Aké-López JR, Quintal-Franco JA, Segura-Correa JC

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 34
Paginas: 100-108
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RESUMEN

Introducción. El porcentaje de gestación después de la transferencia embrionaria puede ser afectado por la manipulación que se realiza con los embriones, lo cual retrasa su desarrollo y afecta el adecuado reconocimiento de la gestación. Una alternativa para mejorar la tasa de gestación es alargar la vida del cuerpo lúteo a través de fármacos que impidan la secreción de la prostaglandina F2a.
Objetivo. Evaluar el efecto del Flunixin Meglumine (FM) en el porcentaje de gestación, duración de la fase lútea y prolificidad de ovejas receptoras de embriones.
Material y Métodos. Las ovejas receptoras recibieron dos embriones y se asignaron al azar a uno de dos grupos: FM-2: Ovejas (n = 10) tratadas con 2.2 mg/Kg de peso vivo de FM dos veces al día (06:00 y 18:00 hrs); testigo: ovejas (n = 10) tratadas con 1.5 ml de agua estéril una vez al día (06:00 hrs). Ambos grupos se trataron durante ocho días, a partir del quinto día postransferencia. Del día 15 al 19 se tomaron muestras de sangre para determinar la concentración de progesterona.
Resultados. El porcentaje de gestación del grupo testigo fue 50% y de las ovejas del grupo FM-2 40% (p›0.05). La prolificidad fue similar (p›0.05) entre el grupo testigo y el grupo FM-2 (1.4 vs 1.25 corderos). La fase lútea fue más larga para el grupo FM-2 que para el grupo testigo (18.1 vs 16.2 días; p‹0.05)
Conclusión. La aplicación del FM dos veces al día, no modificó la tasa de gestación y prolificidad de las ovejas receptoras, a pesar de que retrasó la luteolisis.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Putney JD, Thatcher WW, Drost M, Wrigh JM, DeLorenzo MA. Influence of environmental temperature on reproductive performance of bovine embryo donors and recipients in the southwest region of the United States. Theriogenology 1986; 30:905-22.

2. Sreenan MJ, Diskin GM. Early embryonic mortality in the cow: its relationship with progesterone concentration. Vet Rec 1983; 28:517-20.

3. Mutiga RE. Increasing reproductive rates in tropical sheep by means of embryo transfer. Theriogenology 1991; 36:681-8.

4. Thatcher WW, Bazer FW, Sharp DC, Roberts RM. Interrelations between uterus and conceptus to maintain corpus luteum function during early pregnancy, Sheep, Cattle, pig and horses. J Anim Sci 1986; 67 (suppl. 2):47-61.

5. Garverick HA, Zollers WG, Smith MF. Mechanisms associated with corpus luteum lifespan in animals having normal or subnormal luteal function. Anim Reprod Sci 1992; 28:111-24.

6. Thatcher WW, Staples CR, Danet-Desnoyers G, Oldick B, Schmitt EP. Embryo Health and mortality in sheep and cattle. J Anim Sci 1994; 72 (suppl.): 16-30.

7. Roberts RM, Schalue-Francis T. Maternal recognition of pregnancy and embryonic loss. Theriogenology 1990; 33:175-83.

8. Al-guboruy HK, Abdennebi L. Evidence that the conceptus contributes to the inhibition of follicular grow in the ewe. Anim Reprod Sci 1996; 45:71-80.

9. Putney JD, Drost M, Thatcher WW. Embryonic development in superovulated dairy cattle exposed to elevated between days 1 to 7 post insemination. Theriogenology 1988; 30:195-209.

10. Hunter MG, Ayad VJ, Gilbert CL, Shouthee JA, Wathes DC. Role of prostaglandin F2 alpha and oxytocin in the regression of GnRH-induced abnormal corpora lutea in anoestrous ewes. J Reprod Fertil 1989; 85:551-61.

11. Wilmut I, Sales DI, Ashworth CJ. Maternal and embryonic factors associated with prenatal loss in mammals. J Reprod Fertil 1980; 76:851-64

12. Pope WF. Uterine asynchrony: A cause of embryonic loss. Biol Reprod 1988; 39:999-1003

13. Hardee GE, Smith JA, Harris SJ. Pharmacokinetics of Flunixin Meglumine in the cow. Res Vet Sci 1985; 39:110-12.

14. Odensvick K, Cort N, Basu S. Effect of Flunixin Meglumine on prostaglandin F2alpha synthesis and metabolism. J Vet Pharmacol Therapeut 1989; 12:307-11.

15. Aiumlamai S, Fredriksson G, Kindahl H, Uggla A, Edqvisy LE. The effect of Toxoplasma gondii infection in Flunixin Meglumine treated pregnant ewes as monitored by plasma levels of 15-Ketodihidroprostaglandin F2 alpha, progesterone, oestrone sulphate and ultrasound scanning. J Vet Med 1990; 37:23-34.

16. García E. Modificaciones al sistema de Clasificación Climática de Koppen. Instituto de Geografía. México: Universidad Autónoma de México; 1973. p. 246.

17. INEGI. Monografía del estado de Yucatán. Mérida: Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Informática y Gobierno del Estado de Yucatán, Secretaria de Planeación; 1993.

18. Russel A. Body condition scoring of sheep. In practice 1984; May:91-93

19. Ake LR, Alfaro GM, Herrera CJ. Técnica de ovulación múltiple y transferencia de embriones. En: Manual del curso de teórico-práctico de ovulación múltiple y trasplante de embriones en ovinos. Mocochá: UADY-FMVZ, INIFAPC. E.; 1988. p. 107-32.

20. Lindner MG, Wright WR. Bovine embryo morphology and evaluation. Theriogenology 1983; 20:407-16.

21. SAS Institute Inc. SAS/STAT User's Guide. Release 6.03 Edition. SAS Institute 1990. Cary, NC, USA.

22. Aké LR, Segura CJ., Quintal FJ, Heredia AM. Duración del ciclo estral y fase lútea de ovejas Pelibuey tratadas con Flunixin Meglumine”. Memorias de la XXXV Reunión Nacional de Investigación Pecuaria Yucatán 99. Mérida, Yucatán, Octubre 29-22, 1999. p. 19

23. Aké LR, Segura CJ, Quintal FJ. Efecto del Flunixin Meglumine en la fertilidad, duración del ciclo estral y fase lútea de ovejas Pelibuey bajo condiciones de trópico. Memorias de la XXXV Reunión Nacional de Investigación Pecuaria Yucatán 99. Mérida, Yucatán, Octubre 29-22, 1999. p. 20.

24. Odensvick K, Aiumlamai S, Kindahl H. Effect of Flunixin Meglumine on prostaglandin F2 metabolite levels in the heifer. Acta Vet Scand 1991; 87:264-66.

25. Odensvick K. Pharmakicinetics of Flunixin and its effect on prostaglandin F2alpha metabolite concentrations after oral and intravenous administration in heifers. J Vet Pharmacol Therapeut 1995; 18:254-59.

26. Odensvick K, Gustafsson H. Effect of Flunixin during asynchronous embryo transfer in the heifer. Anim Reprod Sci 1994; 36:13-24.

27. Mejia VO, Zarco QL, Rojas MS, Rosas GM, Valencia MJ. Efecto del líquido folicular equino y la somatotropina bovina en la sobrevivencia de embriones ovinos transferidos asincrónicamente. Vet Méx 1998; 29:359-67.

28. Godkin JD, Bazer FW, Thatcher WW, Roberts RM. Proteins released by cultured day 15-16 conceptuses prolong luteal maintenance when introduced into the uterine lumen of cyclic ewes. J Reprod Fertil 1984; 71:57-64.

29. Lawson RAS, Parr RA, Cahill LP. Evidence for maternal control of blastocyst growth after asynchronous transfer of embryos to the uterus of the ewe. J Reprod Fertil 1983; 67:477-83.

30. Aké-López JR, Alfaro-Gamboa ME, Medina-Zaldivar M, Holy L. Porcentajes de preñez en hembras bovinas receptoras de embriones en el trópico. Agrociencia 1998; 32:165-8.

31. Novelo-Ayuso EA. Efecto de dos tipos de hormonas sobre la respuesta superovulatoria, y de la sincronía del estro entre la receptoras y las donadoras sobre el porcentaje de gestación de ovejas Pelibuey bajo condiciones de trópico. Tesis de licenciatura. Mérida, Yuc. México: Universidad Autónoma de Yucatán FMVZ; 1999.

32. Collier JR; Doelger GS; Head HH; Thatcher WW, Wilcox JC. Effects of heat stress during pregnancy on maternal hormone concentrations, calf birth weight and postpartum milk yield of Holstein cows. J Anim Sci 1982; 54:309-19.

33. Drost M, Thatcher WW. Reducing embryo death in cattle. Proceedings of bovine short curse. American College of Theriogenologist and Society for Theriogenology; 1995. p. 133-140.

34. Rodríguez RO. Manejo reproductivo. En Castellanos Ruelas AF. y Arellano Sota C. (editores.) Tecnologías para la producción de ovejas tropicales. México: FAO; 1989. p. 51-63.