2019, Número 2
<< Anterior Siguiente >>
VacciMonitor 2019; 28 (2)
Condiciones de adsorción de un candidato vacunal basado en vesículas de membrana externa derivada de Salmonella Paratyphi A en adyuvantes de aluminio
Hernández-Cedeño M, Zayas-Vignier C, Pérez-Quiñoy JL, Blain-Torres K, Pedroso-Fernández J, Soubal-Mora JP, Fernández-Castillo S, Acevedo-Grogues R
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 62-67
Archivo PDF: 297.82 Kb.
RESUMEN
La capacidad inmunoestimuladora de la mayoría de las vacunas es potenciada mediante la adsorción en adyuvantes que contienen aluminio. Variando las condiciones de adsorción (pH, tiempo de adsorción) cambia la cantidad de antígeno adsorbida y por lo tanto la capacidad de estimulación del sistema inmune. El Instituto Finlay de Vacunas investiga un nuevo candidato vacunal basado en vesículas de membrana externa de Salmonella Paratyphi A (VME-SPA). El objetivo de este trabajo fue determinar las condiciones de adsorción de las VME-SPA en dos adyuvantes de sales de aluminio (Al(OH)3 y AlPO4). Para ello, las VME-SPA fueron adsorbidas en ambos adyuvantes bajo diferentes condiciones de pH y tiempo. Mediante la construcción de una Isoterma de Langmuir se determinaron parámetros como la capacidad adsortiva (qm) y el coeficiente de adsorción (Kd). El lote de VME-SPA empleado estaba formado por poblaciones de nanoestructuras con un tamaño de partículas entre 60 y 100 nm. La adsorción de las VME-SPA en ambos adyuvantes, mostró valores ≥95% a pH neutro (6,5-7,0). Las VME-SPA en presencia de AlPO4 alcanzaron el estado de equilibrio en menor tiempo (99% a partir de 30 min) en comparación con Al (OH)3 (95% a partir de 3 h). Las isotermas evaluadas para ambos adyuvantes cumplieron con el modelo de Langmuir (R2≥0,99), con valores de qm y Kd diferentes entre los sistemas de adsorción. El estudio demostró que las VME-SPA se adsorbieron satisfactoriamente en ambos geles, proceso en el que están involucrados diferentes mecanismos de adsorción.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Gupta RK. Aluminum compounds as vaccine adjuvants. Adv Drug Deliv Rev. 1998;32:155-72.
Al-shakhshir RH, Regnier FE, White JL, Hem SL. Contribution of Electrostatic and Hydrophobic Interactions to the Adsorption of Proteins by Aluminum-Containing Adjuvants. Vaccine. 1995;13(1):41-4.
Clapp T, Siebert P, Chen D, Jones Braun L, Braun LJ. Vaccines with Aluminium-Containing Adjuvants: Optimizing Vaccine Efficacy and Thermal Stability. J Pharm Sci. 2012;100(2):388-401.
Batista-Duharte A, Lastre M, Pérez O. Adyuvantes inmunológicos. Determinantes en el balance eficacia-toxicidad de las vacunas contemporáneas. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2014;32(2):106-14.
Pakkanen SH, Kantele JM, Savolainen LE, Rombo L, Kantele A. Specific and cross-reactive immune response to oral Salmonella Typhi Ty21a and parenteral Vi capsular polysaccharide typhoid vaccines administered concomitantly. Vaccine. 2015;33(3):451-8.
Pakkanen SH, Kantele JM, Kantele A. Cross-reactive gut-directed immune response against Salmonella enterica serovar Paratyphi A and B in typhoid fever and after oral Ty21a typhoid vaccination. Vaccine. 2012;30(42):6047-53.
Xiong K, Chen Z, Zhu C, Li J, Hu X, Rao X, et al. Safety and immunogenicity of an attenuated Salmonella enterica serovar Paratyphi A vaccine candidate. Int J Med Microbiol. 2015;305(6):563-71.
Organización Mundial de la Salud. Salmonella (no tifoidea). Ginebra: OMS; 2017. p. 1-4. Disponible en: http://www.who.int/ mediacentre/factsheets/fs139/es/.
Martin LB, Simon R, Maclennan CA, Tennant SM, Sahastrabuddhe S, Khan MI. Status of paratyphoid fever vaccine research and development. Vaccine. 2016;34(26):2900-2.
Dassarma P, Negi VD, Balakrishnan A, Kim J-M, Karan R, Chakravortty D, et al. Haloarchaeal gas vesicle nanoparticles displaying {Salmonella} antigens as a novel approach to vaccine development. Procedia Vaccinol. 2015;9:16-23.
Pérez JL, González Y, Año G, Cedré B, Valmaseda T, Alvarez M, et al. Obtención de extractos de membrana externa de Vibrio cholerae O1, mediante el uso de diferentes detergentes. VacciMonitor. 2006;15(1):1-7.
Foo K, Hameed B. Insights into the modeling of adsorption isotherm systems. Chem Eng J. 2010;156(5):2–10.
Lowry OH, Rosebrough, Nira J, Farr L, Randall RJ. Protein measurement with the folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193(1):265-75.
Jully V, Moniotte N, Mathot F, Lemoine D, Preat V. Development of a High-Throughput Screening Platform to Study the Adsorption of Antigens onto Aluminum-Containing Adjuvants. J Pharm Sci. 2015;104(2):557-65.
Gołoś, Aleksandra, Lutyńska A. Aluminium-Adjuvanted Vaccines- -A Review of the current state of knowledge. Przegl Epidemiol. 2015;69(2):731-4.
Huang M, Wang W. Factors affecting alum-protein interactions. Int J Pharm. 2014;466(1-2):139-46.
Wang W, Singh M. Selection of Adjuvants for Enhanced Vaccine Potency. World J Vaccines. 2011;1(2):33-78.
Hem SL, Hogenesch H. Relationship between physical and chemical properties of aluminum-containing adjuvants and immunopotentiation. Expert Rev Vaccines. 2007;6(5):685-98.
Jully V, Frédéric M, Nicolas M, Véronique P, Lemoine D, Mathot F, et al. Mechanisms of Antigen Adsorption Onto an Aluminum- Hydroxide Adjuvant Evaluated by High-Throughput Screening. J Pham. Sci. 2016;105(6):1829-36.
Hansen B, Sokolovska A, HogenEsch H, Hem SL. Relationship between the strength of antigen adsorption to an aluminumcontaining adjuvant and the immune response. Vaccine. 2007;25(36):6618–24.
Iyer S, Robinett RSR, HogenEsch H, Hem SL. Mechanism of adsorption of hepatitis B surface antigen by aluminum hydroxide adjuvant. Vaccine. 2004;22(11-12):1475-9.