2011, Número 4
Resistencia antibiótica de genotipos de cepas de Salmonella spp de cerdos sacrificados en rastros del Estado de México
Talavera RM, Varela GJA, Reyes RNE, Lagunas BS, Valladares CB, Alonso FMU, Velázquez OV
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 25
Paginas: 269-276
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RESUMEN
La aparición de cepas multirresistentes de
Salmonella Typhimurium es un problema mundial, tanto en salud animal como
en salud pública. El objetivo del presente trabajo fue determinar la frecuencia de algunos genes de resistencia (
cmlA/
tetR, PSE-1, TEM, Sip B/C) en cepas de
Salmonella spp aisladas de cerdos en rastros del Estado de México. De las 87
cepas analizadas, 22/87 (25.28%) mostraron resistencia al cloranfenicol (30 μg), 15/87 (17.24%) a la ampicilina (10 μg) y
54/87 (62.07%) fueron resistentes al sulfametoxazol (60 μg). La relación fenotípica y genotípica de las 87 cepas analizadas
fue: de las 22 cepas que presentaron resistencia fenotípica al cloranfenicol, sólo 14/22 (63.63%) expresaron el gen
de resistencia cmlA/tetR, y de las 65 cepas que manifestaron sensibilidad al cloranfenicol, 36/65 (55.38%) expresaron el
gen de resistencia
cmlA/tetR. De las 15 cepas que expresaron resistencia a la ampicilina, sólo 2/15 (13.33%) mostraron
el gen
PSE-1, y 7/15 (46.66%) presentaron el gen
TEM, ambos genes confieren resistencia genotípica a la ampicilina.
De las 72 cepas que manifestaron sensibilidad a la ampicilina, 11 (15.27%) mostraron el gen
TEM, el cual da resistencia
a la ampicilina. De las 87 cepas de
Salmonella sólo 2/87 (2.28%) expresaron el fagotipo DT104. Las cepas que son
portadoras de genes de resistencia, pero no la manifiestan fenotípicamente, no han sido expuestas a una selección por
competencia, por lo tanto, no expresan la resistencia fenotípica, pero cuentan con el mecanismo necesario para expresarla.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
THRELFALL JE. Epidemic Salmonella Typhimurium DT104- a truly international multiresistant clone. J Antimicrob Chemother 2000; 46: 7-10.
CHIU CH, SU LH, CHU CH, WANG MH, YEH CM, WELLI FX et al. Detection of Multidru-Resistant Salmonella enterica Serovar Typhimurium Phage Type DT102, DT104, and U302 by Multiplex PCR. J Clin Microbiol 2006; 44: 2354-2358.
BOLTON FL, KELLEY CL, LEE DM, FEDORKA JP, MAURER JJ. Detection of multidrug-resistant Salmonella enterica Serotype Typhimurium DT104 based on a gene which confers cross-resistance to florfenicol and chloramphenicol. J Clin Microbiol 1999; 37: 1348-1351.
RABATSKY-Ehr T, WHICHARD J, ROSSITER S, HOLLAND B, STAMEY K, HEADRICK ML et al. Multidrug – resistant strains of Salmonella enterica Typhimurium, United States, 1997-1998. Emerg Infect Dis 2004; 10: 795-801.
HELMS M, ETHELBERG S, MOLBAK K. International Salmonella Typhimurium DT104 Infections, 1992-2001. Emerg Infect Dis 2005; 11: 859-867.
RIBOT EM, WIERZBA RK, ÂNGULO FJ, BARRETT TJ. Salmonella enterica serotype Typhimurium DT104 isolated from humans, United States 1985,1990, and 1995. Emerg Infect Dis 2002; 8:387-391.
YOKOYAMA E, MARUYAMA S, KABEYA H, HARA S, SATA S, KUROKI T et al. Prevalence and Genetic Properties of Salmonella enterica Serovar Typhimurium Definitive phage Type 104 Isolates from Rattus norvegicus and Rattus rattus House Rats in Yokohama City, Japan. Appl Envi Microbiol 2007; 73: 2624-2630.
CARLSON SA, BOLTON LF, BRIGGS CE, HURD HS, SHARMA V, FEDORKA PJ et al. Detection of multiresistant Salmonella Typhimurium DT104 using multiplex and fluorogenic PCR. Mol Cell Probes 1999; 13: 213-222
ALVAREZ J, SOTA M, VIVANCO AB, PERALES P, CISTERNA R, REMENTERIA A et al. Development of a Multiplex PCR Technique for Detection and Epidemiological Typing of Salmonella in Human Clinical Simples. J Clin Microbiol 2004; 42: 1734-1738.
LEE KE, LEE Y. Isolation of Multidrug-Resistant Salmonella Typhimurium DT104 from Swine in Korea. J Microbiol 2007; 45:590-592.
NCCLS. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing; Nineteenth Informational Supplement. 10 ed. Vol. 29, No. 3. Approved standard M100-S19. Wayne, PA: National Committee for Clinical Laboratory Standards, 2009.
CHIU HC, OU TJ. Rapid Identification of Salmonella serovars in Feces by Specific Detection of Virulence Genes, invA and spvC, by an Enrichment Broth Culture-Multiplex PCR Combination Assay. J Clin Microbiol 1996; 34: 2619-2622.
YANG SJ, PARK KY, SEOK KS, YOO HS, NOH KM, KIM SH et al. Multidrug- resistant Salmonella Typhimurium and Salmonella enteritidis identified by multiplex PCR from animals. Vet Sci 2001; 2: 181-188.
DANIEL WW. Bioestadística (bases para el análisis de las ciencias de la salud). 4ª ed. México DF: Limusa Wiley, 2008.
HIRD D, HERNÁNDEZ AJ, WILLIAMS JJ, RODRÍGUEZ BJC, SEGURA CJC. Medidas de asociación epidemiológica. Memorias del V Curso Internacional Teórico-Práctico en Epidemiología; 2000 noviembre 27 – diciembre 1; Mérida (Yucatán) México. Mérida (Yucatán) México: Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Autónoma de Yucatán, 2000: 19-27.
YU CY, CHOU JS, YEH MC, CHAO RC, HUANG CK, CHANG FY et al. Prevalence and Characterization of Multidrug-Resistant (Type ACSSu) Salmonella enterica Serovar Typhimurium Strains in Isolates from Four Gosling Farms and a Hatchery Farm. J Clin Microbiol 2008; 46: 522-526.
GRAZIANI C, BUSANI L, DIONISI A, LUCARELLI C, OWCZAREK S, RICCI A et al. Antimicrobial resistance in Salmonella enterica serovar Typhimurium from human and animal sources in Italy. Vet Microbiol 2008; 128: 414-418.
FRAZAN A, FRIENDSHIP RM, POPPE C, MARTIN L, DEWEY CE, FUNK J. Molecular epidemiology and antimicrobial resistance of Salmonella Typhimurium DT104 on Ontario swine farms. Can J Vet Res 2008; 72:188-194.
MIKO A, PRIES K, SCHROETER A, HELMUTH R. Molecular mechanisms of resistance in multidrug-resistant serovars of Salmonella enterica isolated from foods in Germany. J Antimicrob Chemother 2005; 56: 1025-1033.
RANDALL LP, COOLES SW, OSBORN MK, PIDDOCK LJV, WOODWARD MJ. Antibiotic resistance genes, integrons and multiple antibiotic resistances in thirty-five serotypes of Salmonella enterica isolated from humans and animals in the UK. J Antimicrob Chemother 2004; 53: 208-216.
BRIGGS CE, FRATAMICO PM. Molecular Characterization of Antibiotic Resistance Gene Cluster of Salmonella Typhimurium DT104. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43:846-849.
WEILL FX, GUESNIER F, GUIBERT V, TIMINOUUNI M, DEMARTIN M, POLOMACK L et al. Multidrug resistance in Salmonella enterica serotype Typhimurium from humans in France (1993-2003). J Clin Microbiol 2006; 44: 700-708.
KHAN AA, NAWAZ SM, KHAN AS, CERNINGLIA EC. Detection of multidrug-resistant Salmonella Typhimurium DT104 by multiplex polymerase chain reaction. FEMS Microbiol Letters 2000; 182: 355-360
WALSH C, DUFFY G, NALLY P, O’MAHONY R, MCDOWELL DA, FANNING S. Transfer of ampicillin resistance for Salmonella Typhimurium DT104 to Escherichia coli K12 in food. Lett Appl Microbiol 2007; 46: 210-215.
TALAVERA RM, VAZQUEZ CHJC, FLORES BR, ROBLES GF, LAGUNAS BS, ALONSO FMU. GyrA gene mutations and fluoroquinolone resistance in Salmonella isolates from pigs in central Mexico. Vet Rec 2007; 160: 630-632.