2016, Número 3
<< Anterior Siguiente >>
Rev Cubana Invest Bioméd 2016; 35 (3)
Hidrocefalia e inflamación
Araya AP, Delgado-López F
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 38
Paginas: 240-250
Archivo PDF: 217.14 Kb.
RESUMEN
La hidrocefalia del tipo congénita se caracteriza por la obliteración del Acueducto de Silvio, y por una neurogénesis anormal. Diversas evidencias sugieren la presencia de una respuesta inflamatoria en ambos procesos. En el sistema nervioso central existen células con rol inmunitario, la microglia es una célula inmune propia del Sistema Nervioso Central que está constantemente vigilando el entorno (estado inactivo), y ante cualquier señal anormal se "activa". La microglia activa puede tener dos roles; microglia reparadora, es aquella que tiene efectos neuroprotectores debido a la secreción de moléculas anti-inflamatorias. Por otro lado, la microglia inflamatoria, la cual al activarse secreta factores pro-inflamatorios y con ello la migración de más células inmunes hasta aquel lugar. Si este proceso no es regulado, va generándose un micro-ambiente tóxico para las células del Sistema Nervioso Central, desestabiliza la Barrera hematoencefálica lo cual permite la llegada masiva de macrófagos y linfocitos, de origen periféricos, al cerebro. De este modo, la generación de este ambiente neurotóxico trae como consecuencias, graves daños en la anatomía y con ello en la fisiología del Sistema Nervioso Central. En esta revisión, se presentan diversos estudios que demuestran la existencia de factores inflamatorios en cerebro, tanto humanos como en modelos animales, que desarrollan hidrocefalia ya sea congénita o adquirida, y se analizan las consecuencias y una posible terapia que permita revertir los daños ocasionados por esta respuesta.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Del Bigio MR. Neuropathological changes caused by hydrocephalus. Acta Neuropathol (Berl). 1993;85(6):573-85.
Deren KE, Packer M, Forsyth J, Milash B, Abdullah OM, Hsu EW, et al. Reactive astrocytosis, microgliosis and inflammation in rats with neonatal hydrocephalus. Exp Neurol. 2010;226(1):110-9.
Lucas SM, Rothwell NJ, Gibson RM. The role of inflammation in CNS injury and disease. Br J Pharmacol. 2006;147(S1):S232-S40.
Ulfig N, Bohl J, Neudörfer F, Rezaie P. Brain macrophages and microglia in human fetal hydrocephalus. Brain Dev. 2004;26(5):307-15.
Domínguez Pinos MD, Páez P, Jiménez AJ, Weil B, Arráez MA, Rodríguez EM, et al. Ependymal denudation and alterations of the subventricular zone occur in human fetuses with a moderate communicating hydrocephalus. J Neuropathol Exp Neurol. 2005;64(7):595-604.
Wilson EH, Weninger W, Hunter CA. Trafficking of immune cells in the central nervous system. The Journal of clinical investigation. 2010;120(5):1368.
Ransohoff RM, Kivisäkk P, Kidd G. Three or more routes for leukocyte migration into the central nervous system. Nature Reviews Immunology. 2003;3(7):569-81.
Neumann H, Kotter M, Franklin R. Debris clearance by microglia: an essential link between degeneration and regeneration. Brain. 2009;132(2):288-95.
Cardona AE, Pioro EP, Sasse ME, Kostenko V, Cardona SM, Dijkstra IM, et al. Control of microglial neurotoxicity by the fractalkine receptor. Nat Neurosci. 2006;9(7):917-24.
Perry VH, Nicoll JA, Holmes C. Microglia in neurodegenerative disease. Nature Reviews Neurology. 2010;6(4):193-201.
Takahashi K, Rochford CD, Neumann H. Clearance of apoptotic neurons without inflammation by microglial triggering receptor expressed on myeloid cells-2. The Journal of experimental medicine. 2005;201(4):647-57.
Ravichandran KS. "Recruitment signals" from apoptotic cells: invitation to a quiet meal. Cell. 2003;113(7):817-20.
Engelhardt B, Sorokin L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Seminars in immunopathology. Springer; 2009.
Neumann H, Wekerle H. Neuronal control of the immune response in the central nervous system: linking brain immunity to neurodegeneration. J Neuropathol Exp Neurol. 1998;57(1):1-13.
Sival DA, Felderhoff-Müser U, Schmitz T, Hoving EW, Schaller C, Heep A, et al. Neonatal high pressure hydrocephalus is associated with elevation of pro-inflammatory cytokines IL-18 and IFN gamma in cerebrospinal fluid. Cerebrospinal Fluid Res. 2008;5:21.
Schmitz T, Heep A, Groenendaal F, Hüseman D, Kie S, Bartmann P, et al. Interleukin-1 beta, Interleukin-18, and Interferon gamma expression in the Cerebrospinal Fluid of Premature Infants with Posthemorrhagic Hydrocephalus_Markers of White Matter Damage? Pediatr Res. 2007;61(6):722-6.
Lu J, Kaur C, Ling E. An immunohistochemical study of the intraventricular macrophages in induced hydrocephalus in prenatal rats following a maternal injection of 6-aminonicotinamide. J Anat. 1996;188(Pt 2):491.
Khan OH, Enno TL, Del Bigio MR. Brain damage in neonatal rats following kaolin induction of hydrocephalus. Exp Neurol. 2006;200(2):311-20.
Shanku AG, Miller JM, McAllister JP. Progression and reversibility of gliosis due to hydrocephalus in the H-Tx rat. Cerebrospinal Fluid Research. 2005;2(Suppl 1):1.
Xu H, Zhang S, Tan G, Zhu H, Huang C, Zhang F, et al. Reactive gliosis and neuroinflammation in rats with communicating hydrocephalus. Neuroscience. 2012;218:317-25.
Perry VH, Newman TA, Cunningham C. The impact of systemic infection on the progression of neurodegenerative disease. Nature Reviews Neuroscience. 2003;4(2):103-12.
Kempermann G, Neumann H. Microglia: the enemy within? Science. 2003;302(5651):1689-90.
Jimenez A, Tome M, Paez P, Wagner C, Rodriguez S, Fernandez-Llebrez P, et al. A programmed ependymal denudation precedes congenital hydrocephalus in the hyh mutant mouse. J Neuropathol Exp Neurol. 2001;60(11):1105-19.
Rodríguez EM, Guerra MM, Vío K, González C, Ortloff A, Bátiz LF, et al. A cell junction pathology of neural stem cells leads to abnormal neurogenesis and hydrocephalus. Biol Res. 2012;45(3):231-41.
Del Bigio MR, Bruni JE, Vriend JP. Monoamine neurotransmitters and their metabolites in the mature rabbit brain following induction of hydrocephalus. Neurochem Res. 1998;23(11):1379-86.
Ortloff A. Órgano subcomisural y neuroepitelio ventricular: Patogenia de la hidrocefalia congénita en la rata mutante Htx [Tesis Doctoral]: Universidad Austral de Chile; 2008.
Bátiz F. Etiopatogenia de la Hidrocefalia Congénita, Rol de alfa-SNAP y las uniones adherentes dependientes de N-cadherina en el denudamiento del neuroepitelio/epéndimo [Tesis doctoral]: Universidad Austral de Chile; 2008.
Oliver C, González CA, Alvial G, Flores CA, Rodríguez EM, Bátiz LF, et al. Disruption of CDH2/N-Cadherin-Based Adherens Junctions Leads to Apoptosis of Ependymal Cells and Denudation of Brain Ventricular Walls. J Neuropathol Exp Neurol. 2013;72(9):846-60.
Fadok VA, Bratton DL, Frasch SC, Warner ML, Henson PM. The role of phosphatidylserine in recognition of apoptotic cells by phagocytes. Cell Death Differ. 1998;5(7):551-62.
Jones H, Bucknall R. Inherited prenatal hydrocephalus in the h-tx rat: a morphological study. Neuropathol Appl Neurobiol. 1988;14(4):263-74.
Miller JM, Kumar R, McAllister J, Krause GS. Gene expression analysis of the development of congenital hydrocephalus in the H-Tx rat. Brain Res. 2006;1075(1):36-47.
Kohn D, Chinookoswong N, Chou S. A new model of congenital hydrocephalus in the rat. Acta Neuropathol (Berl). 1981;54(3):211-8.
Lichtin N. Estudio del mecanismo de disrupción de la zona ventricular y el destino de las células troncales neurales denudadas en el telencéfalo de la rata H-Tx hidrocefálica [Tesis de grado]: Universidad Austral de Chile; 2012.
Russo I, Barlati S, Bosetti F. Effects of neuroinflammation on the regenerative capacity of brain stem cells. J Neurochem. 2011;116(6):947-56.
Carty M, Bowie AG. Evaluating the role of Toll-like receptors in diseases of the central nervous system. Biochem Pharmacol. 2011;81(7):825-37.
Gonzalez Perez O, Gutierrez Fernandez F, Lopez Virgen V, Collas Aguilar J, Quinones Hinojosa A, Garcia Verdugo JM, et al. Immunological regulation of neurogenic niches in the adult brain. Neuroscience; 2012. p. 226-81.
Gutierrez Murgas Y, Snowden JN. Ventricular shunt infections: Immunopathogenesis and clinical management. J Neuroimmunol. 2014;276(1):1-8.
Araya P. Caracterización de los componentes inmunes asociados al proceso hidrocefálico en rata HTx [Tesis Magister]: Universidad Austral de Chile; 2014.