medigraphic.com

2012, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Enf Infec Microbiol 2012; 32 (2)


Propiedades migratorias de las células dendríticas y grado de infectividad en infección por Leishmania (L) mexicana en el modelo múrido de tolerancia

Cisneros GLE, Pereira RGJ, Aguin MVJ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 28
Paginas: 46-54
Archivo PDF: 319.65 Kb.


RESUMEN

En el modelo múrido de tolerancia a la infección por Leishmania (L) mexicana, las células dendríticas (CDs) son determinantes en la respuesta, lo cual se puede deber a una alteración en su capacidad migratoria. Esta propiedad puede ser afectada por diversos estímulos (parásitos, quimiocinas o citocinas). En nuestra investigación estudiamos, la migración e infectividad hacia las células dendríticas de ratones BALB/c sanos (CDsS), infectados in vivo (CDsI) e in vitro (CDsP).
Métodología. En migración, fueron aisladas CDsS, CDsI y CDsP con Leishmania (L) mexicana, colocadas en una cámara de quimiotaxis, frente a las citocinas RANTES, TNF, y sobrenadante de parásitos. Para la infectividad intracelular, fueron incubadas previamente promastigotas de Leishmania (L) mexicana con fluorocromo, y luego se evaluó el grado de infección a través de intensidad de fluorescencia por citometría de flujo.
Resultados. El índice de migración (IM) de las CDsS, fue significativamente mayor al compararlo con las CDsI y CDsP. El IM de CDsS y CDsP en presencia de RANTES y TNF, fue significativamente mayor a las CDsI; la migración depende de la concentración de citocinas.
Discusión. Los resultados sugieren, que el microambiente en que se encuentran las CDs al exponerse al estimulo es determinante en el comportamiento migratorio de la célula. En cuanto a la infectividad, en el contacto previo con el parásito disminuye su capacidad de captar el antígeno (Ag) y procesarlo, estableciendo un estado de tolerancia.
Conclusión: La migración de CDs depende del microambiente, la intensidad y tipo de estímulo, y el contacto previo con el antígeno. El grado de infectividad depende del estado tolerógeno previo de las CDs.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Guemonprez P, Valladeau J, Zitvogel L, Théry C , Amigorena S. “Antigen presentation and T cell stimulation by dendritic cells”. Annu Rev Immunol 2002;20: 621-27.

  2. Steinman RM, Cohn ZA. “Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. I. Morphology, quantitation, tissue distribution”. J Exp Med 1973; 137: 1142-62.

  3. Vremec D, Shortman K. “Dendritic cells subtypes in mouse lymphoid organs. Cross-correlation of surface markers, changes with incubation, and differences among thymus, spleen and lymph node”. J Immunol 1997; 159: 565-73.

  4. Vremec D, Zorbas M, Scollay R, Saunders AJ, Ardavin CF, Wu L, Shortman K. “The surface phenotype of dendritic cells purified from mouse thymus and spleen: investigation of the CD8 expression by a subpopulation of dendritic cells”. J Exp Med 1992; 176: 47-58.

  5. Naba K, Inaba N, Romani H, Aya H, Deguchi S, Ikehara S, Muramatsu, Steinman RM. “Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplement with granulocyte/macrophage colony stimulating factor”. J Exp Med 1992; 176: 1693-1702.

  6. Ardavin C. “Origin and differentiation of dendritic cells”. Trends Immunol 2001; 22: 691-700.

  7. Pulendran B, Maraskovsky E, Banchereau J, Maliszewski C. “Modulating the Immune response with dendritic cells and their growth factors”. Trends Immunol 2001.22:41-47.

  8. Geitjenbeek T, Van Vliet S, Engering A, Hart B, Van Kooyk Y. “Self and non self recognition by C-type lectins on dendritic cells”. Ann Rev Immunol 2004; 22: 33-54.

  9. Mommmas A, Mulder A, Jordens C, Out M, Tan P, Cresswell P, Kluin F. “Human epidermal Langerhans cells lack functional mannose receptors and fully developed endosomal/lysosomal compartment for loading of HLA class II molecules”. Eur J Immunol 1999; 29: 571-80.

  10. Engering A, Cella M, Fluitsma D, Brockhaus M, Hoefsmit E, Lanzavechia A, Pieters J. “The mannose receptor functions as a high capacity and broad specificity antigen receptor in human dendritic cells”. Eur J Immunol 1997; 27: 2417-25.

  11. Fanger N, Wardwell K, Shen L, Tedder T, Guyre P. “Type I (CD64) and type II (CD32) Fcγ receptor-mediated phagocytosis by human blood dendritic cells”. J Immunol 1996; 157: 541-48.

  12. Albert M, Pearce S, Silverstein L, Bhardwaj N. “Immature dendritic cells phagocytose apoptotic cells via aβv5 and CD36, and cross-present antigens to cytotoxic T Lymphocytes”. J Exp Med 1998; 188: 1359-68.

  13. Rubartelli A, Poggi A, Zocchi M. “The selective engulfment of apoptotic bodies by dendritic cells is mediated by the aβv3 integrin and requires intracellular and extracellular calcium”. Eur J Immunol 1997; 27: 1893-90.

  14. Dieu M, Vanbervliet B, Vicari A, Bridon J, Oldham E, Ait-Yahia S, Briere F, Zlotnik A, Lebecque S, Caux C. “Selective recruitment of immature and mature dendritic cells by distinct chemokines expressed in different anatomic sites”. J Exp Med 1998; 188: 373-86.

  15. Chan V, Kothakota S, Rohan M, Panganiban-Lustan L, Gardner J, Wacowiicz M, Winter J, and Williams L. “Secondary lymphoid-tissue chemokine (SLC) is chemotactic for mature dendritic cells”. Blood 1999; 93: 3610-16.

  16. Alexander J, Satoskar A, Russeft D. “Leishmania species: models of intracellular parasitism”. J Cell Sci 1999; 112: 2993-3002.

  17. Sacks D, Noben-Trauth N. “The immunology of suscesptibility and resistance to Leismania major in mice”. Nat Rev Inmunol 2002; 2: 845-58.

  18. Reiner S, Lcksley R. “The regulation of immunity to Leishmania major”. Annu Rev Immunol 1995; 13: 151-77.

  19. Caux C, Ait-Yahia S, Chemin K, de Bouteiller O, Dieu-Nosjean M, Homey B, Massacrier C, Vanbervliet B, Zlot-nik A, Vicari A. “Dendritic cell biology and regulation of dendritic cell trafficking by chemokines”. Springer Semin Immunopathol 2000; 22(4): 345-69.

  20. Parslow T, Stites D, Terr A, Imboden J. Inmunología básica y clínica. 10ª ed. Editorial El Manual Moderno, México, 2002: 171-74.

  21. Corado JA, Mora S. Inmunología Actual. 1ª ed. Universidad de Carabobo, Valencia 2002: 141-61.

  22. Bridi M, Vouldoukis I, Mossalayi MD, Debre P, Guillosson JJ, Mazier D, Arock M. “Evidence for direct interaction between mast cells and Leishmania parasites”. Parasite Immunol 1997; 19: 475-83.

  23. Matzinger P. and Guerder S. “Does T-Cell tolerance require a dedicated antigen-presenting cell?” Nature 1989.338:74-76.

  24. Mónica Pernía, “Propiedades Migratorias de las Células Dendríticas en Modelos Múridos de Tolerancia y Resistencia Inmunitaria”. Univenim 2008; 25:2.

  25. Ponce L, Corado J, Díaz N, Tapia F. “La Transferencia adoptiva de células dendríticas modula la inmunogénesis y tolerogénesis en un modelo múrido neonatal del leishmaniasis cutánea”. Kinetop Biol, 2005; 4: 2.

  26. Muraille E, De Trez C, Pajak B, Torrentera FA, De Baetselier P, Leo O, Carlier Y. “Amastigote load and cell surface phenotype of infected cells from lesions and lymph nodes of susceptible and resistant mice infected with Leishmania major”. Infect Immun 2003;71:2704-15.

  27. Sánchez M. Ensayos de proliferación frente antígenos solubles de Leishmania utilizando metodología no radioactiva por citometría de flujo. Protocolos, Laboratorio de Microbiología Celular UCV, 2007; 1-8.

  28. Lyons, AB, “Analyzing cell division in vivo and in vitro using flow citometric measurement of CFSE dye dilutions”. Inmunol 2000; 147-54.




2020     |     www.medigraphic.com