2013, Número 3
<< Anterior Siguiente >>
Biotecnol Apl 2013; 30 (3)
Caracterización filogenética y molecular de Coronavirus que afectan a especies de bovinos y aves en Cuba
Acevedo AM, Martínez N, Brandão P, Perera CL, Frías MT, Barrera M, Pérez LJ
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 228-231
Archivo PDF: 153.52 Kb.
RESUMEN
El virus de la bronquitis infecciosa aviar (IBV) y el coronavirus bovino (BCoV) son agentes patógenos de
importancia veterinaria porque afectan a las aves y al ganado bovino en Cuba. Como se desconocen sus características moleculares y diversidad genética, el objetivo de esta investigación fue determinarlas en ambos agentes, a partir del gen de la espícula S. Se analizaron cepas de campo de BCoV, recolectadas entre los años 2009 y 2011, y se compararon filogenéticamente según varios marcadores del gen S. Además se hicieron estudios de inferencia filogenética en una región de S1 de aislados recientes del IBV. Todas las cepas de BCoV cubanas se localizaron en un mismo grupo filogenético con un soporte estadístico del 100 % y valor de probabilidad posterior 1.00. Las secuencias de coronavirus bovino cubanas se agruparon con cepas de BCoV de EE.UU. con números de acceso en el GenBank de EF424621 y EF424623, que sugiere un origen común para estos virus. Este grupo filogenético fue
el único en cuyas secuencias no se detectaron eventos de recombinación. De los 45 cambios de aminoácidos en las
cepas cubanas, cuatro fueron únicos. En las granjas evaluadas se detectaron dos posibles genotipos genéticamente
diferentes al genotipo Massachusetts de la cepa H120 usada en el programa de vacunación cubano. Además, se halló un potencial aislado de IBV nefropatogénico encontrado por primera vez en Cuba. Este trabajo mereció el Premio Anual de la Academia de Ciencias de Cuba del año 2012.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Jackwood MW, Boynton TO, Hilt DA, McKinley ET, Kissinger JC, Paterson AH, et al. Emergence of a group 3 coronavirus through recombination. Virology. 2010;398(1):98-108.
Wood MK, Ladman BA, Preskenis A, Pope CR, Bautista DA, Gelb J Jr. Massachusetts Live Vaccination Protects Against a Novel Infectious Bronchitis Virus S1 Genotype DMV/5642/06. Avian Dis. 2009;53:119-23.
Dolz R, Pujols J, Ordóñez G, Porta R, Majó N. Molecular epidemiology and evolution of avian infectious bronchitis virus in Spain over a fourteen-year period. Virology. 2008;374:50-9.
Mahmooda ZH, Sleman RR, Uthman AU. Isolation and molecular characterization of Sul/01/09 avian infectious bronchitis virus, indicates the emergence of a new genotype in the Middle East. Vet Microbiol. 2011;150:21-7.
Lim TH, Lee HJ, Lee DH, Lee YN, Park JK, Youn HN, et al. An emerging recombinant cluster of nephropathogenic strains of avian infectious bronchitis virus in Korea. Infect Genet Evol. 2011;11(3):678-85.
Zhang X, Hasoksuz M, Spiro D, Halpin R, Wang S, Vlasova A, et al.Quasispecies of bovine enteric and respiratory coronaviruses based on complete genome sequences and genetic changes after tissue culture adaptation. Virology. 2007;363:1-10.
Cavanagh D, Naqi SA. Infectious bronchitis. In: Diseases of Poultry, 11th ed, Edited by. Saif YM, Barnes HJ, Glisson JR, Fadly AM, McDougald LR, Swayne DE. Ames, Iowa: Iowa State Press; 2003. p. 101-19.
ICTV Virus Taxonomy: 2009 Release. [cited 2010 Aug 1]. Available from: http://ictvonline.org/virusTaxonomy.asp? version=2009.
OIE. Avian infectious bronchitis [Chapter 2.3.2] (BI). In: Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 6th ed. Paris: Office International des Epizooties; 2008. p. 443-55.
Ladman BS, Loupos AB, Gelb J Jr. Infectious bronchitis virus S1 gene sequence comparison is a better predictor of challenge of immunity in chickens than serotyping by virus neutralization. Avian Pathol. 2006;35:127-33.
Guilarte O. Identificación de los niveles de anticuerpos contra el virus de la bronquitis infecciosa y el virus de Newcastle en aves afectadas con la enfermedad respiratoria crónica. Rev Cub Ciencia Avíc. 1985;12:15-26.
Mebus CA, Stair EL, Rhodes MB, Twiehaus MJ. Neonatal calf diarrhea: propagation, attenuation, and characteristics of a coronavirus like agent. Am J Vet Res. 1973;34:145-50.
Saif LJ, Brock KV, Redman DR, Kohler EM. Winter dysentery in dairy herds: electron microscopic and serological evidence for an association with coronavirus infection. Vet Rec. 1991;128:447-9.
Storz J, Purdy W, Lin X, Burrell M, Truax RE, Briggs RE, et al. Isolation of respiratory bovine coronavirus, other cytocidal viruses, and Pasteurella spp. from cattle involved in two natural outbreaks of shipping fever. J Am Vet Med Assoc. 2000;216:1599-604.
Saif LJ, Redman DR, Brock KV, Kohler EM, Heckert RA. Winter dysentery in adult dairy cattle: detection of coronavirus in the faeces. Vet Rec. 1998;123:300-1.
Abraham S, Kienzle TE, Lapps W, Brian DA. Deduced sequence of the bovine coronavirus spike protein and identifi cation of the internal proteolytic cleavage site. Virology. 1990;176:296-301.
Kubo H, Yamada YK, Taguchi F. Localization of neutralizing epitopes and the receptorbinding site within the aminoterminal 330 amino acids of the murine coronavirus spike protein. J Virol. 1994;68:5403-10.
Yoo D, Deregt D. A single amino acid change within antigenic domain II of the spike protein of bovine coronavirus confers resistance to virus neutralization. Clin Diagn Lab Immunol. 2001;8:297-302.
Schultze B, Gross HJ, Brossmer R, Herrler G. The S protein of bovine coronavirus is a hemagglutinin recognizing 9-Oacetylated sialic acid as a receptor determinant. J Virol. 1991;65:6232-7.
Ballesteros ML, Sanchez CM, Enjuanes L. Two amino acid changes at the N-terminus of transmissible gastroenteritis coronavirus spike protein result in the loss of enteric tropism. Virology. 1997;227:378-88.
Barrera M, Rodríguez E, Bentancourt A, Frías MT, Brandão PE. First report in Cuba of bovine coronavirus detection in a winter dysentery outbreak. Span J Agric Res. 2006;4: 221-4.
Lai MMC, Cavanagh D. The molecular biology of coronaviruses. Adv Virus Res. 1997;48:1-100.
Olvera A, Busquets N, Cortey M, de Deus N, Ganges L, Nunez JI, et al. Applying phylogenetic analysis to viral livestock diseases: moving beyond molecular typing. Vet J. 2010;184(2):130-7.
Alekseev KP, Vlasova AN, Jung K, Hasoksuz M, Zhang X, Halpin R, et al. Bovine-like coronaviruses isolated from four species of captive wild ruminants are homologous to bovine coronaviruses, based on complete genomic sequences. J Virol. 2008;82:12422-31.
Hasoksuz M, Sreevatsan S, Cho KO, Hoet AE, Saif LJ. Molecular analysis of the S1 subunit of the spike glycoprotein of respiratory and enteric bovine coronavirus isolates. Virus Res. 2002;84:101-9.
Kühnert D, Wu CH, Drummond AJ. Phylogenetic and epidemic modeling of rapidly evolving infectious diseases. Infect Genet Evol. 2011;11(8):1825-41.