2006, Número 1
<< Anterior Siguiente >>
Bioquimia 2006; 31 (1)
Marcadores enzimáticos como indicadores de resistencia a los antihelmínticos en el nematodo parásito gastroentérico de rumiantes Haemonchus contortus
Miranda-Miranda E, Liébano-Hernández E, López-Arellano ME, Mendoza-de-Gives P, Cossío-Bayúgar R
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 6-12
Archivo PDF: 102.05 Kb.
RESUMEN
La identificación de resistencia a los antihelmínticos del nematodo parásito
Haemonchus contortus, se hace mediante un complicado bioensayo que requiere larvas de nematodos de referencia, así como de campo, cultivadas en laboratorio y expuestas a diferentes productos. Con el fin de evaluar una posible alternativa diagnóstica, se hicieron ensayos enzimáticos en geles de poliacrilamida-SDS usando extractos de larvas L
3 de
H. contortus provenientes de tres cepas de referencia con diferentes niveles de resistencia y susceptibilidad a productos antihelmínticos, bencimidazoles e ivermectinas. Los ensayos que se diseñaron para detectar las enzimas esterasa (ES), fosfodiesterasa (FDE) y glutatión-S transferasa (GST), fueron procesados como zimogramas en imágenes digitalizadas, a partir de las cuales se obtuvieron sus respectivos densitogramas, valorando los diferentes pesos moleculares (PM) en miles de Daltones (kDa). Se identificaron dos ES con PM de 17 y 60 kDa compartidos entre nematodos sensibles y resistentes, así como una ES de 24 kDa presente sólo en cepas resistentes. Fue posible detectar FDE de 160, 130, y 70 kDa en todas las cepas y una isozima FDE de 41 kDa presente sólo en la cepa resistente a ivermectinas, misma cepa que también mostró una actividad enzimática FDE 94% mayor al nivel basal de la cepa sensible. El ensayo GST de las cepas resistentes mostró una isozima de PM de 49 kDa no detectable en la cepa susceptible, así como GST de 24 y 6 kDa presentes en todas las cepas. Los zimogramas utilizados, así como los datos obtenidos de éstos, bencimidazomostraron características suficientes para usarse como indicadores de resistencia a los antihelmínticos en poblaciones de
H. contortus.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Hunter RL, Markert CL. Histochemical demonstration of enzymes separated by zone electrophoresis in starch gels. Science 1957; 125: 1294.
Market CL, Moller F. Multiple form of enzymes: tissue ontogenetic, and species specific patterns. Proc Natl Acad Sci USA 1959; 45: 753.
Manchenko GP. Handbook of detection of enzymes on electrophoretic gels. Boca Raton Florida: CRC Press; 1994: 1-2.
Campos RR, Herrera DR, Quiroz RH, Olazarán JS. Resistencia de Haemonchus contortus a bencimidazoles en ovinos de México. Tec Pec Mex 1990; 28: 30-34.
García FA, Vázquez PV, López AME, Liébano HE, Mendoza DGP. In vitro and in vivo diagnosis of anthelmintic resistance in Haemonchus contortus infected sheep in México. En: Proceedings V International Seminar in Animal Parasitology. Mérida Yucatán México. 2003: 194-199.
Montalvo XA, Vázquez PV, López AME, Liébano HE. Presence of anthelmintic resistance against gastro-intestinal nematodes in sheep farms in Tlaxcala, Mexico. En: Proceedings V International Seminar in Animal Parasitology. Mérida Yucatán México. 2003: 298-306.
Field LM, Foster SP. Amplified esterase genes and their relationship with other insecticide resistance mechanisms in English field populations of the aphid, Myzus persicae (Sulzer). Pest Manag Sci 2002; 58: 889-894.
Karunaratne SH, Hemingway J. Malathion resistance and prevalence of the malathion carboxylesterase mechanism in populations of mosquito vectors of disease in Sri Lanka. Bull World Health Organ 2001; 79: 1060-1064.
Gimenez-Pardo C, Martínez-Grueiro MM, Gomez-Barrio A, Rodriguez-Caabeiro F. Cholinesterase and phosphatase activities in adults and infective-stage larvae of levamisoleresistant and levamisole-susceptible isolates of Haemonchus contortus. Vet Res Commun 2003; 27: 611-623.
Echevarria FA, Gennari SM, Tait A. Isoenzyme analysis of Haemonchus contortus resistant or susceptible to ivermectin. Vet Parasitol 1992; 44: 87-95.
Ecobichon DJ. Toxic effect of pesticides. En: Klaassen CD [Editor]. Casarett & Doulls’s Toxicology. 5a ed. New York: McGraw-Hill; 1996: 643-689.
Van Rossum AJ, Jefferies JR, Rijsewijk FA, LaCourse EJ, Teesdale-Spittle P, Barrett J, et al. Binding of hematin by a new class of glutathione transferase from the blood-feeding parasitic nematode Haemonchus contortus. Infect Immun 2004; 72: 2780-2790.
Kawalek JC, Rew RS, Heavner J. Glutathione S-transferase, a possible drug-metabolizing enzyme, in Haemonchus contortus-comparative activity of a cambendazole-resistant and a susceptible strain. Int J Parasitol 1984; 14:173-175.
Kerboeuf D, Aycardi J. Unexpected increased thiabendazole tolerance in Haemonchus contortus resistant to anthelmintic by modulation of glutathione activity. Parasitol Res 1999; 85: 713-718.
Bradford M. A rapid sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Anal Biochem 1976; 72: 248.
Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227: 680-685.
Miranda E, Cossío-Bayúgar R, Téllez-Alanís MR, García- Vázquez Z, Rosario-Cruz R, Ortiz-Estrada M. An enzymatic marker for ixodicide resistance detection in the cattle tick Boophilus microplus. Adv Agric Res 1995; 4: 001-008.
Ricci G, Bello ML, Caccuri AM, Galiazzo F, Federici G. Detection of glutathione transferase activity on polyacrylamide gels. Anal Biochem 1984; 143: 226.
Hodes ME, Retz JE. A positive zymogram for distinguishing among RNase and phosphodiesterases I and II. Anal Biochem 1981; 110: 150.
Gimenez-Pardo C, Martínez-Grueiro MM, Gómez-Barrio A, Rodriguez-Caabeiro F. Ivermectin resistant and susceptible third-stage larvae of Haemonchus contortus: cholinesterase and phosphatase activities. Mem Inst Oswaldo Cruz 2004; 99: 223-226.
Miranda-Miranda E, Osorio-Miranda G, Cossío-Bayúgar R. Acaricide resistance detection in the cattle tick Boophilus microplus by zymogram analysis. Rev Electrón Vet Nov 2005. Disponible en: www.veterinaria.org/revistas/ redvet.
Cossío-Bayúgar R, Miranda-Miranda E, Holman P. Molecular cloning of a phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase gene from the tick, Boophilus microplus (Acari: Ixodidae). Insect Biochem Mol Biol 2005; 35: 1378-1387.