2015, Número 3
<< Anterior Siguiente >>
Rev Mex Periodontol 2015; 6 (3)
Caracterización del biofilm en el tercio apical de órganos dentarios extraídos por enfermedad periodontal
Nava HSM, Narváez DJD, González AAM, Aragón PA, Araujo AC, Zermeño IJA
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 44
Paginas: 110-120
Archivo PDF: 555.40 Kb.
RESUMEN
Antecedentes: Los microorganismos presentes en la cavidad oral no se encuentran en forma planctónica, sino en comunidades denominadas biofilm, las cuales ofrecen resistencia a los antimicrobianos. El biofilm puede presentarse en diversas zonas donde se localice una infección de la pieza dental; en la pulpa y el periodonto, en virtud del foramen apical, es posible que ocurran intercambios de agentes nocivos. Resulta de interés el conocimiento de las interacciones microbianas de enfermedades periodontales en relación con las del sistema de conductos y el posible vínculo con la presencia de biofilm.
Objetivo: Identificar y caracterizar los microorganismos en forma de biofilm en la parte apical de órganos dentarios extraídos por enfermedad periodontal, por técnicas microbiológicas convencionales, microscopia electrónica de barrido (MEB) y espectroscopia Raman.
Material y métodos: Se extrajeron un total de 20 dientes con movilidad de tercer grado y sin soporte óseo radiográfico en la Clínica de Periodoncia, Facultad de Estomatología, UASLP, previa firma de carta de consentimiento informado. Se realizaron cortes longitudinales del tercio apical y se dividieron en dos grupos: 1) pared cementaria extrarradicular y 2) parte intraconducto. Se realizaron las identificaciones microbiológicas por pruebas convencionales. Las muestras se procesaron para observación del biofilm por microscopia electrónica de barrido. Se realizó el análisis de la composición química por espectroscopia Raman.
Conclusiones: Se observó la presencia de biofilm tanto en la parte extrarradicular como en la parte intraconducto de las piezas. Se encontró una relación entre los microorganismos identificados de ambos cortes. Se identificaron los componentes químicos mayoritarios del biofilm mediante espectroscopia vibracional.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Tal M. Periodontal disease and oral higiene. Described by Antoni van Leeuwenhoek. J Periodontol. 1980; 51: 668-669.
Socransky SS, Haffajee AD, Cugini MA, Smith C, Kent RL Jr. Microbial complexes in subgingival plaque. J Clin Periodontol. 1998; 25: 134-144.
Gómez M, Campos A. Histología y embriología bucodental. 2.a ed. Madrid, España: Editorial Médica Panamericana; 2003. pp. 212-383.
Gopal S, Kumar KP. Interrelationship of endodontic-periodontal lesions –an overview. Indian Journal of Dental Sciences. 2011; 3 (2): 55-59.
Zehnder M, Gold SI, Hasselgren G. Pathologic interactions in pulpal and periodontal tissues. J Clin Periodontol. 2002; 29: 663-671.
Gajardo M, Silva N, Gómez L, León R, Parra B, Contreras A et al. Prevalence of periodontopathic bacteria in aggressive periodontitis patients in Chilean population. J Periodontol. 2005; 76 (2): 289-294.
Denkhaus E, Meisen S, Telgheder U, Wingender J. Chemical and physical methods for characterisation of biofilms. Microchim Acta. 2007; 158: 1-27.
D’Ercole S, Catamo G, Piccolomini R. Diagnosis in periodontology: a further aid through microbiological tests. Crit Rev Microbiol. 2008; 34: 33-41.
Simring M, Goldberg M. The pulpal pocket approach: retrograde periodontitis. Journal of Periodontology. 1964; 35: 22-48.
Wang J, Jiang Y, Chen W, Zhu C, Liang J. Bacterial flora and extraradicular biofilm associated with the apical segment of teeth with post treatment apical periodontitis. J Endod. 2012; 38: 954-995.
Tsuda H, Arends J. Raman spectroscopy in dental research: a short review of recent studies. Adv Dent Res. 1997; 11 (4): 539-547.
Teles R, Teles F, Frias-Lopez J, Paster B, Haffajee A. Lessons learned and unlearned in periodontal microbiology. Periodontol 2000. 2013; 62: 95-162.
Vieira AR, Siqueira JF Jr, Ricucci D, Lopes WS. Dentinal tubule infection as the cause of recurrent disease and late endodontic treatment failure: a case report. J Endod. 2012; 38 (2): 250-254.
Molven O, Olsen I, Kerekes K. Scanning electron microscopy of bacteria in the apical part of root canals in permanent teeth with periapical lesions. Endod Dent Traumatol. 1991; 7: 226-229.
Trostand L, Barnett F, Cervone F. Periapical bacterial plaque in teeth refractory to endodontic treatment. Endod Dent Traumatol. 1990; 6 (2): 73-77.
Kalfas S, Figdor D, Sundqvist G. A new bacterial species associated with failed endodontic treatment: identification and description of Actinomyces radicidentis. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2001; 92: 208-214.
Torrungruang K, Bandhaya P, Likittanasombat K, Grittayaphong C. Relationship between the presence of certain bacterial pathogens and periodontal status of urban thai adults. J Periodontol. 2009; 80 (1): 122-129.
Rocha et al. Biofilm on the apical region of roots in primary teeth with vital and necrotic pulps with or without radiographically evident apical pathosis. Int Endod J. 2008; 41: 664-669.
Vier-Pelisser FV. Apical resorption in teeth with periapical lesions. Correlation between radiographic diagnosis and SEM examination. Aust Endod J. 2013; 39: 2-7.
Socransky SS, Haffajee AD. Periodontal microbial ecology. Periodontology 2000. 2005; 38: 135-187.
Signoretti FG, Endo MS, Gomes BP, Montagner F, Tosello FB, Jacinto RC. Persistent extraradicular infection in root-filled asymptomatic human tooth: scanning electron microscopic analysis and microbial investigation after apical microsurgery. J Endod. 2011; 37 (12): 1696-1700.
Jiang X, Yang S, Sun G. Odontogenic infection due to Aerococcus viridans: a case report. J Oral Maxillofac Surg. 2013; 71 (9): 1552-1554.
Aguirre M, Collins MD. Phylogenetic analysis of some Aerococcus-like organisms from urinary tract infections: description of Aerococcus urinae sp. nov. J Gen Microbiol. 1992; 138: 401-405.
Sierra-Hoffman M, Watkins K, Jinadatha C, Fader R, Carpenter JL. Clinical significance of Aerococcus urinae: a retrospective review. Diagn Microbiol Infect Dis. 2005; 53: 289-292.
Kass M, Toye B, Veinot JP. Fatal infective endocarditis due to Aerococcus urinae –case report and review of the literature. Cardiovasc Pathol. 2008; 17: 410-412.
Sunde PT, Olsen I, Debelian GJ, Tronstad L. Microbiota of periapical lesions refractory to endodontic therapy. J Endod. 2002; 28 (4): 304-310.
Manrique de Bellard E, Stanys May H. Microorganismos identificados en el tejido periodontal en pacientes con enfermedad renal crónica terminal. Gac Med Caracas. 2000; 108 (3): 518-524.
Dige I, Raarup MK, Nyengaard JR et al. Actinomyces naeslundii in initial dental biofilm formation. Microbiology. 2009; 155: 2116-2126.
Sullivan DC, Chapman SW. Bacteria that masquerade as fungi: actinomycosis/nocardia. Proc Am Thorac Soc. 2010; 7: 216-221.
Canesi L, Borghi C, Stauder M, Lingström P, Papetti A, Pratten J et al. Effects of fruit and vegetable low molecular mass fractions on gene expression in gingival cells challenged with Prevotella intermedia and Actinomyces naeslundii. J Biomed Biotechnol. 2011; 2011: 230630.
Al-Ahamad A, Ameen H, Pelz K, Karygianni L, Wittmer A, Anderson AC et al. Antibiotic resistance and capacity for biofilm formation of different bacteria isolated from endodontic infections associated with root-filled teeth. J Endod. 2014; 40 (2): 223-230.
Flores L, Do T, Gilbert SC, Cox S, Clark D, Wickström C et al. Application of MLST and pilus gene sequence comparisons to investigate the population structures of Actinomyces naeslundii and Actinomyces oris. PloS One. 2011; 6 (6): e21430
Ximenez-Fyvie LA, Almaguer-Flores A, Jacobo-Soto V, Lara-Cordoba M, Moreno-Borjas JY, Alcantara-Maruri E. Subgingival microbiota of periodontally untreated Mexican subjects with generalized aggressive periodontitis. J Clin Periodontol. 2006; 33: 869-877.
Whiley RA, Beighton D, Winstanley TG, Fraser HY, Hardie JM. Streptococcus intermedius, Streptococcus constellatus, and Streptococcus anginosus (the Streptococcus milleri group): association with different body sites and clinical infections. J Clin Microbiol. 1992; 30: 243-244.
Yamamoto M, Fukushima T, Ohshiro S et al. Brain abscess caused by Streptococcus intermedius: two case reports. Surg Neurol. 1999; 51: 219-222.
Vajramani GV, Akrawi H, Jones G, Sparrow CE. Primary ventriculitis caused by Streptococcus intermedius. Br J Neurosurg. 2007; 21 (3): 293-296.
Peltroche-Llacsahuanga H, Reichhart E, Schmitt W, Lutticken R, Haase G. Investigation of infectious organisms causing pericoronitis of the mandibular third molar. J Oral Maxillofac Surg. 2000; 58: 611-616.
Fisher LE, Russell RR. The isolation and characterization of milleri group streptococci from dental periapical abscesses. J Dent Res. 1993; 72: 1191-1193.
Tsuda H, Arends J. Raman spectra of human dental calculus. J Dent Res. 1993; 72 (12): 1609-1613.
Howell SC, Haffajee AD, Pagonis TC, Guze KA. Laser raman spectroscopy as a potential chair-side microbiological diagnostic device. J Endod. 2011; 37 (7): 968-972.
Garret TR, Bhahoo M, Zhang Z. Bacterial adhesion and biofilms on surfaces. Progress in Natural Science. 2008; 18: 1049-1056.
Gualdi L, Tagliabue L, Bertagnoli S, Ierano T, De Castro C, Landini P. Cellulose modulates biofilm formation by counteracting curli-mediated colonization of solid surfaces in Escherichia coli. Microbiology. 2008; 154: 2017-2024.
Ghafoor A, Hay ID, Rehm BH. Role of exopolysaccharides in Pseudomonas aeruginosa biofilm formation and architecture. Appl Environ Microbiol. 2011; 77 (15): 5238-5246.
Yun MH, Torres PS, El Oirdi M, Rigano LA, González-Lamothe R, Marano MR et al. Xanthan induces plant susceptibility by suppressing callose deposition. Plant Physiol. 2006; 141: 178-187.