2020, Número 4
<< Anterior Siguiente >>
salud publica mex 2020; 62 (4)
Resistencia a insecticidas en Aedes aegypti y Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) de Tapachula, Chiapas, México
López-Solís AD, Castillo-Vera A, Cisneros J, Solis-Santoyo F, Penilla-Navarro RP, Black IV WC, Torres-Estrada JL, Rodríguez AD
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 42
Paginas: 439-446
Archivo PDF: 347.68 Kb.
RESUMEN
Objetivo. Determinar la resistencia a insecticidas en
Ae. aegypti
y
Ae. albopictus de Tapachula, Chiapas, México.
Material
y métodos. Se utilizaron ovitrampas para obtener huevos
de mosquitos
Aedes y se realizaron pruebas de susceptibilidad
(CDC) y ensayos enzimáticos con la primera generación.
Resultados. Aedes aegypti mostró resistencia a deltametrina,
permetrina, malatión, clorpirifos, temefos y a bendiocarb
(CARB), mientras que
Aedes albopictus a malatión y en menor
grado a cloripirifos, temefos, permetrina y deltametrina.
Ambas especies mostraron altos niveles de enzimas como
citocomo P
450 y glutatión S-tranferasa, mientras que los niveles
de esterasas variaron por especie y sitio muestreado. Se
detectó acetilcolinesterasa insensible a insecticidas en ambas
especies.
Conclusión. En un hábitat urbano de Tapachula,
Chiapas, México donde se aplica control con insecticidas
Ae. aegypti y
Ae. albopictus sólo son susceptibles al propoxur.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Moore CG. Aedes albopictus in the United States: current status and prospects for further spread. J Am Mosq Control Assoc. 1999;15:221-7.
Ibáñez-Bernal S, Martínez-Campos C. Aedes albopictus in México. J Am Mosq Control Assoc. 1997;10(2):231-2.
Orta-Pesina H, Mercado-Hernández R, Elizondo-Leal JF. Distribución de Aedes albopictus (Skuse) en Nuevo León, México, 2001-2004. Salud Publica Mex. 2005;47:163-5.
Casas-Martínez M, Torres-Estrada JL. First evidence of Aedes albopictus (Skuse) in Southern Chiapas, Mexico. Emerg Infect Dis. 2003;9(5):606-7.
Salomón-Grajales J, Lugo-Moguel GV, Tinal-Gordillo V, Cruz-Velázquez J, Barry JB, Lars E, et al. Aedes albopictus Mosquitoes, Yucatan Peninsula, Mexico. Emerg Infect Dis. 2012;18(3):525-7.
Torres-Avendaño JI, Castillo-Ureta H, Torres-Montoya EH, Meza-Carrillo E, López-Mendoza RL, Vazquez-Martinez MG, Rendón-Maldonado JG. First Record of Aedes albopictus in Sinaloa, México. J Am Mosq Control Assoc. 2015;31(2):164-6.
Kautz T, Diaz-Gonzalez EE, Erasmus J, Malo-Garcia IR, Langsjoen R, Patterson E, et al. Chikungunya virus identified as the etiological agent of an outbreak of febrile illness in Chiapas, Mexico, 2014. Emerg Infect Dis. 2015;21(11):2070-3.
Sánchez-Rodríguez OS, Sánchez-Casas RM, Laguna-Aguilar M. Natural transmission of dengue virus by Aedes albopictus at Monterrey, Northeastern Mexico. Southwestern Entomologist. 2014;39(3):459. https://doi. org/10.3958/059.039.0307
Mancha-Moctezuma C. Experiencia de México en la estrategia de gestión integrada dengue. México: Secretaría de Salud, 2014 [citado abril 10, 2016]. Disponible en: http://www.paho.org/hq/index.php?option=com_ docman&task=doc_view&gid=25884&Itemid
Centro Nacional de Programas Preventivos y Control de Enfermedades. Lista de insumos recomendados para el combate de insectos vectores de enfermedades. México: CENAPRECE, 2014 [citado julio 12, 2016]. Disponible en:http://www.cenaprece.salud.gob.mx/programas/interior/ vectores/descargas/pdf/lista_insumos_recomendados_vectores2014.pdf
World Health Organization. Test procedures for insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes. 2nd ed. Ginebra: WHO [citado julio 14, 2016]. Disponible en: https://apps.who.int/iris/bitstream/hand le/10665/250677/9789241511575-eng.pdf;jsessionid=032D674946ED0785 F4522A191C5D0E5B?sequence=1
Saavedra-Rodríguez K, Urdaneta-Marquez L, Rajatileka S, Moulton M, Flores AE, Fernández-Salas I, et al. A mutation in the voltage-gated sodium channel gene associated with pyrethroid resistance in Latin American Aedes aegypti. Insect Mol Biol. 2007;16(6):785-98.
Ponce G, Flores A, Fernandez I, Saavedra K, Reyes G, Lozano S, et al. Recent rapid rise of a permethrin knock down resistance allele in Aedes aegypti in México. PLoS Negl Trop Dis. 2009;3:e531
Aponte HA, Penilla RP, Dzul-Manzanilla F, Che-Mendoza A, Lopez AD, Solis F, et al. The pyrethroid resistance status and mechanisms in Aedes aegypti from the Guerrero state, Mexico. Pestic Biochem Physiol. 2013;107(2):226-34. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2013.07.005
Braga IA, Lima JBP, Soares SS, Valle D. Aedes aegypti resistance to temephos during 2001 in several municipalities in the States of Rio de Janeiro, Sergipe and Alagoas, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2004;99:199-203.
Tovar-Zamora I. Fluctuación de Aedes aegypti (Linnaeus, 1762), susceptibilidad a insecticidas y el efecto de atrayentes, para su posible manejo en Baja California Sur, México (tesis). México: Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, 2016.
Hemingway J, Hawkes NJ, McCarroll L, Ranson H. The molecular basis of insecticide resistance in mosquitoes. Insect Biochem Mol Biol. 2004;34:653-65.
Higa Y. Dengue vectors and their spatial distribution. Trop Med Health. 2011;39:17-27.
Centro Nacional de Programas Preventivos y Control de Enfermedades. Guía metodológica para las acciones de control larvario. México: Secretaría de Salud, 2010 [citado abril 22, 2016]. Disponible en: http:// www.cenaprece.salud.gob.mx/programas/interior/vectores/descargas/pdf/ guia_entomologica_fase_larvaria_pupal.pdf
Zar J. Biostatistical analysis. Englewood Cliffs, NJ: Prentice-Hall, 1984.
Balta RL. Guía práctica para la identificación de Aedes aegypti. Lima: Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud, 1997 [citado mayo 17]. Disponible en: http://repositorio.ins.gob.pe/handle/INS/138
World Health Organization. Expert committee on vector biology and control. Vector resistance to pesticides: Fifteenth report of the WHO expert committee on vector biology and control [meeting held in Geneva from 5 to 12 March 1991]. Ginebra: World Health Organization, 1992 [citado noviembre 12, 2016]. Disponible en: http://www.who.int/iris/handle/ 10665/37432
World Health Organization. Instructions for determining the susceptibility or resistance of mosquito larvae to insecticides. WHO/VBC/81.807. Ginebra: WHO, 1981 [citado mayo 5, 2016]. Disponible en: http://apps. who.int/iris/bitstream/handle/10665/69615/WHO_VBC_81.807_eng. pdf?sequence=1&isAllowed=y
Brogdon WG, Chan A. Guideline for evaluating insecticide resistance in vectors using the CDC bottle bioassay. Atlanta: Division of Parasitic Diseases and Malaria, Center for Disease Control and Prevention [citado mayo 28, 2014]. Disponible en: https://www.cdc.gov/malaria/resources/pdf/ fsp/ir_manual/ir_cdc_bioassay_en.pdf
Penilla RP, Rodríguez AD, Hemingway J, Torres JL, Arredondo- Jiménez JI, Rodriguez MH. Resistance management strategies in malaria vector mosquito control. Baseline data for a large-scale field trial against Anopheles albimanus in Mexico. Med Vet Entomol. 1998;12:217-33.
Marcombe SA, Farajollahi SP, Healy GG, Clark DM, Fonseca DM. Insecticide resistance status of United States populations of Aedes albopictus and mechanisms involved. PLoS ONE. 2014;9(7):e101992. https://doi. org/10.1371/journal.pone.0101992
Sharma SN, Saxena VK, Lal S. Study on susceptibility status in aquatic and adult stages of Aedes aegypti and Aedes albopictus against insecticides at international airports of south India. J Commun Dis. 2004;36:177-81.
Ponlawat A, Scott JG, Harrington LC. Insecticide susceptibility of Aedes aegypti and Aedes albopictus across Thailand. J Med Entomol. 2005;42(5):821-5. https://doi.org/10.1093/jmedent/42.5.821
Chen CD, Nazni WA, Lee HL, Sofian-Azirun M. Susceptibility of Aedes aegypti and Aedes albopictus to temephos in four study sites in Kuala Lumpur City Center and Selangor State, Malaysia. Trop Biomed. 2005;22:207-16.
Chen L, Zhao T, Pan C, Ross J, Ginevan M, Vega H, Krieger R. Absorption and excretion of organophosphorous insecticide biomarkers of malathion in the rat: implications for overestimation bias and exposure misclassification from environmental biomonitoring. Regul Toxicol Pharmacol. 2013;65:287-93.
Grigoraki L, Lagnel J, Kioulos I, Kampouraki A, Morou E, Labbé P, et al. Transcriptome profiling and genetic study reveal amplified carboxylesterase genes implicated in temephos resistance, in the Asian tiger mosquito Aedes albopictus. PLoS Negl Trop Dis. 2015;9(5):e0003771. https://doi. org/10.1371/journal.pntd.0003771
Liu H, Cupp EW, Guo A, Liu Nannan. Insecticide Resistance in Alabama and Florida Mosquito Strains of Aedes albopictus. J Med Entomol. 2004;41(5):946-952. https://doi.org/10.1603/0022-2585-41.5.946
World Health Organization. Space spray application of insecticides for vector and public health pest control. A practitioner´s guide. Ginebra: WHO, 2003 [citado mayo 1, 2016]. Disponible en: http://apps.who.int/iris/ bitstream/10665/68057/1/WHO_CDS_WHOPES_GCDPP_2003.5.pdf
Flores AE, Grajales JS, Salas FI, Garcia GP, Becerra MH, Lozano S, et al. Mechanisms of insecticide resistance in field populations of Aedes aegypti (L) from Quintana Roo, Southern Mexico. J Am Mosq Control Assoc. 2016;22(4);672-7.
García GP, Flores AE, Fernandez-Salas I, Saavedra-Rodriguez K, Reyes- Solis G, Lozano-Fuentes S, et al. Recent rapid rise of a permethrin knock down resistance allele in Aedes aegypti in Mexico. PLoS Negl Trop Dis. 2009;3(10): e531. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000531
Castro E. Susceptibilidad de Aedes aegypti L. (Diptera: Culicidae) a Insecticidas en Guerrero, México. Southwest Entomol. 2014;39(3):601-12.
Flores AE, Albeldano-Vazquez W, Salas FI, Badii MH, Becerra HL. Elevated alpha-esterase levels associated with permethrin tolerance in Aedes aegypti (L.) from Baja California, Mexico. Pest Biochem Physiol. 2005;(82):66-78.
Vázquez-Martínez NI, Dzul-Manzanilla F, López-Solis AD, Solis-Santoyo F, Rodríguez-Ramírez AD, Penilla-Navarro RP. Las glutatión s-transferasas en Aedes aegypti resistente a piretroides y DDT de Guerrero y Chiapas. Entomología Mexicana, 2012;11(2):874-9.
Lee RM, Choong CT, Goh BP, Ng LC, Lam-Phua SG. Bioassay and biochemical studies of the status of pirimiphos-methyl and cypermethrin resistance in Aedes (Stegomyia) aegypti and Aedes (Stegomyia) albopictus (Diptera: Culicidae) in Singapore. Trop Biomed. 2014;31(4):670-9.
Perera MD, Hemingway J, Karunaratne P. Multiple insecticide resistance mechanisms involving metabolic changes and insensitive target sites selected in anopheline vectors of malaria in Sri Lanka. J Malaria. 2008;7:168.
Prieto AV, Suárez MF, González R. Susceptibilidad de dos poblaciones de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) de Cali (Valle, Colombia) a temefos (Abate) y Triflumuron (Starycide). Rev Colomb Entomol. 2002;28(2):175-8.
Fonseca I, Quiñones M. Resistencia a insecticidas en mosquitos (Diptera: Culicidae): mecanismos, detección y vigilancia en salud pública. Rev Colomb Entomol. 2005;31(2):107-15.