Arencibia DF, Vidal A, Rosario LA, Suárez YE, Delgado L

Language: Spanish
References: 20
Page: 28-33
PDF size: 310.55 Kb.

ABSTRACT

Balb/c mice of both sexes were evaluated as biomodel in the induction of micronucleis in bone marrow cells by cyclophosphamide and bleomycin. They were divided into five experimental groups per sex. The first one was administered with NaCl 0.9% by intraperitoneal (i.p) route, the second and third groups were administered with cyclophosphamide by i.p route, with designs of different treatments at doses of 50 mg/kg. The fourth and fifth groups were administered with bleomycin by i.p route, equally in two designs of different treatments at 20 mg/kg doses. This resulted in a higher micronucleis induction of polychromatic erythrocytes and in a higher citotoxicity index with the use of cyclophosphamide administered twice before the sacrifice, with a 24-hours interval between administrations. According to our experimental conditions, this is the best design to induce a considerable number of micronucleis in bone marrow cells of mice, being useful in experimental designs to evaluate drugs with antigenotoxic effect. In addition, it implies its use according to the best found experimental design as positive control in mutagenesis and genotoxicity studies.

REFERENCES

1. OECD. Genetic Toxicology: In vivo Mammalian Erythrocyte Micronucleus Test, in bone marrow cells TG 474 (Annual Report 2009). Public Affairs and Communications Directorate Editions. Paris, France: OECD online Bookshop Editions; 2009:7-123. Disponible en: http://www.oecd.org/bookshop

2. EPA. Environmental Protection Agency. Toxic Substances (7101). Mammalian Erythrocyte Micronucleus Test. United States Government Printing Office Editions. Health Effects Test Guidelines Washington: IRL Press; 1998.

3. Martínez G, Giuliani A, León OS, Pérez G, Núñez AJ. Effect of Mangifera indica L extract (VIMANG) on proteins and hepatic microsomes peroxidation. Phytotherapy Research 2001;15:581- 5.

4. Prieto G, Errecalde C, Trotti N. Farmacología clínica de los antineoplásicos. Monografía Medicina Veterinaria 1999; 19(2):1-8.

5. Lóriga E, Alfonso B, Socorro M, Ortega J, Pomares Y. Evaluación genotóxica de la vacuna VA-MENGOC-BC® empleando el ensayo de micronúcleos en médula ósea de ratón. Anuario Toxicología 2001;1(1):25-9.

6. Fraga JR, Domínguez Y, Friman M, González SB, Somoza AD, Pérez C. Evaluación genotóxica de la vacuna antileptospirósica vax-SPIRAL® empleando el ensayo de micronúcleos trasplacentarios. Anuario Toxicología 2001; 1(1):35-9.

7. Domínguez A, Tamayo M, Pérez I, Salas H, Pérez O, Batista A. Evaluación citotóxica y genotóxica del adyuvante AFCo1 por el ensayo de morfología de la cabeza del espermatozoide en ratón NMRI. VacciMonitor 2009;18(3):13-7.

8. Arencibia DF, Rosario LA, Rodríguez Y, Martin Y, Díaz D. Frecuencia espontánea e inducida de anomalías en la morfología de la cabeza del espermatozoide y micronúcleos en médula ósea de ratones Balb/c y OF-1. Retel 2009; 24(2):7- 29.

9. Arencibia DF, Rosario LA. El ratón como biomodelo en los ensayos de genotoxicidad, resumen de resultados finales del estudio, dos años de experiencias, Instituto Finlay, Cuba. Retel 2010; 27(1):1-8.

10. Canadian Council on Animal Care (CCAC). Guidelines for the use of animals in Psychology. In: Olfert ED, Cross BM, McWilliam DVM, McWilliam AA (Eds.) Ottawa: Bradda Printing Services Inc; 1997.

11. Arencibia DF, Rosario LA, Rodríguez Y, López Y, Díaz D. Frecuencia espontánea e inducida de aberraciones cromosómicas en médula ósea de ratones NMRI y Balb/c de ambos sexos. Retel 2009; 23(2):8-22.

12. Díaz S, González I, González R, Coll F. Evaluación antigenotóxica in vivo de un análogo de brasinosteroide. Revista Cubana de Farmacia 2008; 42(Sup Esp 3):75-6.

13. Arencibia DF, Rosario LA, Morffi J, Curveco D. Desarrollo y estandarización de la técnica en tres ensayos de genotoxicidad. Retel 2009; 25(3):22-38.

14. Mani S, Buzaid AC, Cadman EC. Pharmacology of antineoplastic agents, multidrug resistance, and the feature. In: Hoffman R, et al eds. Hematology: basic principles and practice. 2 ed. New York: Churchill Livingstone; 1995 p. 915- 40.

15. Arencibia DF, Gutiérrez A, Gámez R, Pardo B, Curveco D, García H. Evaluación Genotóxica del D-004, extracto del fruto de la palma real (Roystonea regia), mediante el Ensayo de Micronúcleos en Médula Ósea de Ratón. Revista Cubana de Farmacia 2009; 43(2):8-9.

16. Gutiérrez A, Fernández I, Gámez R, García H. Evaluación genotóxica in vivo del D-004 en el ensayo de micronúcleos en médula ósea en ratones. Revista CENIC, Ciencias Biológicas 2005;36 (Especial):14-8.

17. Yiqiang L, Mengmeng Q, Liwei S, Yulin W, Yuangao CH. Genotoxicity study of phenol and o cresol using the micronucleus test and the comet assay. Toxicol & Environmental Chemical 2005;87(3):365-72.

18. Cancino L, Leiva A, Garrido G, Cossío M, Prieto E. VIMANG: los efectos antigenotóxico y modulador de las enzimas glutatión peroxidasa y glutatión-S-transferasa. Revista Cubana de Investigaciones Biomédicas 2001; 20(1):48-53.

19. Arencibia DF, Rosario LA, Curveco DL. Comparación de la Respuesta de Ratones Balb/c de Ambos Sexos a la Administración de dos Sustancias Mutagénicas mediante el Ensayo de Aberraciones Cromosómicas en Células de la Médula. Revista Argentina de Veterinaria 2010;27(269):1-10.

20. Matuo R, Oliveira RJ, Silva AF, Mantovani MS, Ribeiro LR. Anticlastogenic Activity of Aqueous Extract of Agaricus blazei in Drug-Metabolizing Cells (HTCs) During Cell Cycle. Toxicology Mechanisms Method 2007; 17(3):147-52.