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2008, Número 1

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Rev Med UV 2008; 8 (1)


La avispa amarilla (Polistes mexicana): nuevo vector de actinomicetos en micetoma

Martínez RA, Cruz LH, Aburto SMA, Isauro GL, Camacho MA, Gómez FM

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 19-24
Archivo PDF: 751.98 Kb.


RESUMEN

Se presenta el caso de una mujer de 47 años de edad con una dermatosis característica de micetoma en la región dorsal izquierda del tronco. En la biopsia de piel se demostró la formación de granos característicos en tinción de PAS y Grocott. En el cultivo en medio de Sabouraud se reportó crecimiento de colonias de Nocardia, por lo que se indica tratamiento a la paciente a base de sulfas, amoxicilina y cefalosporinas. La paciente informó haber recibido una picadura de una avispa amarilla (Polistes mexicana) en el dorso del lado izquierdo a nivel de D7 y haber desarrollado las lesiones fistulosas en forma centrífuga a la picadura de la avispa. El objetivo del presente estudio es demostrar si la avispa amarilla (Polistes mexicana) es un posible vector de actinomicetos en micetoma. Para realizar los estudios, se inició la recolección de avispas en el sitio donde la paciente fue agredida; se incubaron a 37°C en medio agar Sabouraud, y se detectó crecimiento microbiano característico de actinomicetos; y al hacer tinciones de Gram y Ziehl Neelsen, se encontraron hifas y cocobacilos gram positivos y ácido-alcohol resistentes. Al purificar la cepa y realizar la prueba de hidrólisis de caseína, resultó positiva a Nocardia brasiliensis. Así, nuestros resultados indican que la avispa amarilla (Polistes mexicana) podría ser la responsable de inocular los actinomicetos con su picadura y provocar el desarrollo de micetoma, y por lo tanto es un nuevo vector de actinomicetos en micetoma.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Vera L, Salinas M, Welsh O. Isolation and Purification of Two Immunodominant Antigensfrom Nocardia brasiliensis. J Clin Microbiol. 1992; 1183-8.

  2. Rodríguez M, Alvarado A, Del Carmen M, Ramos A. Micetoma de inoculación múltiple por Nocardia brasiliensis. Reporte de un caso. Rev Cent Dermatol Pascua. 2002; 11, (3): 126-30.

  3. Salinas M, Torres E, Ramos A. Immune Response toNocardia brasiliensis Antigens in an Experimental Model of Actinomycetoma in BALB/c mice. Infect Immun. 1999; 67 (5): 2428–32.

  4. Lupi O, Tyring S, McGinnis M. Tropical dermatology: Fungal tropical diseases. J Am Acad Dermatol. 2005; 53 (6): 931-51.

  5. Mendez L, Mondragón R, Manzano P. Inmunoglobulinas en pacientes con actinomicetoma por Nocardia brasiliensis, Rev Argent Microbiol. 2004; 36: 174-8.

  6. Arenas R. Dermatología Atlas Diagnóstico y tratamiento. 2ª Ed. Mc Graw Hill Interamericana. 2000. México. 1- 642.

  7. Saúl A. Lecciones de Dermatología. 14 Ed. Méndez Editores. 2000. México. 1 - 783.

  8. Maraki S, Chochlidakis S, Nioti E, Tselentis Y. Primary lymphocutaneous nocardiosis in an immunocompetent patient Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2004; 3 (24): 1-4

  9. Salinas M, Castro M, Sepulveda J. Monoclonal antibodies to P24 and P61 immunodominant antigens from Nocardia brasiliensis. ClinDiagnostic Lab Immunol. 1997; 4 (2): 133–7.

  10. Isik K, Chun J, Chil Y, Goodfellow M. Nocardia uniformis nom. rev. Int J Syst Bacteriol. 1999; 49: 227–30.

  11. IşiIk K, Kariptaş E. Identification and evaluation ofclinically significant Nocardia brasiliensis. Turk J Biol. 2001; 25: 103-11.

  12. Palma A, Castrillón L, Padilla C, Reyes F. Caracterización histoquímica de micetomas por Actinomadura madurae, nocardia brasiliensis y Madurella mycetomatis Dermatología Rev Mex. 2005; 49 (2): 51-8.

  13. A. Saubolle M., Sussland D. Nocardiosis: Review of clinical and laboratory experience. J Clin Microbiol. 2003; 41 (10): 4497–501.

  14. Matulionyte R, Rohner P, Uçkay I, Lew D, Garbino J, Secular trends of nocardia infection over 15 years in a tertiary care hospital. J Clin Pathol. 2004; 57: 807-12.

  15. Gómez-Flores A, Welsh O, Said-Fernandez S, et al. In Vitro and In Vivo activities of antimicrobials against Nocardia brasiliensis. Antimicrob Agents and Chemother. 2004; 48 (3): 832-7.

  16. Salinas M, Welsh O, Casillas S. Enzyme-Linked Immunosorbent assay for serological diagnosis of Nocardia brasiliensis and Clinical Correlation with Mycetoma Infections. J Clin Microbiol. 1993; 31 (11): 2901-6.

  17. Salinas M. Anticuerpos anti-Nocardia brasiliensis en pacientes con actinomicetoma y su utilidad clínica, Gac Med Mex. 2001; 137 (1): 1- 8.

  18. Vera L, Johnson W, Welsh O. Distribution of a Nocardia brasiliensis Catalase Gene Fragment in Members of the Genera Nocardia, Gordona, and Rhodococcus. J Clin Microbiol. 1999; 37 (6): 1971–6.

  19. Salinas M, Perz I. Humoral immunity through immunoglobulin M protects mice from an experimental actinomycetoma infection by Nocardia brasiliensis. Infect Immun. 2004; 72 (10): 5597–604.

  20. Conde C, Mancilla R, Ortiz L. Immunoglobulin and complement in tissues of mice infected with Nocardia brasiliensis. Infect Immun 1983; 40 (3): 1218-22.

  21. Conde C, Melendra E, Fresan M, Ortiz L. Nocardia brasiliensis: Mycetoma induction and growth cycle. Infect Immun. 1982; 38 (3): 1291-5.




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