Cobos PMA, Gutiérrez OC, Hernández SD, González MSS, Mendoza MGD

Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 109-120
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RESUMEN

Se aislaron dos bacterias anaerobias de la masa bacteriana que componen los cecótrofos o heces blandas. De acuerdo con su morfología, tinción de Gram y el sistema de identificación RapID ANA II System, se identificaron como Clostridium sordellii y Peptostreptococcus tetradius. En ambas bacterias se determinó la tasa de generación, sensibilidad a antibióticos, contenido de PC, EE y perfil de aminoácidos. También se evaluó un sistema anaerobio cerrado para producir inóculos con estas bacterias, y la estabilidad de los inóculos en cuanto a concentración y viabilidad bacteriana en alimento comercial para conejos después de 5 y 60 d de inoculado. Tanto C. sordellii como P. tetradius tienen una tasa de generación acelerada (18.15 y 21.6 min) y un contenido elevado de PC (47.6 y 63.27%). El perfil de aminoácidos indica que la metionina es el primer aminoácido limitante. Las bacterias resultaron susceptibles a dosis menores de 4 µg mL-1 de varios antibióticos como ampicilina, metronidazol y tetraciclina. La producción de los inóculos resultó eficiente, con una concentración de 7.5 × 10¹¹ y 1.5 × 10¹² UFC g-1 de masa bacteriana liofilizada (C. sordellii y P. tetradius, respectivamente). Los inóculos mantuvieron su concentración y viabilidad hasta el día 60 después de ser inoculados en el alimento. Se concluye que es posible aislar, producir e inocular alimento con bacterias productoras de cecótrofos. Se discute la posibilidad de evaluar dichos inóculos en la alimentación de conejos, con la finalidad de reforzar las ventajas de la cecotrofia.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Straw TE. Bacteria of the rabbit gut and their role in the health of the rabbit. J Appl Rabbit Res 1988; 2(3): 142-150.

2. Cheeke PR. Rabbit feeding and nutrition. Orlando: Academic Press Inc., 1987.

3. Uden P, Van Soest PJ. Comparative digestion of timothy (Phleum pratense) fibre by ruminants, equines and rabbits. Br J Nutr 1982; 47:267-262.

4. Cheeke PR. Rabbit nutrition and feeding: recent advances and future perspectives. J Appl Rabbit Res 1982; 7(1): 31-37.

5. Cheeke PR, Grobner MA, Patton NM. Fiber digestion and utilization in rabbits. J Appl Rabbit Res 1986; 9(5): 25-30.

6. Hernández-Sanchez D, Cobos-Peralta MA. Digestibi-lidad in vitro, población de bacterias celulolíticas y totales del apéndice cecal, ciego y colon del conejo. Tec Pecu Mex 2001; 39 (3):229-236.

7. Lebas F, Coudert P, de Rochanbeau H, Thébault RG. The Rabbit; Husbandry, Health and Production. Rome: FAO, Animal Production and Health series, 1997.

8. Bellier TR, Guidene T, Vernay M, Colin M. In vivo study of circadian variations of the cecal fermentation pattern in posweaned and adult rabbits. J Anim Sci 1995; 73:128-135.

9. Crociani F, Biavati B, Castagnoli P, Matteuzzi D. Anaerobic ureolytic bacteria from caecal content and soft faeces of rabbit. J Appl Bacteriol 1984; 57:83-88.

10. Hungate RE. A roll tube method for cultivation strict anaerobes, In: Norris JR, Ribbons DW, editors. Methods in Microbiology. New York: Academic Press Inc., 1969:117-132.

11. Bryant MP. Commentary of Hungate technique for culture of anaerobic bacteria. Am J Clin Nutr 1972; 25:1324-1328.

12. Cobos PM, Yokoyama MT. Clostridium paraputrificum var. ruminantium: colonization and degradation of shrimp carapaces in vitro observed by scanning electron microscopy. Proceedings of the Rumen Ecology Research Planning Workshop; 1995 March 13-18; Addis Ababa, Ethiopia: International Livestock Research Institute, 1995:151-162.

13. Harrigan WF, McCance ME. Métodos de laboratorio en microbiología de alimentos y productos lácteos. León España: Ed. Academia, 1979, 361-366.

14. Cobos PM, Flegler ST, Yokoyama MT. Isolation and characterization of a ruminal Clostridium sp. which degrade purified chitin and shellfish waste. 22nd. Biennial Conference on Rumen Function; 1993 agosto 17-21; Chicago (Ill) Chicago: American Society for Microbiology. 1993:22:28.

15. Madigan MT, Martinko JM, Parker J. Brock Biología de los Microorganismos. 8a ed. Madrid, España: Prentice Hall,1999: 985-987.

16. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis. 13th ed. Washington, D.C. AOAC 1984:1018.

17. Lindroth P, Mopper K. High performance liquid chromatographic determination of subpicomole amounts of amino acids by precolumn fluorescence derivation with o-phthalaldehyde. Anal Chem 1979; 51:1667-1674.

18. Jones BN, Paabo S, Stein S. Amino acid analysis and enzymatic sequence determination of peptides by an improved o phthalaldehyde precolumn labeling procedure. J Liquid Cromat 1981; 4: 565 586.

19. De Blas JC. Alimentación del Conejo: Coprofagia. Madrid: Mundi Prensa. 1989:15 27.

20. Forshyte SJ, Parker DS. Nitrogen metabolism by the microbial flora of the rabbit caecum. J Appl Bacteriol 1985; 58:363-369.

21. Fraga MJ, Perez de Ayala P, Carbaño R, de Blas JC. Effect of type of fiber on the rate of passage and on the contribution of soft feces to nutrient intake of finishing rabbits. J Anim Sci 1991; 69:1566-1574.

22. Gidenne T. Nutritional and ontogenic factors effecting rabbit caeco colic digestive physiology. 6th World Rabbit Congress; Toulouse, France 1996 May 26-30, Toulouse: Asociación Científica Mundial de Cunicultura. 1996: (1):13 28.

23. Makkar HPS, Singh B, Krishna L. Effect of feeding urea on some hydrolytic and ammonia assimilation enzymes in rabbit cecum. J Appl Rabbit Res 1990; 13: 35 38.

24. Lleonart, F. Cecotrofia. In: Tratado de Cunicultura. Vol. 1. Madrid: Mundi Prensa, 1980; 49 56.

25. Ellison HJ, Schingoethe DJ, Maiga HA. Lactation evaluation of protein supplements of varying ruminal degradabilities. J Dairy Sci 1997; 80:385-392.

26. Dawson KA, Newman KE, Boling JA. Effect of microbial supplements containing yeast and lactobacilli on roughage fed ruminal microbial activities. J Anim Sci 1990; 68: 3392 3398.