2013, Número 3
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Rev Cubana Plant Med 2013; 18 (3)
Bioprospección de frutos de Lacmellea standleyi (lechemiel)
Soto CEL, Chicué AM, Murillo PE, Méndez AJJ
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 46
Paginas: 412-430
Archivo PDF: 246.80 Kb.
RESUMEN
Introducción: del desconocimiento de gran parte de la riqueza florística en Colombia
y de la importancia que podría tener gran parte de esta en la nutrición, salud e
industria, nace la idea de explorar, al menos en parte, la diversidad de regiones como
la Orinoquía colombiana a través del estudio de bioprospección de los frutos de
Lacmellea standleyi (Woodson) Monach.
Objetivo: evaluar el potencial antioxidante, el contenido fenólico y nutricional, la
actividad antimicrobiana y el grado de inocuidad de los extractos acuoso, etanólico y
de acetato de etilo, de los frutos de
Lacmellea standleyi en 3 estadios diferentes de
maduración.
Métodos: el valor nutricional se evaluó a través de métodos estandarizados, al fruto
completo en sus 3 estadios de maduración; cada uno de los extractos se caracterizó
químicamente a través de ensayos espectrofotométricos. La actividad antimicrobiana
se midió mediante el tamaño del halo de inhibición frente a cepas de
Staphylococcus
aureus, Escherichia coli y Candida parpsilosis; la toxicidad aguda de los frutos se
calculó mediante pruebas
in vitro, usando como modelo experimental nauplios de
Artemia salina.
Resultados: se pudo evidenciar que los frutos verdes aportan compuestos
antioxidantes. En el estado intermedio se encuentran los niveles más altos de
nutrientes y el fruto maduro ostenta atractivas propiedades organolépticas y un
contenido relativamente alto de nutrientes.
Conclusiones: la capacidad antioxidante de los frutos de
Lacmellea standleyi resultó
evidente en los 3 estadios de maduración. Esto otorga al vegetal un futuro promisorio
en la industria farmacológica, sobresaliendo en este campo los frutos en el estadio
verde. Además, los resultados permiten sugerir la aplicación de los frutos en estado
intermedio y maduro en la elaboración de productos alimenticios terminados. La
inocuidad observada en el material vegetal garantizaría su uso en el consumo
humano.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Hait W, Rubin E, Alli E, Goodin S. Tubulin targeting agents. Review. Update on cancer therapeutics. 2007;54(2):1-18.
Zenk M, Juenger M. Review, Evolution and current status of the phytochemistry of nitrogenous compounds. Phytochemistry. 2007;68(22-24):2757-72.
Moura CF, Alves RE, Filgueiras HA, Araújo NC, Almeida AS. Quality of fruits native to latin-america for processing: mangaba (hancornia speciosa Gomes). ISHS Acta Horticulturae. 2002;575(1):549-54.
Van Wyk BE. The potential of South African plants in the development of new food and beverage products. South African J Botany. 2011;77(4):857-68.
Sampaio TS, Nogueira PC. Volatile components of mangaba fruit (Hancornia speciosa Gomes) at three stages of maturity. Food Chemistry. 2006;95(4):606-10.
Mousinho KC, Oliveira CC, Ferreira JR, Carvalho AA, Magalhães H, Bezerra D, et al. Antitumor effect of laticifer proteins of Himatanthus drasticus(Mart.) Plumel-Apocynaceae. J Ethnopharmacol. 2011;137(1):421-6.
Lumpu SN, Lutete GT, Kabangu K, Kanyanga RC, Apers S, Pieters L, et al. Assessment of the antidiarrhoeal properties of the aqueous extract, the 80 % methanol extract and its soluble fractions of the leaves of Alstonia congensis Engl. (Apocynaceae) in Wistar rats. J Ethnopharmacol. 2012;142(3):620-6.
Lasisi AA, Olayiwola MA, Balogun SA, Akinloye OA, Ojo DA. Phytochemical composition, cytotoxicity and in vitro antiplasmodial activity of fractions from Alafia barteri olive (Hook F. Icon)-Apocynaceae. J Saudi Chemical Society. 2012 [cited Oct 2012]. Available at: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1319610312000580
Mendonça PM, Lima MG, Albuquerque LR, Carvalho MG, Queiroz MG. Effects of latex from «Amapazeiro» Parahancornia amapa (Apocynaceae) on blowfly Chrysomya megacephala (Diptera: Calliphoridae) post-embryonic development. Veterinary Parasitology. 2011;178(3-4):379-82.
Marcano D, Hasegawa M. Fitoquímica Orgánica. 2da ed. Publicación del Consejo de Desarrollo Científico y Humanístico de la Universidad Central de Venezuela (Colección Estudios); 2002, p. 588 ISBN 980-00-2066-7.
AOAC. Official Methods of Analysis of AOAC (Association of Official Analytical Chemists) International (18th ed.). AOAC International, Gaithersburg, MD; 2005.
Englberger L, Schierle J, Hofmann P, Lorens A, Albert K, Levendusky A, et al. Carotenoid and vitamin content of Micronesian atoll foods: Pandanus (Pandanus tectorius) and garlic pear (Crataeva speciosa) fruit. J Food Composition Analysis. 2009;22(1):1-8.
Booth SL, Sadowski JA. Determination of phylloquinone in foods by high-performance liquid chromatography. Methods Enzymol. 1997;282(1):446-56.
Peterson JW, Muzzey KL, Haytowitz D, Exler J, Lemar L, Booth SL. Phylloquinone (vitamin K-1) and dihdyrophylloquinone content of fats and oils. J Food Composition Analysis. 2002;79(7):641-6.
Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdicphosphotungstic acid reagents. Am J Enology Viticulture. 1995;16(3):144-58.
Re R, Pellegrinni N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol Med. 1999;26(9-10):1231-7.
Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT Food Science Technology. 1995;28(1):25-30.
Prieto P, Pineda M, Aguilar M. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin E. Analytical Biochemistry. 1999;269(2):337-41.
Mohamed R, Pineda M, Aguilar M. Antioxidant capacity of extracts from wild and crop plants of the Mediterranean region. J Food Science. 2007;72(1):S059-63.
Mcgawa LJ, Steenkamp V, Eloff JN. Evaluation of Athrixia bush tea for cytotoxicity, antioxidant activity, caffeine content and presence of pyrrolizidine alkaloids. J Ethnopharmacol. 2007;110(1):16-22.
Sanchez BS. Caracterización fisicoquímica y funcional de la fibra dietética del fruto del níspero (Eriobotrya japonica) y de la cáscara de mango obo (Mangifera indica L). [Tesis de Ingeniería de Alimentos]. Oaxaca: Instituto de Agroindustrias, Universidad Tecnológica de la Mixteca (UTM); 2005. 76 p.
Salazar DM. Minerales. In: Micronutrientes. Cap. 3. Argentina: El Cid Editor; 2009. p. 22-32.
Gallego SP, Riaño CE, Orozco L. Determinación del comportamiento químico y fisiológico de Feijoa sellowiana en almacenamiento. Rev Cenicafe. 2003;54(1):50-62.
Mbeunkui F, Grace MH, Lila MA. Isolation and structural elucidation of indole alkaloids from Geissospermum vellosii by mass spectrometry. J Chromatography B. 2012;885-886:83-9.
GuoHong-Ping LL, Di YT, Li SF, Cheng YY, Yang W, Li Y, et al. Indole alkaloids from Ervatamia chinensis. Phytochemistry. 2012;74(1):140-5.
Flaubert M, Grace MH, Lategan C, Smith PJ, Raskin I, Lila MA. In vitro antiplasmodial activity of indole alkaloids from the stem bark of Geissospermum vellosii. J Ethnopharmacol. 2012;139(2):471-7.
Tanaka CA, da Silva CC, Ferreira ICP, Machado GMC, Leon LL, de Oliveira AJB. Antileishmanial activity of indole alkaloids from Aspidosperma ramiflorum. Phytomedicine. 2007;14(6):377-80.
Woodson RE. Studies in the Apocynaceae I (a critical study of the Apocynoidea, with special reference to genus Apocynum). Annals Missouri Botanical Garden. 1930;17(1-2):1-83.
Juárez V, Alvarado L, Villaseñor JL. The family Apocynaceae sensu lato in Mexico: diversity and distribution. Rev Mexicana Biodiversidad. 2007;78(2):459-82.
Queiroz C, Ribeiro A, Mendes M, Fialho E, Valente-Mesquita V. Polyphenol oxidase activity, phenolic acid composition and browning in cashew apple (Anacardium occidentale L.) after processing. Food Chemistry. 2011;125(1):128-32.
Rastegar S, Rahemi M, Baghizadeh A, Gholami M. Enzyme activity and biochemical changes of three date palm cultivars with different softening pattern during ripening. Food Chemistry. 2012;134(3):1279-86.
Singh SP, Singh Z, Swinny EE. Climacteric level during fruit ripening inûuences lipid peroxidation and enzymatic and non-enzymatic antioxidative systems in Japanese plums (Prunus salicina Lindell). Postharvest Biology Technology. 2012;65(1):22-32.
Shi Y, Yao S, Jia Z, Lin N, Zheng R. Dietary phytophenols act as scavengers of reducing radicals. Food Chemistry. 2011;124(4):1322-7.
Floegel A, Kimb DO, Chung SJ, Koo SI, Chun OK. Comparison of ABTS/DPPH assays to measure antioxidant capacity in popular antioxidant-rich US foods. J Food Composition Analysis. 2011;24(7):1043-8.
Rodriguez DB. Quantitative analysis, in vitro assessment of bioavailability and antioxidant activity of food carotenoids. A review. J Food Composition Analysis. 2010;23(7):726-40.
Blasa M, Gennari L, Angelino D, Ninfali P. Fruit and vegetables antioxidants in health. In: Watson R, Preedy V, editors. Bioactive foods in promoting health fruits and vegetables. Arizona USA: Elsevier; 2010. p. 37-58.
Loizzo MR, Tundis R, Bonesi M, Menichini F, Mastellone V, Avallone L, et al. Radical scavenging, antioxidant and metal chelating activities of Annona cherimola Mill. (cherimoya) peel and pulp in relation to their total phenolic and total flavonoid contents. J Food Composition Analysis. 2012;25(2):179-84.
Djeridane A, Yousfi M, Nadjemi B, Boutassouna D, Stocker P, Vidal N. Antioxidant activity of some Algerian medicinal plants extracts containing phenolic compounds. Food Chemistry. 2006;97(4):654-60.
Balasundram N, Sundram K, Samman S. Phenolic compounds in plants and agriindustrial by-products: Antioxidant activity, occurrence, and potential uses. Food Chemistry. 2006;99:191-203.
Bandara V, Weinstein SA, White J, Eddleston M. A review of the natural history, toxinology, diagnosis and clinical management of Nerium oleander (common oleander) and Thevetia peruviana (yellow oleander) poisoning. Toxicon. 2010;56(3):273-81.
Pessoa CR, Riet-Correa F, Medeiros RT, Simões SV, Rapini A. Poisoning by Marsdenia hilariana and Marsdenia megalantha (Apocynaceae) in ruminants. Toxicon. 2011;58(6-7):610-3.
Favilla M, Macchia L, Gallo A, Altomare C. Toxicity assessment of metabolites of fungal biocontrol agents using two different (Artemia salina and Daphnia magna) invertebrate bioassays. Food Chemical Toxicology. 2006;44(11):1922-31.
Nunes B, Carvalho F, Guilhermino LM, Stappen GV. Review: Use of the genus Artemia in ecotoxicity testing. Environmental Pollution. 2006;144(2):453-62.
González AM, Presa M, Latorre MG, Lurá MC. Detección de metabolitos fúngicos con actividad tóxica mediante bioensayo sobre Artemia salina. Rev Iberoamericana Micología. 2007;24(1):59-61.
Santos P, Pinto GB, Takahashi JA, Silva LG, Boaventura MA. Biological screening of Annonaceous Brazilian medicinal plants using Artemia salina (Brine Shrimp Test). Phytomedicine. 2003:10(2-3):209-12.
Hosni K, Jemli M, Dziri S, M'rabet Y, Ennigrou A, Sghaier A, et al. Changes in phytochemical, antimicrobial and free radical scavenging activities of the Peruvian pepper tree (Schinus molle L.) as influenced by fruit maturation. Industrial Crops Products. 2011;34(3):1622-8.