Mezo-Menéndez M, Sánchez-Andrade R, Martínez-Santiago JL, Díez-Baños N, Díez-Baños P, Morrondo PP

Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 20
Paginas: 75-81
Archivo PDF: 633.90 Kb.

RESUMEN

Se estudia mediante ELISA indirecto, con antígeno de excreción-secreción de Fasciola hepatica, la evolución de los anticuerpos IgG específicos en ganado bovino infectado y reinfectado experimentalmente. Asimismo, se evalúa la utilidad de la prueba en la valoración de distintas pautas de tratamiento y en la detección de la fasciolosis bovina adquirida naturalmente. La tasa de anticuerpos aumentó progresivamente entre las 8 y 24 semanas siguientes a la primoinfección experimental. El 85.7% de los animales fueron positivos por ELISA a partir de la octava semana de la primera infección, lo que supuso un adelanto de 4 semanas respecto del diagnóstico coprológico. En todos los bovinos reinfectados aumentó el nivel de anticuerpos a las 4 semanas posreinfección. En los animales que ya estaban parasitados en el momento de la reinfección, todos los sueros fueron positivos durante las 24 semanas posreinfección. En los bovinos en los que se había eliminado la primoinfección mediante tratamiento antiparasitario, todos los sueros fueron positivos entre las 4 y 24 semanas siguientes a la reinfección, a pesar de que la eliminación de huevos fue escasa e intermitente. En la necropsia se comprobó que los animales reinfectados tenían fasciolas adultas, esto último confirmó los resultados obtenidos por ELISA. El tratamiento administrado a las 12 semanas de la primoinfección fue completamente eficaz. No obstante, 42.8% de los sueros continuaron positivos durante las 6 semanas postratamiento. Teniendo en cuenta este periodo de persistencia, el ELISA permitió evaluar de forma precoz y fiable la eficacia de los tratamientos administrados durante el periodo de prepatencia (3 semanas después de la primo y reinfección). Para estudiar la evolución del nivel de anticuerpos en las infecciones naturales se dispuso de 10 novillas frisonas sin infección por F. hepatica que se mantuvieron durante 11 meses en parcelas con Lymnaea truncatula y metacercarias de F. hepatica. Todos los animales tuvieron absorciones positivas a partir de los 3 meses de su entrada en las parcelas; es decir, con un adelanto de 5 meses sobre la detección de huevos en heces.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Dargie JD. The impact on production and mechanism of pathogenesis of trematode infections in cattle and sheep. Int J Parasitol 1987;17:453-463.

2. Mage C. Epidémiologie, conséquences économiques et traitement de la grande douve. Symposium de Parasitologie; 1990 octubre 2-3; París, Francia. París, Francia: Arkovet Ciba-Geigy, 1990: s/n.

3. Hillyer GV, Sanchez Z, Leon de D. Immunodiagnosis of bovine fascioliasis by enzyme-linked immunosorbent assay and immunoprecipitation methods. J Parasitol 1985;71:449-454.

4. Itakagi T, Ohta N, Hosaka Y, Iso H, Konishi M, Chinone S, Itagaki H. Diagnosis of Fasciola sp. infections in cattle by enzyme-linked immunosorbent assay. Jpn J Vet Sci 1989;51:757-764.

5. Pfister K, Daveau Ch, Ambroise-Thomas P. Partial purification of somatic and excretory-secretory products of adult Fasciola hepatica and their application for the serodiagnosis of experimental and natural fascioliasis using an ELISA. Res Vet Sci 1984;37:39-43.

6. Sinclair IJ, Wassal DA. Sero-diagnosis of Fasciola hepatica infections in cattle. Vet Parasitol 1988;27:283-290.

7. Sanchez-Andrade R, Morrondo P, Lopez C, Panadero R, Díez P. Evaluation of Fasciola hepatica infection prevalence in cattle in Galicia (Northwest Spain) by enzyme linked immunosorbent assay. Res Rev Parasitol 1995;55:1-5.

8. Marín MS. Epizootiología de la fasciolosis bovina en Asturias. Identificación y expresión de un antígeno unitario (tesis). Oviedo, España: Fac Biol, Univ Oviedo, 1992.

9. Boulard Ch, Régnault A. L'immunodiagnostic de la fasciolose bovine par la technique ELISA. Bull Group Tech Vet 1989;89:59-68.

10. Hillyer GV, Soler-de Galanes M, Buchón P, Bjorland J. Herd evaluation by enzyme-linked immunosorbent assay for the determination of Fasciola hepatica infection in sheep and cattle from the Altiplano of Bolivia. Vet Parasitol 1996;61:211-220.

11. Welch RD, Smith PH, Malone JB, Holmes RA, Geaghan JP. Herd evaluation of Fasciola hepatica infection levels in Louisiana cattle by an enzyme-linked immunosorbent assay. Am J Vet Res 1987;48:345-347.

12. Boulard Ch, Bouvry M, Argente G. Comparaison de la détection des foyers de fasciolose par test ELISA sur lactosérum et sérum et par coproscopie. Ann Rech Vét 1985; 16:363-368,

13. Martignoni L. Mage C, Reynal PH. Prevention de l'infestation des bovins par Fasciola hepatica avec le triclabendazole. Rev Med Vét 1995;146:413-420.

14. Clery D, Torgerson P, Mulcahy G. Immune responses of chronically infected adult cattle to Fasciola hepatica. Vet Parasitol 1996;62:71-82.

15. Levieux D. Levieux A, Mage C, Garel JP. Immunological detection of chemotherapeutic success in bovine fasciolosis using specific antigen f2 Vet Parasitol 1992;45:81-88.

16. Hughes DL, Hanna REB, Doy TG. Antibody response in cattle, sheep and rats to infection with gamma irradiated metacercariae of Fasciola hepatica. Res Vet Sci 1982;32:354-358.

17. Díez P, Sánchez-Andrade R, Morrondo P. Estudio epidemiológico de la fasciolosis bovina en Galicia. Comunicaciones del I Congreso Ibérico de Parasitología; 1989 septiembre 25-29; Cáceres, España. Cáceres, España: Caja de Ahorros de Salamanca, 1989: 124.

18. Morrondo P, Sanchez-Andrade RM, Diez P, Perez L, Lopez C. Dynamics of Fasciola hepatica egg elimination and Lymnaea truncatula populations in cattle farrns in Galicia (North-West Spain). Res Rev Parasitol 1994;54:47-50.

19. Boch J, Supperer R. Parasitología en medicina veterinaria. Buenos Aires, Argentina: Hemisferio Sur, 1982.

20. Luzon M, Rojo FA, Gomez M. Overwintering of Fasciola hepatica: comparative resistance according to the larval stage and degree of development. VI European Multicolloquium of Parasitology; 1992 September 7-1 1; The Hague, Netherlands. The Hague, Netherlands: Netherlands Society for Parasitology, 1992:219.