2015, Número 07
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Ginecol Obstet Mex 2015; 83 (07)
Tasa de infección por virus del papiloma humano diagnosticada mediante visualización directa con ácido acético y lugol (en pacientes del área rural)
Flores-Alatriste JD, Saldívar-Gutiérrez KG, Sarmiento-Ángeles J, Granados-Marín JC, Olaya-Rivera MA, Carlotta S, Flores-Navarro H, Stern-Colin J
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 29
Paginas: 429-436
Archivo PDF: 435.61 Kb.
RESUMEN
Antecedentes: la infección por virus del papiloma humano es un gran
problema de salud mundial y el principal factor de riesgo para cáncer
cervicouterino con altas tasas de morbilidad y mortalidad. Métodos sencillos
de diagnóstico, como la inspección visual a simple vista del cuello
uterino con la aplicación de ácido acético al 5% o solución de lugol
(tintura de lugol) son pruebas simples para detectar las lesiones tempranas,
la sensibilidad varía de 87 a 99% con especificidad de 23 a 87%.
Objetivo: encontrar la proporción de infección por virus del papiloma
humano en una población rural.
Material y método: estudio piloto, lineal, observacional y descriptivo
efectuado en pacientes de comunidades marginadas y en extrema pobreza
del estado de Chiapas (México), del 1 al 30 de noviembre del año
2013. Se verificó la existencia de lesiones acetoblancas sugerentes de
virus del papiloma humano, y se conformó la historia clínica de todas
las pacientes para obtener la incidencia de factores de riesgo.
Resultados: se estudiaron 214 mujeres con límites de edad de 19 y
78 años, mediana de edad de 37 años. Del total, 66 (31%) tenían
lesiones acetoblancas concordantes con virus del papiloma humano
al momento del estudio.
Conclusiones: las poblaciones marginadas tienen mayor riesgo de
infección por el virus del papiloma humano, en consecuencia elevada
tasa de progresión a cáncer cervicouterino debido a las características
sociodemográficas, factores de riesgo y falta de recursos en materia de
salud. Pruebas diagnósticas como la visualización simple con ácido
acético son ideales para poblaciones como ésta.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Crosbie EJ, Einstein MH, Franceschi S, Kitchener HC. Human papilloma virus and cervical cancer. Lancet 2013;382:889- 99.
Eileen FD, Ina UP. HPV and HPV-associated diseases. Infect Dis Clin N Am 2013;27:765-78
Deodhar KK. Screening for cervical cancer and human papilloma virus: Indian context. Clin Lab Med 2012;32:193-205
Muñoz N, Herrero R. Prevention of cervical cancer in women’s hands: Mexico leads the way. Lancet 2011;378:1829-31.
Weinstein LC, Buchanan EM, Hillson C, Chambers CV. Screening and prevention: cervical cancer. Prim Care 2009;36:559-74.
Denny L. Cervical cancer prevention: new opportunities for primary and secondary prevention in the 21st century. Int J Gynaecol Obstet 2012;119 Suppl 1:S80-4. Epub 2012 Aug 11.
Luciani S, Andrus JK. A Pan American Health Organization strategy for cervical cancer prevention and control in Latin America and the Caribbean. Reprod Health Matters 2008;16:59-66.
Muñoz N, Franco EL, Herrero R, et al. Recommendations for cervical cancer prevention in Latin America and the Caribbean. Vaccine 2008;26 Suppl 11:L96-L107.
Herrero R, Ferreccio C, Salmeron J, et al. New approaches to cervical cancer screening in Latin America and the Caribbean. Vaccine 2008;26 Suppl 11:L49-58.
Spitzer M. Screening and management of women and girls with human papillomavirus infection. Gynecol Oncol 2007;107(2 Suppl 1):S14-8.
Sankaranarayanan R, Basu P, Wesley RS, Mahe C, Keita N, et all. Accuracy of visual screening for cervical neoplasia: Results from an IARC multicentre study in India and Africa. Int J Cancer 2004;110:907-13.
Sauvaget C, Fayette JM, Muwonge R, Wesley R, Sankaranarayanan R. Accuracy of visual inspection with acetic acid for cervical cancer screening. Int J Gynaecol Obstet 2011;113:14-24. Epub 2011 Jan 22.
Sankaranarayanan R, Nessa A, Esmy PO, Dangou JM.Visual inspection methods for cervical cancer prevention. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 2012;26:221-32. Epub 2011 Nov 9.
Deodhar K, Sankaranarayanan R, Jayant K, Jeronimo J, Thorat R, et all.
Accuracy of concurrent visual and cytology screening in detecting cervical cancer precursors in rural India. Int J Cancer 2012;131:E954-62. Epub 2012 May 30.
Goldie SJ, Gaffikin L, Goldhaber-Fiebert JD, Gordillo-Tobar A, et all.
Cost-effectiveness of cervical-cancer screening in five developing countries. N Engl J Med 2005;353:2158-68.
Legood R, Gray AM, Mahé C, Wolstenholme J, et al. Screening for cervical cancer in India: How much will it cost? A trial based analysis of the cost per case detected. Int J Cancer 2005;117:981-7.
Chalkidou K, Marquez P, Dhillon PK, Teerawattananon Y, Anothaisintawee T, et all. Evidence-informed frameworks for cost-effective cancer care and prevention in low, middle, and high-income countries. Lancet Oncol. 2014 Mar;15(3):e119-e131.
Kulasingam S, Havrilesky L.Health economics of screening for gynaecological cancers. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2012 Apr;26(2):163-73.
Phongsavan K, Phengsavanh A, Wahlström R, Marions L.Safety, feasibility, and acceptability of visual inspection with acetic acid and immediate treatment with cryotherapy in rural Laos. Int J Gynaecol Obstet. 2011 Sep;114(3):268-72.
Nene BM, Hiremath PS, Kane S, Fayette JM, et all. Effectiveness, safety, and acceptability of cryotherapy by midwives for cervical intraepithelial neoplasia in Maharashtra, India. Int J Gynaecol Obstet. 2008 Dec;103(3):232-6.
Paul P, Winkler JL, Bartolini RM, Penny ME, Huong TT, et all. Screen-and-treat approach to cervical cancer prevention using visual inspection with acetic acid andcryotherapy: experiences, perceptions, and beliefs from demonstration projects in Peru, Uganda, and Vietnam. Oncologist. 2013;18 Suppl:6-12.18-S2-6.
Santesso N, Schünemann H, Blumenthal P, De Vuyst H, Gage J, et all.
World Health Organization Guidelines: Use of cryotherapy for cervical intraepithelial neoplasia. Int J Gynaecol Obstet. 2012 Aug;118(2):97-102.
Pourasad-Shahrak S, Salehi-Pourmehr H, Mostafa- Garebaghi P.
Comparing the results of Pap smear and Direct Visual Inspection (DVI) with 5% acetic acid in cervical cancer screening. Niger Med J. 2015 Jan-Feb; 56(1): 35–38.
Mallah F, Nazari F, Navali N. Comparison of direct visual inspection (DVI) with paps mear in diagnosis of precancer our lesion of cervix. Life Sci J. 2012;9:2556–60.
WHO Guidelines for Screening and Treatment of Precancerous Lesions for Cervical Cancer Prevention. WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. Geneva: World Health Organization; 2013.