquirúrgica del Instituto Nacional de Perinatología. Todos los RN fueron considerados eutróficos sanos después de vigilarlos clínica y hematológicamente durante las primeras 72 horas (h) de vida extrauterina. Se excluyeron a los RN menores de 28 semanas de gestación, ruptura prematura de membranas mayor de 12 h, o con diagnóstico de infección o malformación congénita.
Resultados: Se evaluaron 110 sueros de RN, 59 masculinos y 51 femeninos. Sesenta de ellos (54.5%) fueron productos pretérmino y 50 (45.4%) de término. La concentración promedio de Inmunoglobulinas y complemento en RN de término arrojó los siguientes resultados: IgG 1260 mg/dl, IgA 8.8 mg/dl, IgM 18.1 mg/dl, factor C3 33 mg/dl, y factor C4 del complemento 10.2 mg/dl. Mientras que en RN pretérmino se obtuvieron los siguientes promedios en la concentración de inmunoglobulinas y factores del complemento: IgG 947 mg/dl., IgA 1.6 mg/dl., IgM 13 mg/dl., factor C3 36 mg/dl. y factor C4 de 11 mg/dl.
Conclusiones: Los datos sugieren que la concentración de ciertas inmunoglobulinas y de componentes del complemento, no es diferente entre RN de término y pretérmino. La concentración de IgM, IgG e IgA, y de C3 y C4 es más alta en población mexicana que lo reportado previamente en otras razas y regiones geográficas.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Apicella MA, Westerink MAJ, Morse SA, Schneider H, Rice PA, Griffiss JM. Bactericidal antibody response of normal human serum to the lipooligosaccharide of Neisseria gonorrhoeae. J Infect Dis 1997; 153: 520-526.

  2. Lederman HM, Winkelstein JA. X-linked agammaglobulinemia: an analysis of 96 patients. Medicine 1985; 64: 145-156.

  3. Levine B, Hadwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science 1991; 254: 856-860.

  4. Dietzschold B, Kao M, Zheng YM, Chen ZY, maul G, Fu ZF, Rupprecht CE and Koprowski H. Delineation of putative mechanisms involved in antibody-mediated clearance of rabies virus from the central nervous system. Proc Natl Acad Sci USA 1992; 89: 7252-7256.

  5. Mazanec MB, Kaetzel CS, Lamm ME, Fletcher D, Nedrud JG. Intracellular neutralization of virus by immunoglobulin antibodies. Proc Natl Acad Sci USA 1992; 89: 6901-6905.

  6. Lodmell DL, Esposito JJ, Ewalt LC. Rabies virus anti-nucleoprotein antibody protects against rabies virus challenge in vivo and inhibits rabies virus replication in vitro. J Virol 1993; 67: 6080-6086.

  7. Hodge S, Hodge G, Flower R and Han P. Cord Blood Leukocyte Expression of functionally Significant Molecules Involved in the Regulation of Cellular Immunity. Scand J Immunol 2001; 53: 72-78.

  8. Sautois B, Fillet G and Beguin Y. Comparative cytokine production by in vitro stimulated mononucleated cells from cord blood and adult blood. Exp Hematol 1997; 25(2): 103-108.

  9. Harris DT, Schumacher MJ, Locascio J, Besecon FJ, Olson GB, DeLuca D, Sheker L, Bard J and Moyse EA. Phenotypic and functional immaturity of human cord blood T lymphocytes. Proc Natl Acad Sci USA 1992; 89 (21): 10006-10010.

  10. Urashima M, Hoshi Y, Shishikura A, Kamijo M, Kato Y, Akatsuka J and Maekawa K. Umbilical cord blood as a rich source of immature hematopoietic stem cells. Acta Paediatr Jpn 1994; 36 (6): 649-655.

  11. Takahashi N, Imanishi K, Nishida H and Uchiyama T. Evidence for immunologic immaturity of cord blood T cell. Cord blood T cells are susceptible to tolerance induction to in vitro stimulation with a superantigen. J Immunol 1995; 155 (11): 5213-5219

  12. Vekemans J, Amedei A, Ota MO, D’Elios M, Goetghebuer T, Ismaili 12 J, Newport MJ, Del Prete G, Goldaman M, Mcadam KPWJ and Marchant A. Neonatal bacillus Calmette-Guerin vaccination induces adult-like IFN-( production by CD4+ T lymphocytes. Eur J Immunol 2001; 31: 1531-1535.

  13. Kadowaky N, Antonenko S, Ho S, Rissoan MC, Soumelis V, Porcelli SA, Lanier LL and Liu YJ. Distinct cytokine profiles of neonatal natural killer T cells after expansion with subsets of dendritic cells. J Exp Med 2001; 193 (10): 1221-1226.

  14. Stein KE. Thymus-independent and thymus-dependent responses to polysaccharide antigens. J Infect Dis 1992; 165: S49-S52.

  15. Cooke JV, Holowach J, Atkins JE, Powers JR. Antibody formation in early infancy against diphtheria and tetanus toxoids. J Pediatr 1948; 33: 141-146.

  16. Paton JC, Toogood IR, Cockington RA, Hansman D. Antibody response to pneumococcal vaccine in children aged 5 to 15 years. Am J Dis Child 1986; 140: 135-138.

  17. Oxelius VA and Svenningsen NW. IgG subclass concentrations in preterm neonates. Acta Paedratr Scand 1984; 73: 626-630.

  18. Alford CA Jr, Wu LYF, Blanco A (1974). Developmental humoral immunity and congenital infections in man. In: Neter J, Milgram F (eds) The immune system and infectious diseases. Kerger, Basel. Pp 42-58.

  19. Allansmith M, McClellan BH, Butterwoth M and Maloney JR. The development of immunoglobulin levels in man. The J of Pediat 1968; 72 (2): 276-290.

  20. Yeung CY and Hobbs JR. Serum (G globulin levels in normal premature, post-mature, and “small-for-dates” newborn babies. The Lancet 1968; 1: 1167-1170.

  21. Ballow M, Cates LK, Rowe JC, Goetz C and Desbonnet Ch. Development of the immune system in very low birth weight (less than 1500g) premature infants: Concentrations of plasma immunoglobulins and patterns of infections. Pediatric Res 1986; 20 (9): 899-904.




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