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Rev Odont Mex 2018; 22 (1)
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 16
Paginas: 30-34
Archivo PDF: 218.16 Kb.
RESUMEN
El objetivo del presente trabajo es comparar dos técnicas de estudio de citología bucal, la citología exfoliativa y de impresión, para evaluar cambios en la mucosa oral que permitan el diagnóstico no invasivo de síndrome de Sjögren (SS).
Pacientes: Se seleccionaron 50 pacientes apareados por sexo y edad, diagnosticados con síndrome de Sjögren según criterios del Consenso Americano-Europeo. Los pacientes fueron distribuidos en tres grupos experimentales: controles sanos (C), n = 14, boca y ojo secos sin SS (BO), n = 13, y con SS n = 23.
Material y métodos: Para la citología exfoliativa se utilizó cepillo recolector de células (Citobrush) deslizándolo a lo largo de la lámina de vidrio, fijándose posteriormente en etanol al 95%. En citologías por impresión se utilizó papel de acetato de celulosa (Milipore Hawp 304
®), en tiras de un cm de longitud colocadas sobre la superficie de la mucosa bucal sobre el surco vestibular superior inmovilizando el papel y presionando por tres segundos. Se tiñeron con técnica de Papanicolau (PAP). Se valoró la morfología e histomorfometría, estudiando: área citoplasmática (AC), área nuclear (AN), relación núcleo-citoplasma (N:C) y cantidad de células por milímetro cuadrado (mm
2).
Resultados: Ambas técnicas nos permitieron observar en C: células epiteliales pavimentosas aisladas, basófilos, núcleos centrales normales, 20 a 30 por mm
2, relación N/C 1:8. En el grupo BO: células aisladas, agrupadas y plegadas, con citoplasma a predominio eosinófilo, aumento de la cantidad de células 40 por mm
2, relación núcleo-citoplasma relación N/C 1:4. En los pacientes SS se observó el área nuclear con cromatina más densa, 400 células por mm
2, y relación N/C 1:2 en relación a BO y C. Hubo diferencias estadísticamente significativas entre los grupos en todas las características estudiadas.
Conclusión: Podríamos inferir que la citología por impresión puede ser utilizada en el diagnóstico de lesiones orales y sistémicas en pacientes con hiposalivación.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Garcia-Carrasco M, Fuentes-Alexandro S, Escarcega RO, Salgado G, Riebeling C, Cervera R. Pathophysiology of Sjögren’s syndrome. Arch Med Res. 2006; 37 (8): 921-932.
Mavragani CP, Moutsopoulos NM, Moutsopoulos HM. The management of Sjögren’s syndrome. Nat Clin Pract Rheumatol. 2006; 2 (5): 252-261.
Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE et al. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revise version of the European criteria proposed by the American-Europea Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002; 61 (6): 554-558.
Per SR, Scully C, Hegartty AM. An update of the etiology and management of xerostomia. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2004; 97 (1): 28-46.
Sule Y, Ebru T, Muge B, Ronca M, Sezen F. Comparative analysis of autoantibodies against alfa-fodrin in serum, tear fluid, and saliva from patients with Sjögren’s syndrome. J Rheumatol. 2006; 33 (7): 1289-1292.
Busamia B, Gonzalez-Moles MA, Mazzeo M, Linares J, Demarchi M, Gobbi C et al. Assessing the determination of salivary electrolytes and anti-Ro and anti-La antibodies for the diagnosis of Sjögren’s syndrome (SS). Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2010; 15 (3): e437-440.
Egbert PR, Lauber S, Maurice DM. A simple conjunctival biopsy. Am J Ophthalmol. 1977; 84 (6): 798-801.
Sawada Y, Yuan C, Huang AJ. Impression cytology in the diagnosis of acanthamoeba keratitis with surface involvement. Am J Ophthalmol. 2004; 137 (2): 323-328.
Verges RC, Pita SD. Estudio de la población de células caliciformes en los síndromes de ojo seco mediante un método citológico atraumático. Arch Soc Esp Oftalmol. 1988; 55 (5): 525-530.
Mehrotra R, Gupta A, Singh M, Ibrahim R. Application of cytology and molecular biology in diagnosing premalignant or malignant oral lesions molecular. Mol Cancer. 2006; 5: 11.
Maksem JA, Weldmann J. Specialized Preparative devices are not needed for liquid-based thin-layer cytology: an alternate manual method using a metastable alcoholic gel. Diagn Cytopathol. 2001; 25 (4): 262-264.
Kavatkar AN, Nagwanshi CA, Dabak SM. Study of a manual method of liquid-based cervical cytology. Indian J Pathol Microbiol. 2008; 51 (2): 190-194.
Singh R, Joseph A, Umapathy T, Tint NL, Dua HS. Impression cytology of the ocular surface. Br J Ophthalmol. 2005; 89 (12): 1655-1659.
Rodríguez MF, Juyo A, Rojas A. Descripción de la metaplasia escamosa por citología de impresión en pacientes con ojo seco. Ciencia y Tecnología para la Salud Visual y Ocular No 8: 51-62/ Enero-Junio de 2007.
Tseng SC. Staging of conjunctival squamous metaplasia by impression cytology. Ophthalmology. 1985; 92 (6): 728-733.
Nelson JD, Wright JC. Conjunctival goblet cell densities in ocular surface disease. Arch Ophthalmol. 1984; 102 (7): 1049-1051.