2018, Número 3
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Biotecnol Apl 2018; 35 (3)
Efecto de la temperatura sobre el desempeño analítico del ensayo UMELISA® TIR NEONATAL para la pesquisa neonatal de la fibrosis quística
Castells-Martínez EM, Frómeta A, Pérez PL, Martín O, del Río L, Espinosa M, Almira C, Núñez Z, González-Reyes EC
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 28
Paginas: 3301-3304
Archivo PDF: 497.20 Kb.
RESUMEN
El UMELISA
® TIR NEONATAL es un diagnosticador desarrollado para cuantificar tripsina inmunorreactiva en manchas de sangre seca sobre papel de filtro de recién nacidos. Los reactivos se almacenaron a –20, 23 y 37 ºC durante 2, 4, 6, 8, 14 y 20 días. Se calculó la media de los valores de fluorescencia de los calibradores, el porcentaje de recuperación (%R) y la concentración del control del ensayo. El diagnosticador mostró comportamientos diferentes en cada temperatura estudiada, obteniéndose %R superiores al 80 %, para el almacenamiento a –20 ºC. Para 37 ºC no fue posible sobrepasar los 6 días de la prueba debido a una disminución en el %R. Para 23 ºC, a los 14 días se observó una disminución del %R, pero aún permisible según lo descrito en las especificaciones del ensayo. La temperatura influye directamente sobre el desempeño analítico del UMELISA
® TIR NEONATAL. El estuche de reactivos puedes ser almacenado a una temperatura de –20 ± 2 ºC durante 20 días ya una temperatura de 23 ± 2 ºC, durante 14 días sin que se afecten sus características funcionales, pero no puede ser almacenado a una temperatura de 37 ± 2 ºC por más de 4 días ya que los parámetros óptimos de calidad se ven afectados. Se demostró que los parámetros de calidad del UMELISA
® TIR NEONATAL, se afectan según sus condiciones de almacenamiento.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Parad RB, Comeau AM. Newbornscreening for cystic fibrosis. Pediatr Ann. 2003;32(8):528-35.
Sontag MK, Hammond KB, Zielenski J, Wagener JS, Accurso FJ. Two-tiered immunoreactive trypsinogen-based newborn screening for cystic fibrosis in Colorado: screening efficacy and diagnostic outcomes. J Pediatr. 2005;147(3 Suppl):S83-8.
Riordan JR, Rommens JM, Kerem B, AlonN, Rozmahel R, Grzelczak Z, et al. Identification of the cystic fibrosis gene: clon-ing and characterization of complementary DNA. Science. 1989;245(4922):1066-73.
Massie RJ, Curnow L, Glazner J, Armstrong DS, Francis I. Lessons learned from 20 years of newborn screening for cystic fibrosis. Med J Aust. 2012;196(1):67-70.
Dijk FN, Fitzgerald DA. The impact of newborn screening and earlier intervention on the clinical course of cystic fibrosis. Paediatr Respir Rev. 2012;13(4):220-5.
Farrell PM, Kosorok MR, Laxova A, Shen G, Koscik RE, Bruns WT, et al. Nutritional benefits of neonatal screening for cystic fibrosis. Wisconsin Cystic Fibrosis Neonatal Screening Study Group. N Engl J Med. 1997;337(14):963-9.
Grosse SD, Rosenfeld M, Devine OJ, Lai HJ, Farrell PM. Potential impact of newborn screening for cystic fibrosis on child survival: a systematic review and analysis. J Pediatr. 2006;149(3):362-6.
VanDevanter DR, Pasta DJ, Konstan MW. Improvements in lung function and height among cohorts of 6-year-olds with cystic fibrosis from 1994 to 2012. J Pediatr. 2014;165(6):1091-7 e2.
Crossley JR, Elliott RB, Smith PA. Driedblood spot screening for cystic fibrosis in the newborn. Lancet. 1979;1(8114): 472-4.
González EC, Castells EM, Frómeta A, Arteaga AL, Del Río L, Tejeda Y, et al. SUMA technology and newborn screening tests for inherited metabolic diseases in Cuba: An Overview of the First 30 Years. J Inborn Errors Metab Screen. 2016;4:1-9.
Magari RT. Assessing shelf life using real-time and accelerated stability tests. BioPharm Int. 2003;16 (11):36-48.
Levy HL, Simmons JR, MacCready RA. Stability of amino acids and galactose in the newborn screening filter paper blood specimen. J Pediatr. 1985;107(5):757-60.
Waite KV, Maberly GF, Eastman CJ. Storage conditions and stability of thyrotropin and thyroid hormones on filter paper. Clin Chem. 1987;33(6):853-5.
Zytkovicz TH, Eaton RB, Foley TP, Lister BC, Rojas DA, Schwerier ME. Instability of enzymes, antibodies, and other analytes in dried blood spots – is the major problem heat or humidity. In: Therell BL, Aldis BG, editors. Proceeding of the Eleventh National Symposium on Neonatal Screening; Sept. 12-16, 1995; Corpus Christi, Texas. Washington, DC: ASTPHLD; 1995. p. 293-5.
Freer DE. Observations on heat/ humidity denaturation of enzymes in filter-paper blood spots from newborns. Clin Chem. 2005;51(6):1060-2.
Li L, Zhou Y, Bell CJ, Earley MC, Hannon WH, Mei JV. Development and characterization of dried blood spot materials for the measurement of immunoreactive trypsinogen. J Med Screen. 2006;13(2):79-84.
Castells Martinez EM, Gonzalez EC, Tejeda Y, Frometa A, Martin O, Espinosa M, et al. An Enzyme Immunoassay for Determining Immunoreactive Trypsinogen (IRT) in Dried Blood Spots on Filter Paper Using an Ultra-Microanalytical System. Appl Biochem Biotechnol. 2018;186(4):1034-46.
Ochoa R, Martínez JC, Ferriol X, García AM, Estrada E, Blanco R, et al. Principios y procedimientos para la validación de inmunoensayos cuantitativos empleados para evaluar la inmunogenicidad de vacunas. Vaccimonitor. 1999;8(10):9-13.
Frómeta-Suárez A, Marrero-González N, González-Reyes EC, Lugo-Vallejo E, Fernández- Fernández L, Doménech- Mylnikova MB. Estudio comparativo de los tres papeles de filtro en los ensayos UMELISA para el tamizaje neonatal de hipoti-roidismo congénito y fenilcetonuria. Rev Biomed. 2002;13(4):241-7.
FDA. Guidelines for submitting documentations for the stability of human drugs and biologics. Rockville (MD): Food and Drug Administration; 1987.
ICH. Stability testing for new drug substances and products, Q1A(R). Geneva: International Conference on Harmonisa-tion of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use; 1994.
ICH. Stability testing for new drug substances and products, Q1A(R2). Geneva: International Conference on Harmonisation of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use; 2003.
Tsong Y. Recent issues in stability testing. J Biopharm Stat. 2003;13(3):7-9.
ICH. Stability data evaluation, Q1E. Geneva: International Conference on Harmonisation of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use; 2003.
ICH. Bracketing and matrixing designs for stability testing of new drug substances and products. Q1D. Geneva: Interna-tional Conference on Harmonisation of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use; 2003.
Cabrini G, Pederzini F, Perobelli L, Mastella G. An evaluation of an enzyme immunoassay method for immunoreactive trypsin in dried blood spots. Clin Biochem. 1990;23(3):213-9.
Dhondt JL, Farriaux JP. What do immunoreactive trypsin assays measure? Screening 1994;3(1):33-8.
Kloosterboer M, Hoffman G, Rock M, Gershan W, Laxova A, Li Z, et al. Clarification of laboratory and clinical variables that influence cystic fibrosis newborn screening with initial analysis of immunoreactive trypsinogen. Pediatrics. 2009;123(2):e338-46.