2012, Número 2
Siguiente >>
VacciMonitor 2012; 21 (2)
Estudio in vitro de liberación de proteínas de AFCo1 y sus implicaciones en la inmunización mucosal
Acevedo R, Romeu B, Zayas C, González E, Lastre M, del Campo J, Mullen A, Ferro VA, Pérez O
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 17
Paginas: 1-5
Archivo PDF: 115.89 Kb.
RESUMEN
El cocleato adyuvante Finlay (AFCo1) 1 es derivado de un proteopolisoma de Neisseria meningitidis serogrupo B.
La transformación de los proteoliposomas en AFCo1 potencia la respuesta inmune de los antígenos de Neisseria
cuando se administra por vía intranasal o intragástrica. Se ha demostrado, sin embargo, que la vía intranasal es
más efectiva. Los objetivos de este trabajo fueron evaluar in vitro la liberación de proteínas del AFCo1 en líquido
nasal o gástrico simulado, usando para ello la prueba de microdisolución y apoyar los resultados obtenidos
cuando se administró AFCo1 por vía intranasal o intragástrica en ratones BALB/c. Los resultados demostraron
que la dilución de AFCo1 en líquido gástrico o nasal simulado afecta la distribución de los antígenos de proteína
de Neisseria, ya que estos se liberaron de las estructuras de cocleatos más rápido cuando se utilizó líquido nasal.
Se concluyó que las condiciones que simulan el entorno gástrico afectan la distribución de los antígenos de
proteínas de AFCo1 y este resultado puede explicar parcialmente porqué la administración intranasal es más
efectiva in vivo que la inmunización intragástrica.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Pérez O, Bracho G, Lastre M, Sierra G, Campa C, Mora N, et al., inventors. Method of obtaining cochlear structures, vaccine compositions, adjuvants and intermediates thereof. WIPO, WO/ 2004/047805. Granted by Cuban Office for Intellectual Property OCPI23313. 2008.
Pérez O, Bracho G, Lastre M, Mora N, del Campo J, Gil D, et al. Novel adjuvant based on a proteoliposome-derived cochleate structure containing native lipopolysaccharide as a pathogenassociated molecular pattern. Immunol Cell Biol 2004; 82(6):603-10.
del Campo J, Zayas C, Romeu B, Acevedo R, González E, Bracho G, et al. Mucosal immunization using proteoliposome and cochleate structures from Neisseria meningitidis serogroup B induce mucosal and systemic responses. Methods 2009;49:301–8.
Sunesen VH, Pedersen BL, Kristensen HG, Mullertz A. In vivo-in vitro correlations for a poorly soluble drug, danazol, using the flow-through dissolution method with biorelevant dissolution media. Eur J Pharm Sci 2005;24:305–13.
Dressman JB, Reppas C. In vitro-in vivo correlations for lipophilic, poorly water-soluble drugs. Eur J Pharm Sci 2000;11:S73–S80.
Ranade VV, Hollinger MA. Drug Delivery Systems. 2nd ed. Florida, Boca Raton: CRC Press, Inc; 2004.
Glomme A, Marz J, Dressman JB. Comparison of a Miniaturized Shake-Flask Solubility Method with Automated Potentiometric Acid/Base Titrations and Calculated Solubilities. J Pharm Sci 2005;94(1)1–16.
Wang W, Qu X, Gray AI, Tetley L, Uchegbu IF. Self-Assembly of Cetyl Linear Polyethylenimine To Give Micelles, Vesicles and Dense Nanoparticles. Macromolecules 2004;37:9114–22.
USP 29/NF 24, The United State Pharmacopeia/The National Formulary, United States Pharmacopeia Convention Inc., Rockville, USA: USP; 2006.
Stippler E, Kopp S, Dressman JB. Comparison of US Pharmacopeia simulated intestinal fluid TS (without pancreatin) and phosphate standard buffer pH 6.8, TS of the International Pharmacopoeia with respect to their use in in vitro dissolution testing. Dissolution Technologies 2004;11(2):6-10.
Chadwick S, Kriegel C, Amiji M. Delivery strategies to enhance mucosal vaccination. Expert Opin Biol Ther 2009; 9(4):427-40.
Kawai T, Akira S. The roles of TLRs, RLRs and NLRs in pathogen recognition. International Immunology 2009;21(4):317–37.
Dieli F. Dendritic cells and the handling of antigen. Clin Exp Immunol 2003;134(2):178–80.
Brandtzaeg P. Mucosal Immunity: Induction, Dissemination, and Effector Functions. Scandinavian Journal of Immunology 2009;70:505–15.
Miclea RD, Varma PR, Peng A, Balu-Iyer SV. Development and characterization of lipidic cochleate containing recombinant factor VIII. Biochim Biophys Acta 2007;1768:2890–8.
Nurit J, Margerit J, Terol A, Boudeville P. pH-metric study of the setting reaction of monocalcium phosphate monohydrate/calcium oxide-based cements. J Mater Sci Mater Med 2002;13:1007-14.
Acevedo R, Callicó A, del Campo J, González E, Cedré B, González L, et al. Intranasal administration of proteoliposomederived cochleates from Vibrio cholerae O1 induce mucosal and systemic immune responses in mice. Methods 2009;49:309–15.