medigraphic.com
ISSN 1028-4796 (Impreso)

2014, Número 3

Siguiente >>

Rev Cubana Plant Med 2014; 19 (3)


Actividad antibacteriana y moduladora de Cecropia pachystachya Trécul en la acción de los aminoglucósidos

Oliveira SD, Relison TS, Gomes FF, Melo BMC, Bezerra MBMF, Bezerra FCF, Martins CJG, Melo CHD, Alencar MIR, Kerntopf MR

Idioma: Portugués
Referencias bibliográficas: 45
Paginas: 121-132
Archivo PDF: 124.39 Kb.


RESUMEN

Introducción: Cecropia pachystachya Trécul, es conocida como "toré" (Urticaceae), presente en todo el territorio brasileño, utilizada en la medicina popular para el tratamiento de infecciones respiratorias y de transmisión sexual (gonorrea).
Objetivo: evaluar la actividad antibacteriana y moduladora sobre antibióticos del extracto etanólico y fracciones metanólicas de las hojas y tallo de C. pachystachya T. contra cepas bacterianas estándar y multirresistentes.
Métodos: el material vegetal (hojas y tallos), colectado en el Araripe, fue triturado y sumergido en etanol PA como solvente. Seguidamente, fue sometido a destilación del solvente en un evaporador rotativo para la producción de los extractos, que fueron divididos y sometidos al solvente metanólico, formando así las fracciones. Se llevó a cabo un ensayo de microdilución para verificar la actividad antibacteriana y las posibles interacciones de aminoglucósidos asociados con las muestras estudiadas, se utilizó una concentración sub-inhibitoria de 128 µg/mL (CIM/8).
Resultados: el efecto más representativo resultó el de la asociación de neomicina con el EEFCP (Extrato Etanólico de hojas de C. pachystachya T) y su fracción con disminución de la CIM de 312,5 para 39,06 µg/mL y 312,50 para 78,13 µg/mL, respectivamente contra Staphylococcus aureus 358. Se observó un efecto antagónico contra E. coli 27.
Conclusiones: los datos obtenidos indican que el extracto y fracciones metanólicas de C. pachystachya, pueden ser una alternativa importante en la búsqueda de sustancias que tienen acción contra las bacterias Staphylococcus multirresistentes. Sin embargo, puede afectar negativamente a la acción de las drogas estudiadas. No obstante, es necesario realizar nuevos experimentos in vivo para comprobar esta acción.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Bush K, Courvalin P, Dantas G, Davies J, Eisenstein B, Huovinen P, et al. Tackling antibiotic resistance. Nat Rev Microbiol. 2011;9(12):894-6.

  2. WHO (World Health Organization). The evolving threat of antimicrobial resistance. Geneva. [acessado em 10 de Fevereiro, 2013]. Disponíveis em 2012: http://whqlibdoc.who.int/publications/2012/9789241503181_eng.pdf.

  3. Min LI, Yuping L, Amer EV, David JC, Daniel ES, Michael O. Gram positive threecomponent antimicrobial peptide-sensing system. PNAS. 2007;104(22):9469-74.

  4. Andersson DI, Hughes D. Antibiotic resistance and its cost: is it possible to reverse resistance? Nat. Rev. Microbiol. 2012;8(4):260-71.

  5. Slish DFH, Arvigo R, Balick M. Ethnobotany in the search for vasoactive herbal medicines. J. Ethnopharmacol. 1999;66(2):159-165.

  6. Nascimento GGF, Locatelli J, Freitas PC, Silva GL. Antibacterial activity of plant extracts and phytochemicals on antibiotic-resistant bacteria. Braz. J. Microbiol. 2000;31(4):24756.

  7. Marquez B, Neuville L, Moreau NJ, Genet JP, dos Santos AF, de Andrade MCC, et al. Multidrug resistance reversal agent from Jatropha elliptica. Phytochemistry. 2005;66(15):1804-11.

  8. Berg CC. Cecropia (Cecropiaceae) no Brasil, ao sul da Bacia Amazônica. Albertoa. 1996;4(16):213-221.

  9. Pott A, Pott VJ. Plantas do Pantanal. vol 5. Brasil: Brasília: Embrapa; 1994. p 320.

  10. Da Silva MAB, Melo LVL, Ribeiro RV, Souza JPM, Lima JCS, Martins DTO, et al. Ethnobotanical survey of plants used as antihyperlipidemic and anorexigenic by the population of Nova Xavantina-MT, Brazil. Rev Bras Farmacogn. 2010;20(4):549-62.

  11. Souza CD, Felfili JM. Uso de plantas medicinais na região de Alto Paraíso de Goiás, GO, Brasil. Acta Bot Bras. 2006;20(1):135-42.

  12. Rodrigues VEG, Carvalho DA. Levantamento etnobotânico de plantas medicinais no domínio do Cerrados na região do Alto Rio Grande - Minas Gerais. Ciênc. Agrotec. 2001;25(1):10223.

  13. Rocha FF, Lima-Landman MT, Tanae MM, de Lima TC, Lapa AJ. Antidepressant- Like Effect of Cecropia glazioui Sneth and Its Constituents - In Vivo and in Vitro Characterization of the Underlying Mechanism. Phytomedicine. 2007;14(6):396-402.

  14. Velázquez E, Tournier HA, Buschiazzo PM, Daavedra G, Schinella GR. Antioxidant activity of Paraguayan plant extracts. Fitoterapia. 2003;74(1-2):91-7.

  15. Consolini AE, Ragone MA, Migliori GN, Conforti P, Volonté MG. Cardiotonic and sedative effects of Cecropia pachystachya Mart. (Ambay) on isolated rat hearts and conscious mice. J. Ethnopharmacol. 2006;106(1):90-6.

  16. Hikawczuk VJ, Saad JR, Guardia T, Juarez AO, Giordano OS. Anti-inflammatory activity of natural compounds isolated from Cecropia pachystachya. An. Asociac. Química Argentina. 1998;86(3-6):167-170.

  17. Matos FLA. Introdução a Fitoquímica Experimental. 2.ed. Fortaleza: UFC, Fortaleza, 1997. p.141.

  18. Coutinho HDM, Costa JGM, Lima EO, Silva FVS, Siqueira JR. Enhancement of the Antibiotic Activity against a Multiresistant Escherichia coli by Mentha arvensis L. and Chlorpromazine. Chemotherapy. 2008; 54(4):328-30.

  19. Houghton PJ, Howes MJ, Lee CC, Steventon G. Uses and abuses of in vitro tests in ethnopharmacology: Visualizing an elephant. J. Ethnopharmacol. 2007;110(3):391-400.

  20. Daferera DJ, Ziogas BN, Polissiou MG. The effectiveness of plant essential oils on the growth of Botrytis cinerea, Fusarium sp. and Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis. Crop Protection. 2003;22(1):39-44.

  21. Coutinho HDM, Costa JGM, Lima OE, Falcão-Silva VS, Junior-Siqueira JP. In vitro interference of Momordica charantia in the resistance to aminoglycosides. Pharm Biol. 2009;47(11):1056-59.

  22. Paula CC. Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro e in vivo de Conyza bonariensis (L.) Cronquist (Margaridinha do Campo) e Macrosiphonia velame (A. St.-Hil.) Müll. Arg. (Velame Branco). 2010. [Dissertação]. Cuiabá: Universidade Federal de Mato Grosso; 2010.

  23. Silva FM, Aqüila MEA. Potencial alelopático de espécies nativas na germinação e crescimento inicial de Lactuca sativa L. (Asteraceae). Acta bot Bras. 2006;20(1):61-9.

  24. Lacaille-Dubois MA, Franck U, Wagner H. Search for potential Angiotensin Converting Enzyme (ACE)-inhibitors from plants. Phytomedicine. 2001;8(1):47-52.

  25. Tanae M, Lima-Landman M, De Lima M, Souccar C, Lapa A. Chemical standardization of the aqueous extract of Cecropia glaziovii Sneth endowed with antihypertensive, bronchodilator, antiacid secretion and antidepressant-like activities. Phytomedicine. 2007;14(5):309-13.

  26. Costa GM, Ortmann CF, Schenkel EP, Reginatto FH. An HPLC-DAD method to quantification of main phenolic compounds from leaves of Cecropia species. J Braz Chem Soc. 2011;22(6):1089-95.

  27. Monteiro JM, Albuquerque UP, Araújo EL. Tannis: from chemistry to ecology. Quím. Nova. 2005;28(5):892-96.

  28. Oliveira IS. Avaliação da Atividade Antimicrobiana in vitro e in vivo de Crotonurucurana Baillon (Sangra D`Água). 2007. [Dissertação]. Cuiabá: Universidade Federal de Mato Grosso; 2007.

  29. Ho KY, Tsai CC, Huang JS, Chen CP, Lin TC, Lin CC. Antimicrobial activity of tannin components from Vaccinium vitis-idaea L. J Pharm Pharmacol. 2001;53(2):187-91.

  30. Figueredo FG, Ferreira EO, Lucena BF, Torres CM, Lucetti DL, Lucetti EC, et al. Modulation of the Antibiotic Activity by Extracts from Amburana cearensis A. C. Smith and Anadenanthera macrocarpa (Benth.) Brenan. Biomed Res Int. 2013;2013:1-5.

  31. Taguri T, Tanaka T, Kouno I. Antimicrobial activity of 10 different plant polyphenols against bacteria causing food-borne disease. Biol. Pharm. Bull. 2004;27(12):1965-69.

  32. Cowan MM. Plant products as antimicrobial agents. Clin. Microbiol Rev. 1999;12(4):564-82.

  33. Loguercio AP, Battistin A, Vargas ACDE, Henzel A, Witt NM. Atividade antibacteriana de extrato hidro-alcoólico de folhas de jambolão ( Syzygium cumini (L.) Skells). Ciênci. Rural. 2005;35(2):371-76.

  34. Montanari MLC, Montanari CA. Validação lateral em relações quantitativas entre estrutura e atividade farmacológica, QSAR. Química Nova. 2002;25(2):231-40.

  35. Cushnie TPT, Lamb AJ. Detection of galangin-induced cytoplasmic membrane damage in Staphylococcus aureus by measuring potassium loss. J Ethnopharmacol. 2005;101(1-3):243-8.

  36. Andrade CA, Peitz C, Cúnico M, Carvalho JLS, Abrahão WM, Miguel OG, Miguel MD, Kerber VA. Avaliação da atividade antibacteriana e triagem fitoquímica das flores de Acacia podalyriifolia A. Cunn. ex G. Don Leguminosae-Mimosoideae Ver. Bras Farmacogn. 2005;15(1):13-15.

  37. Sato J, Goto K, Nanjo F, Kawai S, Murata K. Antifungal activity of plant extracts against Arthrinium sacchari and Chaetomium funicola. J Biosci Bioeng. 2000;90(4):442-46.

  38. Peitz C, Cúnico MM, Miguel OG, Miguel MD, Kerber VA. Avaliação da atividade antibacteriana e triagem fitoquímica das folhas de Acacia longifólia (Andr.) Willd. (Leguminosae). Rev Bras Farmacogn. 2003;13(2):61-5.

  39. Behling EB, Sendão MC, Francescato HDC, Antunes LMG, Bianchi MLP. Flavonoid quercetin: general aspects and biological actions. Alim Nutr. 2004;15(3):285-92.

  40. Granowitz EV, Brown RB. Antibiotic adverse reactions and drug interactions. Crit Care Clin. 2008;24(2):421-42.

  41. Budzianowski J, Pakulski G, Robak J. Studies on antioxidative activity of some C-glycosylflavones. Pol J of Pharmacol Pharm. 1991;43(5):395-401.

  42. Deliorman OD, Aslan M, Aktay G, Ergun E, Yesilada E, Ergun F. Evaluation of hepatoprotective effect of Gentiana olivieri herbs on subacute administration and isolation of active principle. Life Sci. 2003;72(20):2273-83.

  43. Coelho RG, Gonzalez FG, Sannomiva M, Di Stasi LC, Vilegas W. Gastric antiulcer activity of leaf fractions obtained of polar extract from Wilbrandia ebracteata in mice. Nat Prod Res. 2009;23(1):51-9.

  44. Shibano M, Kakutami K, Taniguchi M, Yasuda M, Baba K. Antioxidant constituents in the dayflower (Commelina communis L.) and their ?-glucosidaseinhibitory activity. Nat Med. 2008;62(3):349-53.

  45. Catão RMR, Antunes RMP, Arruda TA, Pereira MSV, Higino JS, Alves JA, Passos MGVM, Santos VL. Atividade antimicrobiana “in vitro” do extrato etanólico de Punica granatum Linn. (romã) sobre isolados ambulatoriais de Staphylococcus aureus. RBAC. 2006;38(2):111-14.




2020     |     www.medigraphic.com