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ISSN 1561-2988 (Impreso)

2016, Número 1

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Rev Cubana Farm 2016; 50 (1)


Evaluación de la citotoxicidad de extractos marinos sobre un panel de líneas celulares

Rodríguez-Sánchez H, Díaz-García A, Frión-Herrera Y, Monzote FL

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 127-138
Archivo PDF: 287.26 Kb.


RESUMEN

Introducción: los extractos naturales provenientes de fuentes marinas representan una importante fuente en el descubrimiento de nuevos compuestos con potencialidades como anticarcinogénicos.
Objetivos: determinar el efecto de cinco extractos provenientes de diferentes organismos marinos sobre la viabilidad de un panel de cinco líneas celulares (A549, HEp-2, MDA-MB-231, SiHa y MRC-5).
Metodos: el efecto de los extractos (Physalia physali, Cassiopea xamachana, Tripneustes ventricosus, Echinometra lucunter) se determinó mediante el ensayo colorimétrico con el empleo de bromuro de 3(4,5 dimetil-2-tiazoil)-2,5- difeniltetrazolio. Mediante de RT-PCR se determinó adicionalmente el efecto del extracto de Echinometra lucunter sobre la expresión de los genes apoptóticos p53, survivin, bcl-xL y noxa en SiHa.
Resultados: todos los extractos afectaron la viabilidad celular de la línea normal MRC-5 de pulmón humano. Sin embargo, no disminuyeron la viabilidad de las líneas celulares de origen tumoral con excepción del extracto de Echinometra lucunter. Este extracto solo afectó la viabilidad de la línea celular tumoral SiHa. Los valores de las concentraciones inhibitorias medias (CI50) mostraron que solo para el extracto de Echinometra lucunter, la línea celular tumoral SiHa evidenció una CI50 de 52,07 ± 11 µg/mL que es significativamente inferior a MRC-5 con una CI50 de 98,6 ± 14 µg/mL, por lo que se muestra selectividad frente a las células tumorales. Adicionalmente, el extracto disminuyó significativamente la expresión de los genes proapoptóticos lo que sugiere la muerte celular por necrosis en las células SiHa.
Conclusiones: el extracto proveniente de Echinometra lucunter resultó selectivo frente a las células tumorales SiHa. Experimentos que incluyan otras líneas celulares de cáncer cérvicouterino podrían confirmar el potencial de este extracto frente a esta variedad histológica de cáncer.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. León CJ, Gómez SM, Morantes SJ, Cordero CP, Ancízar F. Caracterización del perfil de sensibilidad de un panel de líneas celulares para valoración de citotoxicidad in vitro. Biomédica. 2006; 26:161-8.

  2. Faulkner D. Marine natural products. Nat Prod. 2002;19:1-48.

  3. Valdés-Iglesias O, Pérez-Gil R, Colom Y. Actividad antitumoral de los organismos marinos. Cub@: Medio Ambiente y Desarrollo; Revista electrónica de la Agencia de Medio Ambiente. 2010. 19. Disponible en: http://ama.redciencia.cu/articulos/19.04.pdf

  4. 4- Lee JC, Hou MF, Huang HW, Chang FR, Yeh CC, Tang JY, et al. Marine algal natural products with anti-oxidative, anti-inflammatory, and anti-cancer properties. Cancer Cell Int. 2013;13(1):55.

  5. Murugan K, Iyer VV. Differential growth inhibition of cancer cell lines and antioxidant activity of extracts of red, brown, and green marine algae. In Vitro Cell DevBiol Anim. 2013; 49(5):324-334.

  6. Ebrahimi Nigjeh S, Yusoff FM, Mohamed Alitheen NB, Rasoli M, Keong YS, Omar AR. Cytotoxic effect of ethanol extract of microalga, Chaetoceroscalcitrans, and its mechanisms in inducing apoptosis in human breast cancer cell line. Biomed Res Int. 2013; doi: 10.1155/2013/783690.

  7. Concetta I, Anna A, Filomena D' A, Maria S, Marialuisa M. Alkaloids from Marine Invertebrates as Important Leads for Anticancer Drugs Discovery and Development. Molecules 2014;19: 20391-20423; doi:10.3390/molecules191220391.

  8. Wamtinga RS, Rainatou B, Claudia C, Marie HT, Mario D, Marc D. A Survey of Marine Natural Compounds and Their Derivatives with Anti-Cancer Activity Reported in 2012. Molecules. 2015; 20, 7097-7142; doi:10.3390/molecules20047097.

  9. William HG, Bradley SM. Lessons from the Past and Charting the Future of Marine Natural Products Drug Discovery and Chemical Biology. j.chembiol. 2011;12:0-14.

  10. Díaz-García A, Morier-Díaz L, Frión-Herrera Y, Rodríguez-Sánchez H, Caballero- Lorenzo Y, Mendoza-Llanes D et al. 2013. In vitro anticancer effect of venom from Cuban scorpion Rhopalurus junceus against a panel of human cancer cell lines. J. Venom Res. 2013;4:5-12.

  11. Radwan FF, Román LG, Baksi K, Burnett JW. Toxicity and mAChRs binding activity of Cassiopea xamachana venom from Puerto Rican coasts. Toxicon. 2005;45(1):107-112.

  12. 12- Sciani JM, Zychar BC, Gonçalves LR, Nogueira Tde O, Giorgi R, Pimenta DC. 2011. Pro-inflammatory effects of the aqueous extract of Echinometra lucunter sea urchin spines. Exp Biol Med 236(3):277-280.

  13. Vidal HJ. Observation of initial clinical manifestations and repercussions from the treatment of 314 human injuries caused by black sea urchins (Echinometra lucunter) on the southeastern Brazilian coast. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 2012;45 (3):390-92.

  14. Roa JC, Garcia P, Gomez J, Fernández W, Gaete F, Espinoza A, et al. HPV genotyping from invasive cervical cancer in Chile. Int J Gynaecol Obstet. 200;105:150-153.

  15. Huh K, Zhou X, Hayakawa H, Cho JY, Libermann TA, Jin J, et al. Human papillomavirus type 16 E7 oncoprotein associates with the cullin 2 ubiquitin ligase complex, which contributes to degradation of the retinoblastoma tumor suppressor. J Virol. 2007;81: 9737-9747.

  16. Maria F, Valery F, Vonetta M., Kangling Z, Anatolii K, Svetlana B, et al. Cellular Levels of Oxidative Stress Affect the Response of Cervical Cancer Cells to Chemotherapeutic Agents. BioMed Research International, 2014. Article ID 574659, Disponible en: http://dx.doi.org/10.1155/2014/574659

  17. Choudhari AS, Suryavanshi SA, Kaul-Ghanekar R. The Aqueous Extract of Ficus religiosa Induces Cell Cycle Arrest in Human Cervical Cancer Cell Lines SiHa (HPV- 16 Positive) and Apoptosis in HeLa (HPV-18 Positive). PLoS One. 2013; 8(7): doi:10.1371/journal.pone.0070127.

  18. Hernandez-Flores G, Ortiz-Lazareno PC, Lerma-Diaz JM, Dominguez-Rodriguez JR, Jave-Suarez LF, Aguilar-Lemarroy Adel C, et at. Pentoxifylline sensitizes human cervical tumor cells to cisplatin-induced apoptosis by suppressing NF-kappa B and decreased cell senescence. BMC Cancer. 2011;11:483. doi: 10.1186/1471-2407- 11-483.

  19. Lee YS, Bae SM, Kwak SY, Park DC, Kim YW, Hur SY, et al. Cell cycle regulatory protein expression profiles by adenovirus p53 infection in human papilloma virusassociated cervical cancer cells. Cancer Res Treat. 2006;38(3):168-177.

  20. Ju Z, Xiaomin L, Longyu J, Rongjia Z, Siqi L, Ningzhi X, et al. Necrosis, and then stress induced necrosis-like cell death, but not apoptosis, should be the preferred cell death mode for chemotherapy: clearance of a few misconceptions. Oncoscience, 2014;1(6):407-22.

  21. Karina O, Lourdes S, Judith S, Azael M, Concepción N-R, Daniel R, et al. Possible Antitumoral Effect of the Crude Venom of Cassiopea xamachana (Cnidaria: Scyphozoa) on Tumors of the Central Nervous System Induced by N-Ethyl-NNitrosourea (ENU) in Rats. Proc. West. Pharmacol. Soc. 2003;46:85-87.




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