2017, Número 2
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TIP Rev Esp Cienc Quim Biol 2017; 20 (2)
Nuevo acercamiento a la interacción del reactivo de Folin-Ciocalteu con azúcares durante la cuantificación de polifenoles totales
Muñoz-Bernal ÓA, Torres-Aguirre GA, Núñez-Gastélum JA, de la Rosa LA, Rodrigo-García J, Ayala-Zavala JF, Álvarez-Parrilla E
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 18
Paginas: 23-28
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RESUMEN
La mezcla de ácidos fosfomolíbdico y fosfotúngstico es el reactivo esencial de uno de los principales métodos
para la cuantificación de compuestos polifenólicos en extractos vegetales conocido como método de reactivo
de Folin-Ciocalteu (FC). Sin embargo, al igual que otros métodos espectrofotométricos puede ser inespecífico
e interaccionar con otras moléculas como azúcares, presentes en los extractos vegetales, que pueden alterar
los resultados encontrados. El objetivo del presente trabajo fue determinar el efecto de la glucosa, sacarosa,
fructosa, xilosa, manosa, ramnosa y arabinosa sobre la cuantificación de compuestos polifenólicos mediante el
método de FC. La fructosa y la xilosa fueron los azúcares con la mayor reactividad, mientras que la sacarosa,
ramnosa, manosa y glucosa presentaron el menor efecto. La fructosa y la manosa tanto en las muestras de ácido
gálico como en extractos de anís y chile jalapeño así como de especias tradicionales de la cocina mexicana
(hoja santa y hoja de aguacate), reaccionaron diferente, ya que la fructosa incrementó la respuesta del método
y consecuentemente sobreestimó el contenido de los compuestos polifenólicos y la manosa los subestimó. Los
resultados obtenidos muestran que el contenido de azúcar en extractos puede interferir en la estimación de los
compuestos polifenólicos, sobre todo si la concentración es muy alta o la fructosa está presente.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Bae, H., Jayaprakasha, G. K.,Crosby, K., Yoo, K. S., Leskovar, D. I., Jifon, J. & Patil, B. S. (2014). Ascorbic acid, capsaicinoid, and flavonoid aglycone concentrations as a function of fruit maturity stage in greenhouse-grown peppers. Journal of Food Composition and Analysis 33, 195-202. DOI 10.1016/j.jfca.2013.11.009.
Chen, L. Y., Cheng, C. W. & Liang, J. Y. (2015). Effect of esterification condensation on the Folin-Ciocalteu method for the quantitative measurement of total phenols. Food Chem. 170, 10-50. DOI.10.1016/j.foodchem.2014.08.038.
Deepa, N., Kaur, C., George, B., Singh, B. & Kapoor, H. C. (2007). Antioxidant constituents in some sweet pepper (Capsicum annuum L.) genotypes during maturity. LWT - Food Science and Technology 40, 121-129. DOI 10.1016/j.lwt.2005.09.016.
Everette, J. D., Bryant, Q. M., Green, A. M., Abbey, Y. A., Wangila, G. W. & Walker, R. B. (2010). Thorough study of reactivity of various compound classes toward the Folin-Ciocalteu reagent. J. Agric. Food Chem. 58, 8139-8144. DOI 10.1021/jf1005935.
Georgé, S., Brat, P., Alter, P. & Amiot, M. (2005). Rapid Determination of Polyphenols and Vitamin C in Plant- Derived Products. J. Agric. Food Chem. 53, 1370-1373.
Granato, D., Santos, J. S., Maciel, L. G. & Nunes, D. S. (2016). Chemical perspective and criticism on selected analytical methods used to estimate the total content of phenolic compounds in food matrices. TrAC Trends in Analytical Chemistry , 80, 266-279. DOI 10.1016/j.trac.2016.03.010.
Huang, D., Ou, B. & Prior, R. (2005). The Chemistry behind Antioxidant Capacity Assays. J. Agric. Food Chem. 53, 1841-1856. DOI: 10.1021/jf030723c
Lester, G. E., Lewers, K. S., Medina, M. B. & Saftner, R. A. (2012). Comparative analysis of strawberry total phenolics via Fast Blue BB vs. Folin–Ciocalteu: Assay interference by ascorbic acid. Journal of Food Composition and Analysis 27, 102-107. DOI 10.1016/j.jfca.2012.05.003.
Ludwig, I. A., Bravo, J., De Peña, M. P. & Cid, C. (2013). Effect of sugar addition (torrefacto) during roasting process on antioxidant capacity and phenolics of coffee. LWT - Food Science and Technology 51 , 553-559. DOI 10.1016/j.lwt.2012.12.010.
Magalhaes, L. M., Santos, F., Segundo, M. A., Reis, S. & Lima, J. L. (2010) Rapid microplate high-throughput methodology for assessment of Folin-Ciocalteu reducing capacity. Talanta 83, 441-447. DOI 10.1016/j.talanta.2010.09.042.
Margraf, T., Karnopp, A. R., Rosso, N. D. & Granato, D. (2015) Comparison between Folin-Ciocalteu and Prussian Blue Assays to Estimate The Total Phenolic Content of Juices and Teas Using 96-Well Microplates. J. Food Sci. 80, C2397-403. DOI 10.1111/1750-3841.13077.
Moreno-Escamilla, J. O., De La Rosa, L. A., López-Díaz, J. A., Rodrigo-García, J., Núñez-Gastélum, J. A. & Álvarez-Parrilla, E. (2015). Effect of the smoking process and firewood type in the phytochemical content and antioxidant capacity of red Jalapeño pepper during its transformation to chipotle pepper. Food Research International 76, 654-660. DOI 10.1016/j. foodres.2015.07.031.
O’Sullivan, J. & Mathison, G. E. (1970). Interference by monosaccharides with the estimation of tyrosine and proteins using the Folin-Ciocalteu phenol reagent. Analytical Biochemistry 35, 540-542. DOI 10.1016/0003-2697(70)90221-6
Sánchez-Rangel, J. C., Benavides, J., Heredia, J. B., Cisneros-Zevallos, L. & Jacobo-Velázquez, D. A. (2013). The Folin-Ciocalteu assay revisited: improvement of its specificity for total phenolic content determination. Analytical Methods 5, 5990-5999. DOI 10.1039/ C3AY41125G.
Shanmugavelan, P., Kim, S. Y., Kim, J. B., Kim, H. W., Cho, S. M., Kim, S. N., Kim, S. Y., Cho, Y. S. & Kim, H. R. (2013). Evaluation of sugar content and composition in commonly consumed Korean vegetables, fruits, cereals, seed plants, and leaves by HPLC-ELSD. Carbohydr Res. 380, 112-117. DOI 10.1016/j.carres.2013.06.024.
Singleton, V. & Rossi, J. A. (1965). Colorimetry of Total Phenolics With Phosphomolybdic-Phosphotungstic Acid Reagents. Am. J. Enol. Vitic. 16, 144-158.
Singleton, V., Orthofer, R. & Lamuela-Raventós, R. (1999). Analysis of Total Phenols and Other Oxidation substrates and Antioxidants by Means of Folin-Ciocalteu Reagent. Methods in Enzymology 299, 152-179.
Slinkard, K. & Singleton, V. (1977). Total Phenol Analysis: Automation and Comparison with Manual Methods. Am. J. Enol. Vitic. 28, 49-56.