2006, Number 2
<< Back Next >>
Vet Mex 2006; 37 (2)
Transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in a farm with solid or open pen partitions determined by polymerase chain reaction test
Torremorell M, Pijoan C, Ruiz A, Mendoza S
Language: English/Spanish
References: 17
Page: 181-190
PDF size: 365.60 Kb.
ABSTRACT
Se describe la dinámica de transmisión de
Micoplasma hyopneumoniae en una unidad convencional con dos diferentes divisiones (abierta y cerrada) como variables que influyen en la distribución del organismo. El estudio se llevó a cabo en una granja donde se tenía conocimiento de que habría 50% de prevalencia de
M. Hyopneumoniae en cerdos al destete positivos a PCR. Esta granja cuenta con dos salas de lactancia (6 corrales/sala), una sala se utilizó con separaciones abiertas. La otra sala tuvo una modificación para instalar separaciones sólidas de material lavable. Se adquirieron dieciséis cerdos de una granja negativa a
M. hyopneumoniae y se utilizaron como cerdos testigo, los cuales se ubicaron alternados en la sala de lactancia (dos corrales/sala). El resto de las unidades se ocuparon con cerdos de la propia granja (diez cerdos/unidad). De los cerdos testigo y de dos cerdos de la propia granja de cada corral, se tomaron muestras con un hisopo nasal estéril en el periodo de destete y también muestras sanguíneas. Los hisopos nasales fueron analizados por la PCR-anidada y la serología se realizó con la prueba de ELISA-tween 20. Los resultados revelaron que no hay diferencia estadística en la transmisión de
M. hyopneumoniae entre los grupos de separaciones abiertas y sólidas. Se demostró que
M. hyopneumoniae fue transmitido lentamente entre la salas de lactancia hasta el punto donde repentinamente la infección se incrementó. La transmisión de
M. hyopneumoniae estaba confinada a las salas de destete y no fue afectada por el diseño de las separaciones. La transmisión entre cerdos infectados y los testigos parece que se debió a la distribución microbiana. La PCR probó ser una herramienta útil para detectar la transmisión de
M. hyopneumoniae en las salas de lactancia de las granjas.
REFERENCES
Mendoza S, Pijoan C, Torremorell M. The PCR as a tool for detecting respiratory microorganisms in pigs. Proceedings of the 16th International Pig Veterinary Society Congress; 2000 September 17-20; Ed: Melbourne, Australia. Causal Productions Pty Ltd, 2000: 449
Mattsson JG, Bergström K, Wallgren P, Johansson K-E. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae in nose swabs from pigs by in vitro amplification of the 16S rRNA gene. J Clin Microbiol 1995;33:893-897.
Calsamiglia M, Pijoan C, Trigo A. Application of a nested polymerase chain reaction assay to detect Mycoplasma hyopneumoniae from nasal swabs. J Vet Diagn Invest 1999;11:246-251.
Stärk KDC, Nicolet J, Frey J. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae by air sampling with a nested PCR assay. App Environ Microbiol 1998;64:543-548.
Cruz ST, Tórtora PJL, Vega MA, Romero RA, Mendoza ESE, Ciprián CA. Cinética de la infección experimental en cerdos con Mycoplasma hyopneumoniae usando inmunofluorescencia. Vet Méx 2003;34:61-68.
Goodwin RFW. Apparent reinfection of enzootic-pneumonia-free pig herds: Search for possible causes. Vet Rec 1985;116:690-694.
Jorsal SE, Thomsen BL. A Cox regression analysis of risk factors related to Mycoplasma suipneumoniae reinfection in Danish SPF-herds. Acta Vet Scand 1988;Suppl 84:436-438.
Stärk KDC, Keller H, Eggenberger E. Risk factors for the reinfection of specific pathogen-free pig breeding herds with enzootic pneumonia. Vet Rec 1992;131:532-535.
Thomsen BL, Jorsal SE, Andersen S, Preben W. The Cox regression model applied to risk factor analysis of infections in the breeding and multiplying herds in the Danish SPF system. Prev Vet Med 1992;12:287-297.
Pijoan C. Diseases of high health pigs: Some ideas on pathogenesis. Proceedings of AD Leman Swine Conf; St. Paul, Minnesota. 1995 September16-17; St. Paul, Minnesota. St. Paul, Minnesota: University of Minnesota,1995.
Halbur PG. Defining the causes of PRDC. Swine Consultant Magazines, 1996;4-15.
Bereiter M, Young TF, Joo HS, Ross RF. Evaluation of the ELISA and comparison to the complement fixation test and radial immunodiffusion enzyme assay for detection of antibodies against Mycoplasma hyopneumoniae in swine serum. Vet Microbiol 1990;25:177-192.
Calsamiglia M, Pijoan C. Colonization state and colostral immunity to Mycoplasma hyopneumoniae of different parity sows. Vet Rec 2000;146:530-532.
Ross RF. Mycoplasmal diseases. In: Leman A, Straw B, Mengeling W, D’Allaire S, Taylor D, editors. Diseases of Swine. Ames, Iowa: Iowa State University Press; 1992:537-551.
Clark LK, Armstrong CH, Freeman MJ, Scheidt AB, Sands-Freeman L, Knox K. Investigating the transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in a swine herd with enzootic pneumonia. Vet Med 1991;543-550.
Mebus CA, Underdahl NR. Scanning electron microscopy of trachea and bronchi from gnotobiotic pigs inoculated with Mycoplasma hyopneumoniae. Am J Vet Res 1977;38:1249-1254.
Blanchard B, Vena MM, Cavalier A, Le Lannic J, Gouranton J, Kobisch M. Electron microscopic observation of the respiratory tract of SPF piglets inoculated with Mycoplasma hyopneumoniae. Vet Mex 1992;30:329-41