Monroy PE, Paniagua CGL, Vaca PS, González ASE

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 23
Paginas: 7-12
Archivo PDF: 78.03 Kb.

RESUMEN

El tratamiento de las infecciones causadas por Staphylococcus aureus en los últimos años ha sido un verdadero problema, debido a que estas bacterias se han seleccionado como resistentes a los principales grupos de antibióticos. El propósito de este trabajo fue determinar la resistencia a antibióticos β-lactámicos de 73 cepas clínicas de S. aureus aisladas de pacientes del área de Tlalnepantla, Edo. de México. Las concentraciones mínimas inhibitorias (CMI) de penicilina, ampicilina, dicloxacilina, cefalotina, cefuroxima, ceftriaxona y ampicilina + sulbactam se determinaron por la técnica de macrodilución en placa de acuerdo a los criterios establecidos por el National Committee for Clinical Laboratory Standards. Las CMIs₅₀ fueron: penicilina 217 µg/mL, ampicilina 70 µg/mL, dicloxacilina 120 µg/mL, cefalotina 61.7 µg/mL, cefuroxima 38.5 µg/mL, ceftriaxona 11.1 µg/mL y ampicilina + sulbactam 8.3 µg/mL. Las CMIs₅₀ fueron: penicilina 1,300 µg/mL, ampicilina 1,000 µg/mL, dicloxacilina 1,000 µg/mL, cefalotina 760 µ/mL, cefuroxima 375 µg/mL, ceftriaxona 38.5 mg/mL y ampicilina + sulbactam 85 mg/mL. El 85% de las cepas de S. aureus fue productora de β-lactamasa. Los resultados evidenciaron que la cefuroxima, celtriaxona y ampicilina + sulbactam fueron los antibióticos más eficaces contra las cepas analizadas, por lo que resulta importante vigilar de manera permanente la progresión de la resistencia de S. aureus a los antibióticos.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Lowy FD. Staphylococcus aureus infection. N Engl J Med 1998; 320: 520-532.

2. Crossley KB, Archer GL. The Staphylococci in human diseases. New York Churchill Livingstone. 1997.

3. Romero-Vivas J, Rubio M, Fernández C, Picazo JJ. Mortality associated with nosocomial bacteremia due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Clin Infect Dis 1995; 21: 1417-1423.

4. Conterno LO, Wey SB, Castelo A. Risk factors for mortality in Staphylococcus aureus bacteremia. Infect Control Hosp Epidemiol 1998; 19: 32-37.

5. Calderón-Jaimes E, Espinosa de los Monteros LE, Ávila-Beltrán R. Epidemiology of drug resistance: The case of Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci infections. Salud Pública Mex 2002; 44: 108-112.

6. Novick RP. Staphylococcus. In: Sonenshein AL, Hoch JA, R. Losick (eds). Bacillus subtillus and other Gram-positive bacteria. Biochemistry, Physiology and Molecular Genetics, American Society for Microbiology, USA. 1993: 17-33.

7. Sykes RB, Mathew M. The β-lactamases of Gram-negative bacteria and their role in resistance to β-lactam antibiotics. J Antimicrob Chemother 1976; 2: 115-157.

8. Chambers HF. Methicillin resistance in staphylococci. Molecular and biochemical basis and clinical implications. Clin Microbiol Rev 1997; 10: 781-791.

9. Hartman BJ, Tomasz A. Low-affinity penicillin binding protein associated with β-lactam resistance in Staphylococcus aureus. J Bacteriol 1984; 158: 513-516.

10. Fasola EL, Fasching CF, Peterson LR. Molecular correlation between in vitro and in vivo activity of beta-lactam and betalactamase inhibitor combinations against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J Lab Clin Med 1995; 125: 200-211.

11. Panililio AL, Culver DH, Garne RP. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in U.S. hospitals, 1975-1991. Infect Control Hosp Epidemiol 1992; 13: 582-86.

12. Pfaller MA, Jones RN, Doren GV, Sader HS, Kugler KC, Beach ML. Survey of bloodstream infections due to Gram-positive cocci: Frequency of ocurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in 1997 in the United States, Canada, and Latin America for the SENTRY antimicrobial surveillance program. Diagn Microbiol Infect Dis 1999; 33: 283-297.

13. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: Tenth informational supplement Wayne (PA). National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2000; M100-S10.

14. O’Callaghan CH, Morris A, Kirby SM, Shingler SH. Novel method for detection of beta-lactamase by using a chromogenic cephalosporin substrate. Antimicrob Agents Chemother 1972; 1: 283-288.

15. Urassa WK, Haule EA, Kagoma C, Langeland N. Antimicrobial susceptibility of Staphylococcus aureus strains at Muhimbili Medical Centre, Tanzania. East Afr Med J 1999; 76: 693-695.

16. Hammond ML, Norriss MS. Antibiotic resistance among respiratory pathogens in preschool children. Med J Aust 1995; 163: 239-242.

17. Paniagua CGL, Monroy PE, García GO, Vaca PS. Effect of betalactamase inhibitors on minimum inhibitory concentration of ampicillin and amoxicillin for Staphylococcus aureus strains. Rev Lat Amer Microbiol 1998; 40: 128-134.

18. Jiménez E. Patrones de resistencia a antibióticos en bacterias aisladas de pacientes de la Clínica Universitaria Iztacala durante 7 años. Tesis de licenciatura. ENEP-Iztacala. UNAM 1996.

19. Chang SC, Hsieh WC, Luh KT. Influence of beta-lactamase inhibitors on the activity of oxacillin against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Diagn Microbiol Infect Dis 1995; 21: 81-84.

20. Monroy PE. Resistencia a antibióticos y metales pesados en cepas clínicas de Staphylococcus aureus. Tesis de Maestría. FES-Cuautitlán, UNAM 1997.

21. Obi CL, Iyiegbuniwe AE, Olukoya DK, Babalola C, Igumbor EO, Okonta AA. Antibiograms and plasmids of Staphylococcus aureus and coagulase negative staphylococci isolated from different clinical sources. Cent Afr J Med 1996; 42: 258-261.

22. Simonet M, Hermann JL, Veron M. Activity of cefuroxime against bacterial strains isolated from acute otitis media. Pathol Biol 1990; 38: 355-357.

23. Guglielmo BJ, Luber AD, Paletta Jr D, Jacobs RA. Ceftriaxone therapy for Staphylococcal osteomyelitis. Clin Infect Dis 2000; 30: 205-207.