2017, Número 1
<< Anterior Siguiente >>
Rev Cubana Plant Med 2017; 22 (1)
Modulación in vitro de la actividad antibiótica por el aceite esencial de frutos de Piper tuberculatum Jacq
dos Santos SV, do Nascimento EP, Brito MÁ, Nogueira CMH, de Araújo DG, Carneiro STR, Relison TS, Sobreira FR, Nóbrega FD, de Souza RCK, Martins CJG, Melo CHD, Bezerra FCF, Alencar MIR, Kerntopf MR
Idioma: Portugués
Referencias bibliográficas: 37
Paginas: 1-10
Archivo PDF: 112.87 Kb.
RESUMEN
Introducción: Piper tuberculatum Jacq. popularmente conocida como "pimentalonga"
o "pimenta-d'Arda", se utiliza empíricamente en el tratamiento de
enfermedades respiratorias (asma, bronquitis y tos) y digestivas (dolor abdominal y
diarrea). En la literatura es describe con importantes actividades antiinflamatorias,
antimicrobianas, antileucémicas y antihelmínticas.
Objetivo: evaluar la actividad moduladora de los aceites esenciales de frutos de P.
tuberculatum (AEPT) en asociación con diferentes antibióticos contra
Staphylococcus aureus, Escherichia coli y Pseudomona aeruginosa.
Metodología: los frutos (frescos) de P. tuberculatum fueron recolectados en
Barbalha/CE y sometidos a hidrodestilación en un equipo Clevenger, para extraer el
aceite essencial (AEPT), el cual, una vez extraído, fue tratado con sulfato de sodio
anhidro para eliminar la humedad residual. Se evaluó su actividad antibacteriana
contra las cepas de S. aureus (SA358), E. coli (EC27) y P. aeruginosas (PA03).
Empleando el método de microdilución se determinó la concentración inhibitoria
mínima (CIM), con tres réplicas por cada tratamiento. Un valor de CIM ≤ 256
μg/mL se considera clínicamente relevante.
Resultados: la actividad antibacteriana del AEPT exhibió una CIM ≥ 1024 μg/mL
contra las cepas estándar de bacterias resistentes a múltiples fármacos. En efecto,
la actividad AEPT antagoniza el efecto de amikacina contra E. coli y S. aureus, pero
tenía un efecto sinérgico contra P. aeruginosa. Combinado con la getamicina el
aceite exhibió antagonismo contra E. coli, sin embargo, no presentó resultado
relevante ante S. aureus y P. aeruginosa. La asociación de AEPT con el antibiótico
imipenem resultó el efecto más relevante, mostrando sinergismo frente a todas las
bacterias evaluadas. Por el contrario, en asociación con ciprofloxacina no mostró
ningún efecto significativo con respecto al control.
Conclusión: el AEPT presentó una mejor actividad cuando se asoció a imipenem,
frente todas las bacterias evaluadas, demostrando ser una posible alternativa en el
desarrollo de nuevos fármacos con actividad antimicrobiana, a partir de productos
herbarios.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Negreiros, M.D.O. Avaliação da atividade antimicrobiana e antibiofilme de óleos essenciais de Heterothalamussp. Sobre Enterococcus faecalis. 100f. (Dissertação) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, Brasil. 2014
Nostro A, Blanco A.R, Cannatelli M.A, Enea V, Flami-NI G. Susceptibility of methicillin-resistant staphy- Susceptibility of methicillin-resistant staphy-lococci to oregano essential oil, carvacrol and thymol. FEMS Microbiology Letters. 2004;230:191-5.
Coutinho, H.D.M., Costa, J.G.M., Falcão-Silva, V.S., Siqueira-Júnior, J.P., Lima, E.O. Effect of Momordicacharantia L. in the resistance to aminoglycosides in methicilin-resistant Staphylococcus aureus. Comparative immunology, microbiology and infectious diseases. 2010;33:467-71.
Verhoeff, J., Beaujean, D., Vlok, H., Baars, A., Meyler, A., Werkwn, V.D.C. Adutch approach to methicillin-resistance Staphylococcus aureus. European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Disease. 1999;18:461-6.
Hughes C, Muller D, Hacher J, Goebel W. Genetics and pathogenic role ofEscherichia coli haemolysin. Toxicon. 1982;20:247-52.
Koneman, E., Koneman, E. A função do laboratório de microbiologia no diagnóstico de doenças infecciosas: indicações para prática e manejo. In:Koneman, E.W. et al. Diagnóstico microbiológico texto e atlas colorido. Medsi, São Paulo, Brasil. 2001.p. 69-176.
Ferreira, H., Lala, E.R.P. Pseudomonasaeruginosa: um alerta aos profissionais de saúde. Revista Panamericana de Infectologia. 2010;12:44-50.
Cronquist, A. An Integrated System of Classification of Flowering Plants.New York Colombia University Press. 1981.p. 262.
Joly, A.B. Botânica: Introdução à Taxonomia Vegetal. São Paulo, Ed. Nacional, ed., p. 777, 1991. 10ª.
Dyer, L.A., Palmer, A.D. Piper: a model genus for studies of phytochemistry, ecology, and evolution. Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York, USA. 2004.
Guimarães, E.F., Giordiano, L.C.S. Piperaceae do Nordeste Brasileiro I: Estado de Ceará. Rodriguesia. 2004;55:21-5.
Facundo V.A., Pollli A.R., Rodrigues R.V., Militão J.S.T., Stabelli R.G., Cardoso C.T. Fixed and volatile chemical constituents from stems and fruits of Piper tuberculatumJacq.and from roots of P. hispidumHBK. Acta Amazonica. 2008;38:743-8.
Leal, L.F. Estudo Químico e Avaliação da Atividade Farmacológica e Microbiológica de Piper mikanianum (Kunth) Steudel. 158f. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal de Santa Catarina, Florianópolis, Brasil. 2000.
Simbanda, T., Okoh, A.L. The challernges of overcomongantibiótic resistance: Plant extracts as potential sources of antmicrobial and resistance modifying agents. Afr J Biotechnol6. 2007;2886-96.
Silva, N.C.C., Fernandes-Júnior, A. Biologicalpropertiesof medicinal plants: a review of their antimicrobialactivity. Journal of venomous animal sandtoxins including tropical diseases. 2010;16:402-13.
Ahmed Z., Khan S.S., Khan M., Tanveer A., Lone Z.A. Synergistic effect of Salvadora persica extracts, tetracycline and penicillin against Staphylococcus aureus. Afr J Basic Appl Sci. 2009;2:25-9.
Ćirković I., Jovalekić M.,Jegorović B. In vitro antibacterial activity of garlic and synergism between garlic and antibacterial drugs. Archives of Biological Sciences. 2012;64:1369-75.
Ushimaru P.I., Barbosa L.N., Fernandes A.A.H., Di-Stasi L.C., Júnior, A.F. In vitro antibacterial activity of medicinal plant extracts against Escherichia coli strains from human clinical specimens and interactions with antimicrobial drugs. Natural product research. 2012;26:1553-7.
Santos T.G., Rebelo R.A., Dalmarco E.M., Guedes A., De-Gasper A.L., Cruz A.B., et al. Composição Química e avaliação da atividade antimicrobiana do óleo essencial das folhas de Piper malacophyllum (C. PRESL.) C. DC. Quim. Nova. 2012;35: 477-81.
Orjola J, Endelmeir C.A.J, Wright A.D, Rali T, Sticher O. Five new prenylated phydroxybenzoic acid derivatives antimicrobial ad mollucicidal activity from Piper aduncum leaves. Dep. Pham. Swiss Fed. Inst. Technol, Zurich, Switz. Plant Med. 1993;59:546-51.
Orjola J, Wright A.D, Behrends H, Folkers G., Sticher O. Cytotoxic and antimicrobial sihydrochacones from Piper aduncum. J. Nat. Prod. 1994;57:18-26.
Alves R.D.S. Avaliação da atividade antimicrobiana entre óleos essenciais obtidos de folhas de manjericão, pimenta de macaco e tomilho sobre patógenos veiculados por alimentos. 72f. (Dissertação) - Universidade Federal de Lavras, Lavras, Brasil. 2014.
Brazão M.A.B. Atividade antimicrobiana do óleo esssencial de Piper aduncum L. E seu componente, dilapiol, fernte a Staphylococcus spp. multirresistentes. 84f. (Dissertação) - Universidade Federal do Pará, Belém, Brasil. 2012.
Figueira, G.M., Duarte, M.C.T., Silva, C.A.L., Delarmelina, C. Atividade antimicrobiana do extrato e do óleo essencial de Piperspp cultivadas na coleção de germoplasmas do CPQBA-Unicamp. Rev Bras Farm. 2011;14:51-3.
Duarte M.C.T, Figueir G.M, Pereira B, Magalhães P. M, Delarmelina, C. Atividade antimicrobina de extratos hidroalcoólicos de espécies da coleção de plantas medicinais CPQBA/UNICAMP. Rev Bras Farmacogn. 2004;14:6-8.
Tintino S.R, Souza C.E, Guedes G.M, Costa I.V.J, Duarte F.M, Chaves M.C.O, et al. Modulatory antimicrobial activity of Piper arboreum extracts. Acta Botanica Croatica. 2014;73:303-11.
Fernandes T.J.S. Atividade antimicrobiana e determinação da CIM de extratos e fases particionadas de produtos vegetais. 56f. (Dissertação) - Universidade Estadual da Paraíba, Campina Gande, Brasil; 2014
Duarte M.C.T. Atividade antimicrobiana de plantas medicinais e aromáticas utilizadas no Brasil. MultCiência. UNICAMP -Campinas, 2006. p. 16.
Kim J, Marshall M.R, Wei C. Antibacterial activity of some essential oil components against five foodborne pathogens. Journal of Agricultural and food chemistry. 1995;43:2839-45.
Leite AM, Lima EO, Souza EL, Diniz MFFM, Trajano VN, Medeiros IA. Inhibitory effect of beta-pinene, alphapinene and eugenol on the growth of potential infectious endocarditis causing Gram-positive bacteria. Rev Bras Ciên Farm. 2007;43(1):121-6.
Burt, S. A., Reindes, S.D. Antmicrobial activity of selected plant essential oils against Escheriche coli 0157: H7. Letters in Applied Microbiogy. 2003;36:162-7.
Fisher K., Phillips C.A. The effect of lemon, orange and bergamot essential oils and their components on the survival of Campylobacter jejuni, Escherichia coli O157, Listeria monocytogenes, Bacillus cereus and Staphylococcus aureus in vitro and in food systems. Journal of Applied Microbiology. 2006;101:1232-40.
Cândido C.S, Portella C.S.A, Laranjeira B.J, Silva S.S.D, Arriaga A, Santiago G.M, et al. Effects of Myrciaovata Cambess. essential oil on planktonic growth of gastrointestinal microorganisms and biofilm formation of Enterococcus faecalis. Brazilian Journal of Microbiology. 2010;41:621-7.
Jadhav S, Shah R, Bhave M, Palombo E.A. Inhibitory activity of yarrow essential oil on Listeria planktonic cells and biofilms. Food Control. 2013;29:125-30.
Torssel B.G. A mechanistic and biosynthetic approach to secondary metabolism. Natural product chemistry; 1989.
Ferronato R. Análise química e antimicrobiana do óleo essencial de Heliettaapiculata Benth. (Rutaceae). 83f (Dissertação); 2010.
Ngassapa, O, Runyoro D.K, Harvala E, Chinou I.B. Composition and antimicrobial activity of essential oils of two populations of Tanzanian Lippiajavanica (Burm. f.) Spreng. (Verbenaceae). Flavour and fragrance journal. 2003;18:221-4.