2016, Número 2
<< Anterior
Biotecnol Apl 2016; 33 (2)
Sistemas de regeneración de Phaseolus vulgaris L. y su aplicación en la transformación genética vía Agrobacterium tumefaciens
Collado R, García L, Bermúdez I, Veitía N, Torres D, Romero C, Martirena A, Ocaña B, Rojas LE, Angenon G
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 17
Paginas: 2521-2523
Archivo PDF: 433.31 Kb.
RESUMEN
Se establecieron procedimientos para la regeneración y transformación genética de
Paseolus vulgaris L. El precultivo de los explantes en medio líquido con TDZ, no descrito para esta especie en la literatura científica consultada, fue un paso determinante para la inducción de yemas múltiples. La optimización de varios parámetros que intervienen en la transferencia de ADN en combinación con la organogénesis directa, permitió por vez primera regenerar plantas de
P. vulgaris a partir de tejido transformado con
Agrobacterium tumefaciens. Se logró la formación de embriones somáticos en cotiledones de semillas inmaduras de
P. vulgaris. Por vez primera para esta especie, se obtuvieron embriones somáticos que alcanzaron la etapa cotiledonal. Además, se estableció un protocolo para la regeneración
in vitro de
P. vulgaris vía organogénesis indirecta. El uso del nudo cotiledonal con uno o dos cotiledones como explante inicial para la regeneración de frijol común, fue un factor determinante para la formación eficiente de callos morfogenéticos. El protocolo establecido para la variedad CIAP7247F fue reproducido en cuatro variedades comerciales. Sobre la base de la regeneración vía organogénesis indirecta, se llevó a cabo la transformación mediada por
A. tumefaciens en frijol común. El uso de callos nodulares verdes, que no se habían utilizado antes como explante para la transformación de frijol, jugó un papel importante para obtener plantas transgénicas. Estos resultados permitieron disponer por vez primera de un protocolo de transformación genética vía
A. tumefaciens, el cual puede ser empleado para la obtención de variedades de frijol mejoradas. Este trabajo mereció el Premio Anual de la Academia de Ciencias de Cuba para el año 2015.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Veltcheva MR, Svetleva D. In vitro regeneration of Phaseolus vulgaris L. via organogenesis from petiole explants. J Central Eur Agr. 2005;6(1):53-8.
Rech EL, Vianna GR, Aragao FJ. Highefficiency transformation by biolistics of soybean, common bean and cotton transgenic plants. Nat Protoc. 2008;3(3):410-8.
Mukeshimana G, Ma Y, Walworth AE, Song G, Kelly JD. Factors influencing regeneration and Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of common bean (Phaseolus vulgaris L.). Plant Biotech Rep. 2013;7(1):59-70.
Angenon G, Thu TT. Genetic Transformation. In: Pratap A, Kumar J, editors. Biology and breeding of food legumes. Kanpur: CABI, Indian Institute of Pulses Research; 2011. p. 178-90.
Collado R, García LR, Angenon G, Torres D, Romero C, Bermúdez I, et al. Formación de embriones somáticos a partir de cotiledones inmaduros en Phaseolus vulgaris cv. CIAP7247F. Biotecnol Veg. 2011;11(4):235-40.
Delgado-Salinas A, Bibler R, Lavin M. Phylogeny of the genus Phaseolus (Leguminosae): a recent diversification in an ancient landscape. Syst Bot. 2006;31(4):779-91.
Arellano J, Fuentes SI, Castillo-Espana P, Hernández G. Regeneration of different cultivars of common bean (Phaseolus vulgaris L.) via indirect organogenesis. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2009;96(1):11-8.
Gatica AM, Muñoz J, Ramírez P, Valdez M. In vitro plant regeneration system for common bean (Phaseolus vulgaris): effect of N6-benzylaminopurine and adenine sulphate. Electron J Biotechnol. 2010;13(1):6-7.
Kwapata K, Sabzikar R, Sticklen MB, Kelly JD. In vitro regeneration and morphogenesis studies in common bean. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2010;100(1):97-105.
Quintero-Jiménez A, Espinosa-Huerta E, Acosta-Gallegos J, Guzmán-Maldonado H, Mora-Avilés M. Enhanced shoot organogenesis and regeneration in the common bean (Phaseolus vulgaris L.). Plant Cell Tiss Organ Cult. 2010;102(3):381-6.
Collado R, Bermúdez-Caraballoso I, García LR, Veitía N, Torres D, Romero C, et al. Epicotyl sections as target for plant regeneration and transient transformation of common bean using Agrobacterium tumefaciens. In Vitro Cell Dev Biol-Plant. 2016;52(5):500-1.
Amugune N, Anyango B, Mukiama T. Agrobacterium-mediated transformation of common bean. Afr Crop Sci J. 2011;19(3):137-47.
Zambre M, Goossens A, Cardona C, Van Montagu M, Terryn N, Angenon G. A reproducible genetic transformation system for cultivated Phaseolus acutifolius (tepary bean) and its use to assess the role of arcelins in resistance to the Mexican bean weevil. Theor Appl Genet. 2005;110(5):914-24.
Collado R, Veitía N, Bermúdez-Caraballoso I, García L, Torres D, Romero C, et al. Efficient in vitro plant regeneration via indirect organogenesis for different common bean cultivars. Sci Hortic. 2013;153: 109-16.
Mohamed MF, Coyne DP, Read PE. Shoot organogenesis in callus induced from pedicel explants of common bean (Phaseolus vulgaris L.). J Am Soc Hortic Sci. 1993;118:158-62.
Zambre M, De Clercq J, Vranova E, Van Montagu M, Angenon G, Dillen W. Plant regeneration from embryo-derived callus in Phaseolus vulgaris L.(common bean) and P. acutifolius A. Gray (tepary bean). Plant Cell Rep. 1998;17(8):626-30.
Collado R, Veitía N, Bermúdez-Caraballoso I, García L, Torres D, Romero C, Lorenzo J, Angenon G. Agrobacterium-mediated transformation of Phaseolus vulgaris L. using indirect organogenesis. Sci Hortic. 2015;195:89-100.