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Federación Mexicana de Ginecología y Obstetricia, A.C.

2010, Número 12

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Ginecol Obstet Mex 2010; 78 (12)


Detección del virus del papiloma humano tipos 16 y 18 en muestras de semen de pacientes de un programa de reproducción asistida

Flores-Sánchez I, Gutiérrez-Salinas J, Enriquez-Alvarado E, Hernández-Rodríguez S, Ramos-Barragán C, Salamanca-Ceciliano A, Cruz-Tovar L, Suástegui-Domínguez S

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 32
Paginas: 645-651
Archivo PDF: 361.09 Kb.


RESUMEN

Antecedentes: la infección por el virus del papiloma humano es un problema mundial de salud asociado con el cáncer cervicouterino, sobre todo con la infección de cepas de alto riesgo (tipos 16 y 18). La infección genital por este tipo de virus suele pasar inadvertida por el hombre, que puede infectar a su pareja sexual.
Objetivo: detectar VPH-16 y VPH-18 en el semen de pacientes de un protocolo de reproducción asistida.
Material y método: estudio retrospectivo efectuado con base en el reporte de muestras de semen de 149 pacientes de un protocolo de reproducción asistida de nuestra institución. Las muestras se analizaron siguiendo los criterios de la Organización Mundial de la Salud para detectar VPH-16 y VPH-18 con PCR en tiempo real y equipos comerciales. También se analizaron con técnicas histológicas convencionales, para evaluar la forma de los espermatozoides y la cantidad de leucocitos.
Resultados: se analizaron 149 muestras de semen de pacientes con edad promedio de 37.27 años (límites 22 y 56 años). El 56.18% tuvo oligozoospermia y 59.73% resultaron positivos para VPH-16 (29.56%), VPH-18 (16.11%) o ambos (14.09%). La infección con VPH-16 fue más frecuente en los pacientes con oligozoospermia y normozoospérmicos. Estos últimos tuvieron menor cantidad de espermatozoides anormales y de leucocitos en comparación con los oligozoospérmicos.
Conclusiones: existe un porcentaje importante de hombres asintomáticos con positividad seminal para papilomavirus de alto riesgo para su pareja sexual por lo que representan un problema de salud pública que debe atenderse.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Lazcano PE, Alonso P, Ruiz MJ, Hernádez MA. Recommendations for cervical cancer screening programs in develops countries. The need for equity and technological development. Salud Publica Mex 2003;45 (supl 3):S388-398.

  2. Bosch FX, Manos MM, Muñoz N, Sherman M, et al. Prevalence of human papilloma virus in cervical cancer: a worldwide perspective. J Natl Can Inst 1995;87(11):796-801.

  3. Walboomers JM, Jacobs MV, Manos MM, Bosch FX, et al. Human papillomavirus is a necessary cause of invasive cervical cancer worldwide. J Pathol 1999;189(1):12-19.

  4. Clifford GM, Smith JS, Plummer M, Munoz N, Franceschi S. Human papillomavirus types in invasive cervical cancer worldwide: a metaanalysis. Br J Cancer 2003;88:63-73.

  5. Muñoz N, Bosch FX, de Sanjose S, Herrero R, et al. Epidemiologic classification of human papillomavirus types associated with cervical cancer. N Engl J Med 2003;348:518-527.

  6. Ho GY, Bierman R, Beardsley L, et al. Natural history of cervicovaginal papillomavirus in young women. N Engl J Med 1998;338:423-428.

  7. Hompling ER. Cáncer de cérvix invasor. En: Piver MS, ed. Diagnostico y Tratamiento en Oncología Ginecológica. 2a ed. Madrid: Marban, 2000;p:111-140.

  8. Murthy N S, Mathew A. Risk factors for pre-cancerous lesions of the cervix. Eur J Cancer Prev 2000;9(1):5-14.

  9. Disaia PJ, Creasman TW. Preinvasive and invasive cervical cancer. In: Disaia PJ, Creasman TW, editors. Clinical gynecologic oncology. 6th ed. St Louis: Mosby, 2002.

  10. Lazcano-Ponce E, Herrero R, Muñoz N, Hernández-Ávila M, Salmerón J, Leyva A, et al. High prevalence of human papillomavirus infection in Mexican male. Sex Tansm Dis 2001;28:277-288.

  11. Gazzaniga P, Vercillo R, Gradilone A, Silvestri I, et al. Prevalence of papillomavirus, Epstein-Barr virus, cytomegalovirus, and herpes simplex virus type 2 in urinary bladder cancer. J Med Virol 1998;55:262-267.

  12. Picconi MA, Eiján AM, Distéfano AL, Pueyo S, et al. Human papillomavirus (HPV) DNA in penile carcinomas in Argentina: analysis of primary tumors and lymph nodes. J Med Virol 2000;61:65-69.

  13. Baldwin SB, Wallace DR, Papenfuss MR, Abrahamsen M, et al. Human papillomavirus in men attending a sexually transmitted disease clinic. J Infec Dis 2003;187:1064-1070.

  14. World Health Organization. WHO. Laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interactions. Cambridge: Cambridge University Press, 1999.

  15. Manual for DNA-isolation kit, Roche-Applied-Science, USA.

  16. Fontaine J, Gravit P, Duh LM. High level of correlation of human papillomavirus-16 DNA viral load estimates generated by three real-time PCR assays applied on genital specimens. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2005;14:200-2207.

  17. Detection of human papillomavirus 16-type. Primer Design manual. Primer Design LTD, USA.

  18. Detection of human papillomavirus 18-type. Primer Design manual. Primer Design LTD, USA.

  19. Erenpreisa J, Freivalds T, Slaidina M. Toluidine blue test for sperm DNA integrity and elaboration of image cytometry algorithm. Cytometry 2003;52:19-27.

  20. Keel B, Webster B. The standard semen analysis. En: Webster E (ed.) CRC. Handbook of the Laboratory Diagnosis and Treatment of Infertility. Boca Ratón Fl, CRC Press, 1990;p:27- 69.

  21. Barratt CLR, Matson PL, Holt W. British Andrology Society guidelines for the screening of semen donors for donor insemination. Hum Rep 1993;8:1521-1523.

  22. Sánchez GR, Villegas JG, Peña P, Miska W, Schill WB. Determinación de células peroxidasa positivas en líquido seminal. Es un parámetro confiable para el diagnóstico de infección genital asintomática? Rev Med Chile 2003;131:53-62.

  23. Palefsky JM. HPV infection in men. Dis Markers 2007;23:261- 272.

  24. Sen S, Sharma A, Panda A. Immunohistochemical localization of human papilloma virus in conjunctival neoplasias: a retrospective study. Indian J Ophthalmol 2007;55:361-363.

  25. Shah KV, Westra WH. Genital HPVs in the aerodigestive tract: etiologic association with a subset of oropharyngeal/tonsillar cancers and with recurrent respiratory papillomatosis. Dis Markers 2007;23:235-245.

  26. Nielson CM, Flores R, Harris RB, Abrahamsen M, et al. Human papillomavirus prevalence and type distribution in male anogenital sites and semen. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2007;16:1107-1114.

  27. Svec A, Mikyskov AI, Hes O, Tachezy R. Human papillomavirus infection of the epididymis and ductus deferens: an evaluation by nested polymerase chain reaction. Arch Pathol Lab Med 2003;127:1471-1474.

  28. Martorell M, Gil-Salom M, Perez-Valles A, Garcia JA, et al. Presence of human papillomavirus DNA in testicular biopsies from nonobstructive azoospermic men. Arch Pathol Lab Med 2005;129:1132-1136.

  29. Perez-Andino J, Buck CB, Ribbeck K. Adsorption of Human Papillomavirus 16 to Live Human Sperm. PLoS ONE 2009;4(6): e5847.

  30. Foresta C, Garolla A, Zuccarello D, Pizzol D, et al. Human papillomavirus found in sperm head of young adult males affects the progressive motility. Fertil Steril 2010;93:802-806.

  31. Foresta C, Pizzol D, Moretti A, Barzon L, et al. Clinical and prognostic significance of human papillomavirus DNA in the sperm or exfoliated cells of infertile patients and subjects with risk factors. Fertil Steril 2010;94:1723-1727.

  32. Foresta C, Ferlin A, Bertoldo A, Patassini C, et al. Human papillomavirus in the sperm cryobank: an emergin problem? J Std AIDS 2004;15:740-743.




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