2008, Número 2
Siguiente >>
Rev Med UV 2008; 8 (2)
Esterilización por inmersión. Estudio comparativo entre glutaraldehído al 2%, agua electrolizada superoxidada con pH neutro y solución electrolizada por selectividad iónica con pH neutro
Nachón GFJ, Díaz TJ, Rivas EV, González HJS, Nachón GMG, García GF, Santiago GJ
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 5-10
Archivo PDF: 315.49 Kb.
RESUMEN
Las mejoras tecnológicas en los sistemas ópticos operatorios y de diagnóstico, así como en el instrumental quirúrgico, requieren de utilizar materiales como plásticos y fi bra óptica en su fabricación. Muchos de estos materiales no resisten la esterilización por vapor a presión, por lo que se requiere de métodos alternativos que sean rápidos, de bajo costo y altamente efectivos, características que se han logrado con los métodos de esterilización por inmersión en sustancias químicas. En este trabajo se pretende evaluar y comparar la actividad esterilizante
in vitro del Glutaraldehído al 2% (GA 2%), del Agua Electrolizada Superoxidada (AES) y de la Solución Esterilizante Electrolizada por Selectividad Iónica (SESI), a través de la eliminación de microorganismos del instrumental quirúrgico contaminado con gérmenes patógenos no atenuados obtenidos de ambientes hospitalarios. Se prepararon soluciones contaminantes con
E. coli ,
P. aeruginosa,
S. aureus resistente a meticilina y
C. albicans en concentraciones de 1 x 10
8 UFC por cc en solución salina estéril, en las que se introdujo el instrumental quirúrgico durante 15 minutos y posteriormente fue expuesto a cada una de las soluciones esterilizantes por tres diferentes tiempos 7.5, 10 y 15 minutos. Después de 15 minutos de inmersión, todos los cultivos realizados al instrumental tratado con GA al 2% y SESI resultaron negativos a diferencia de 4 cultivos positivos en el instrumental tratado con AES (p ‹ 0.05). Por lo anterior podemos decir que los instrumentos tratados con GA al 2% y
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Ruddy M. Kibbler C.C. Endoscopic decontaminaon: an audit and praccal review. J Hosp Infec 2002; 50: 261-68.
Choen: Infecous Disease, 2nd ed.,2004 Elsevier p940-943.
Mendell: Principles and Pracce of Infecous Disease, 5th ed. 2000, Churchill Livingstone p. 2995- 2997.
Rutala W.A, Webe D.J, New Disinfecon and Sterilizaon Method. Emerg Infec Dis 2001;7: 348- 53.
Ayife G. et al. Decontaminaon of minimally invasive surgical endoscopes and accessories. J Hosp Infect 2000; 45: 263-277.
Séller I.V.D, Williams C.B, Jefries D.J, et al. Clearing and disinfecon of equipment for gastrointesnal flexible endoscopy: interim recommendaon of Working party of the Brish Society of Gastroenterology. Gut 1988; 29:1134-1151.
Cowan R.E, Manning A.P, Ayliffe G.A.J, et al. Aldehyde disinfectants and health in endoscopy units. Gut 1993; 34: 1641-1645.
BSG Endoscopy Commiee Working Party, Cleaning and disinfecon of equipment for gastrointesnal endoscopy. Report of working party of the Brish Society of Gastroenterology Endoscopy Commiee. Gut 1998; 42: 585-593.
Holton J, Nye P, McDonald V. Efficacy of selected disinfectants against mycobacterial and cryptosporidia. J Hosp. Infect 1994; 27: 105-115.
Health and Safety at Work HSE publicaons EH40/98.
American Society for Gastrointesnal Endoscopy. Establishment of Gastrointesnal Endoscopy Areas. Guidelines for Clinical Applicaon. Gastrointest Endosc 1999 ; 50:910-912.
29 CFR Part 1910, 1030, Occupaonal Exposure to Bloodbone Pathogens: Final Rule. Federal Register, December 6, 1991.
Rutala W.A. Infecon control: The role of disinfecon and sterilizaon. J Hosp Infect 1999; 43 Suppl: S43-55.
Joint Working Group of the Hospital Infecon Society and Public Health Laboratory Service. Rinse water for health labile endoscopy equipment. J Hops Infect 2002; 51: 7-16
Kumon K. What is functional water?. Artif Organs 1972; 21:2-4.
Morita C, Sano K, Morimatsu S, Kiura H, Goto T, et all. Disinfecon potential of electrolyzed solution containing sodium chloride at low concentrations. J Virol Methods 2000; 85: 163-174.
Tanaka N, FujisawaT, Daimon T, Fujiwara M, Yamamoto M, Abe T. The cleaning and disinfecting of hemodislysis equipment using electrolyzed strong acid aqueous solution. Arttf Organs. 1999; 23:303-309.
Sharma RR., Demirci A. Treatment of Escherichia coli O157:H7 inoculated alfalfa seeds and sprouts with electrolyzed oxidizing water. Int J Food Microbiol. 2003; 86: 231-237.
Venkitanarayanan KS, Ezeike GO, Hung YC Doyle MP. Inactivation of Escherichia coli o157:H7 and Listeria monocytogenes on plastic kitchen cuting boards by electrolyzed oxidizing water. J Food Prot 1999; 62:857-860.
Nakajima N, Nakano T, Harada F, Taniguchi H, Yokohama I. et all. Evaluation of desinfective potencial? of reactivated free chlorine in pooled tap water by electrolysis. J Microbiological Methods 2004; 57: 163-173.
Selkon JB, Babb JR, Morris R. Evaluation of the antimicrobial activity of a new super-oxide water, Sterilox, for the disinfection of endoscopies J Hops Infect 1999; 41: 59-70.
Ficha técnica . Oculus Technologies of Mexico S.A. de C.V. 2003.
Datos proporcionados por ProdInnv S.A de C.V. Empresa fabricante de la Solución Esterilizante Electrolizada por Selectividad Iónica.
Clinical Microbiology Procedures Handbook. H.D. Isenberg ed. American Society for Microbiology, Washington D.C, 1992.
Ojeda VGJ, Padilla-Mtz C, Rivera-De la Vega A. Manejo de Heridas complicadas de espesor parcial con solución neutra Supéroxidada. Cir Gen 2005; 27(4) S155.
Nachón F. Díaz J. Nachón MG., Tolerancia Peritoneal a la Solución de Alta Selectividad Ionica con pH neutro en ratas macho Wistar. Revista Medica de la Universidad Veracruzana 2005; 5(2): 15-19.