2012, Número 3
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Rev Cubana Plant Med 2012; 17 (3)
Efecto de cobre y Paraquat® sobre respuestas asociadas a estrés oxidativo en dos especies relacionadas de tomate
Rueda LA, Pelaez CA, Rojas M, Gil A
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 17
Paginas:
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RESUMEN
Introducción: la capacidad antioxidante presente en las plantas ha despertado gran interés debido al potencial aprovechamiento en la alimentación para la prevención de enfermedades asociadas a estrés oxidativo.
Objetivo: evaluar el efecto de la inducción con CuCl2 y Paraquat® (dicloruro de 1,1'-dimetil-4,4'-bipiridilo) sobre protoplastos y plántulas de las especies relacionadas de tomate, Lycopersicon hirsutum Dunal y Lycopersicon esculentum Mill.
Métodos: la producción de especies reactivas de oxígeno se evaluó mediante citometría de flujo en protoplastos de las 2 especies de tomate, inducidos con CuCl2 y Paraquat® (dicloruro de 1,1'-dimetil-4,4'-bipiridilo). Adicionalmente, sobre las plántulas se evaluó el contenido de polifenoles totales y la capacidad atrapadora de radicales libres.
Resultados: la inducción con Paraquat® durante eventos tempranos mostró un aumento en la producción de especies reactivas de oxígeno en 17,4 veces en protoplastos de Lycopersicon hirsutum y de 12,4 veces en Lycopersicon esculentum con respecto a sus respectivos controles no tratados. La especie Lycopersicon esculentum presentó velocidades de producción significativas de contenido de polifenoles totales y capacidad atrapadora de radicales libres con valores de 1,81 Eq ácido gálico hora-1 y 5,3 % de decoloración del DPPH hora-1, respectivamente. Durante la inducción con Paraquat® se observó una correlación entre contenido de polifenoles totales y capacidad atrapadora de radicales libres cercana a 1 y altamente significativa, en respuesta a los 2 tipos de inducción durante los eventos tempranos.
Conclusiones: los resultados sugieren que la biosíntesis de compuestos fenólicos y la correlación con la capacidad atrapadora de radicales libres, no necesariamente se encuentra relacionada con una actividad antioxidante como un mecanismo de defensa a nivel celular.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Apel K, Hirt H. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction. Ann Rev Plant Biol. 2004;55:373-99.
Langebartels C, Wohlgemuth H, Kschi-eschan S, Grün S, Sandermann H. Oxidative burst and cell death in ozone-exposed plants. Plant Physiol Biochem. 2002;40:567-75.
Díaz S. Estudio de la expresión de la formaldehído deshidrogenasa dependiente de glutation de Arabidopsis thaliana y su función en la patogénesis [Tesis doctoral]. Barcelona: Departamento de Bioquímica y Biología Molecular. Unidad de Ciencias, Universidad Autónoma; 2004.
Apostol I, Heinstein P, Low P. Rapid stimulation of an oxidative burst during elicidation of cultured plant cells. Role in defense and signal transduction. Plant Physiol. 1989;90:106-16.
Van Breusegem F, Vranova E, Dat J, Inze D. The role of active oxygen species in plant signal transduction. Plant Sci. 2001;161:405-14.
Allan A, Fluhr R. Two distinct sources of elicited reactive oxygen species in tobacco epidermal cells. Plant Cell. 1997;9:1559-72.
Bolwell G, Davies D, Gerrish C, Auh C, Murphy T. Comparative biochemistry of the oxidative burst produced by rose and french bean cells reveals two distinct mechanisms. Plant Physiol. 1998;116:1379-85.
Ke S. Effects of copper on the photosynthesis and oxidative metabolism of Amaranthus tricolor seedlings. Agric Sci China. 2007;6:1182-92.
Burda K, Kruk J, Strzalka K, Schmid G. Stimulation of oxygen evolution in photosystem II by copper II ions. Z Naturforsch. 2002;57c:853-7.
Yruela I, Puedo J, Alonso P, Picores R. Photoinhibition of Photosystem II from Higher Plants. Effect of copper inhibition. J Biol Chem. 1996;271:27408-15.
Duke S. Herbicide physiology. In: Weed physiology. Vol. II. Boca Raton, Florida: CRC Press, Inc; 2000.
Karp G. Señalización celular y transducción de señales: comunicación entre células. En: Biología celular y molecular. 4ta edición. México: Ed. Mc Graw Hill; 2006.
Álvarez M, Espinosa F. Jasmonatos y salicilatos: Fitohormonas clave en las reacciones de defensa de las plantas y de comunicación en el ecosistema. En: La ecofisiología vegetal: una ciencias de síntesis. España: Thomson Editores; 2004.
Gould K, Lister C. Flavonoid functions in plants. In: Flavonoids Chemistry, Biochemistry and Applications. Boca Raton, United States of America: CRC Press, Taylor and Francis Group; 2006.
Hammerschmidt R. Antioxidants and the regulation of defense. Physiological and Mol Plant Pathol. 2005;66:211-2
Mlícková K, Luhová L, Lebeda A, Mieslerová B, Pec P. Reactive oxygen species generation and peroxidase activity during Oidium neolycopersici infection on Lycopersicon species. Plant Physiol Biochem. 2004;42:753-61.
Narendranath M, Imre V, Sandor D. Copper toxicity affects Photosystem 11 electron transport at the secondary quinone acceptor, QB1. Plant Physiol. 1989;90:175-9.