2005, Número 3
Frecuencia de Trichinella spiralis en sangre y músculo de equinos sacrificados en dos diferentes mataderos, uno de tipo industrial y otro de tipo rural en el Estado de México, México
Jiménez-Cardoso E, Caballero-García ML, Uribe-Gutiérrez G, Trejo-Hernández E, Gay-Jiménez FR
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 19
Paginas: 269-278
Archivo PDF: 660.75 Kb.
RESUMEN
El objetivo de este estudio fue evaluar la frecuencia de
Trichinella spiralis en carne de caballo que se utiliza para consumo humano y para animales. Se muestrearon 150 caballos procedentes de dos mataderos particulares, uno semitecnificado industrial y otro rural, 70 pertenecieron al primero y 80 al segundo; después de sacrificar a los animales, de cada caballo se tomaron 10 g de tres músculos; glúteo, masetero, diafragma o lengua, así como 5 ml de sangre; en la carne se buscó presencia de larvas de
T. spiralis mediante: a) triquinoscopía, b) digestión artificial y c) reacción de la cadena de la polimerasa, esta última también fue utilizada en la sangre. Los resultados mostraron que la triquinoscopía fue negativa en todos los músculos evaluados de los dos mataderos. Por digestión artificial, en un caballo del matadero semitecnificado industrial se encontraron larvas de
T. spiralis en los tres músculos con 1.42% de infección y en el músculo (masetero) de un caballo del matadero rural, por lo que la positividad de este ultimo fue de 1.25%. La reacción en cadena de la polimerasa fue positiva en los tres músculos de los caballos del matadero industrial y en la sangre de dos animales que resultaron positivos, dando una frecuencia total de infección de 4.8%. En el matadero rural la reacción en cadena de la polimerasa fue positiva en músculos de tres caballos, mientras que los análisis de sangre fueron negativos en todos los caballos evaluados indicando una frecuencia total de la infección de 3.75%. Se concluye que la frecuencia de
T. spiralis fue alta y semejante entre los dos mataderos pero hubo diferencias en relación a su carga parasitaria.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Ortega-Pierres MG, Arriaga C, Yepez-Mulia L. Epidemiology of Trichinellosis in Mexico, Central and South America. Vet Parasitol 2000;93:201-225.
Martinez-Marañon R, Trejo J, Delgado-Aguirre B. Incidence of infection by Trichinella spiralis in 1000 cadaver diaphragms in Mexico City during 1972-1973. Rev Invest Salud Publica 1974;34:95-105.
Ancelle T, Dupouy-Camet J, Desenclos JC, Maillot E, Savage-Houze S, Charlet F, et al. A multifocal outbreak of trichinellosis linked to horse meat imported from North America to France in 1993. Am J Trop Med Hyg 1998;59:615-619.
Arriaga C, Yepez-Mulia L, Viveros N, Adame LA, Zarlenga DS, Lichtenfels JR, et al. Detection of Trichinella spiralis muscle larvae in naturally infected horses. J Parasitol 1995;81:781-783.
Yepez-Mulia L, Arriaga C, Viveros N, Adame A, Benitez E, Ortega-Pierres MG. Detection of Trichinella infection in slaughter horses by ELISA and western blot analyses. Vet Parasitol 1999;81:57-68.
Viveros N, Arriaga C, Banda V, Ortega-Pierres MG, Yépez-Mulia L. Detection of Trichinella infection in slaughter horse by artificial digestion, ELISA and PCR. Parasite 2001;8:S257-S259.
Arriaga Diaz C, Yepez-Mulia L, Ortega-Pierres MG. Updates on equine trichinellosis. Rev Latinoam Microbiol 1996;38:139-150.
Samboo KJ, Fritsch E, Maniatis T. Molecular cloning. A laboratory Manual. 2nd ed. New York USA: Cold Spring Harbord Laboratory Press CSH; 1989.
Almaraz MG, Jaramillo C, Nicoli TM. Identificación de especie animal como adulterante en chorizo, longaniza y carne para hamburguesa. Vet Méx 1995;26:139.
Pozio E, Tamburrini A, Sacchi L, Gomez Morales MA, Corona S, Goffredo E, et al. Detection of Trichinella spiralis in a horse during routine examination in Italy. Int J Parasitol 1997;27:1613-1621.
Pozio E, Celano GV, Sacchi L, Pavia C, Rossi P, Tamburrini A, et al. Distribution of Trichinella spiralis larvae in muscles from a naturally infected horse. Vet Parasitol 1998;74:19-27.
Pozio E, Paterlini F, Pedarra C, Sacchi L, Bugarini R, Goffredo E, et al. Predilection sites of Trichinella spiralis larvae in naturally infected horses. J Helminthol 1999;73:233-237.
Dupouy-Carnet J. Trichinellosis: a worldwide zoonosis. Vet Parasitol 2000;93:191-200.
Van Knapen F. Control of trichinellosis by inspection and farm management practices. Vet Parasitol 2000;93:385-392.
Sofronic-Milosavljevic L, Pozio E, Patrascu IV, Skerovic N, Gomez Morales MA, Gamble HR. Immunodiagnosis of Trichinella infection in the horse. Parasite 2001; 8(2suppl):S260-S262.
Martínez Barbosa I, Gutiérrez-Quiroz M, Romero Cabello R, Fernando-Presas A, Vázquez Tsuje O, Pérez-León J. Inmunoepidemiología de la triquinelosis en niños de la Ciudad de México. Rev Pat Clin 2000;47:156-161.
Soule C, Dupouy-Camet J, Georges P, Ancelle T, Gillet J P, Vaissaire J, et al. Experimental trichinellosis in horses: biological and parasitological evaluation. Vet Parasitol 1989;31:19-36.
Sofronic-Milosavljevic L, Pozio E, Patrascu IV, Skerovie K, Gomez-Morales MA, Gamble HR. Immunodiagnosis of Trichinella infection in the horse. Parasite 2001;8 S260-S262.
Pozio E, Sofronic-Milosavljevic L, Gomez-Morales MA, Boireau P, Nöcklev K. Evaluation of ELISA and western blot analyses using three antigens to detect anti-Trichinella IgG in horses. Vet Parasitol 2002;108:163-178.