2008, Número 3
Injerto vascular de aponeurosis con peritoneo en perros
García-Graz NJ, Galindo-Ibarra JL, García-Soto G, Mejía-Arreguín H, Trejo-Suárez J, Ramírez-Salas MÁ
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 23
Paginas: 235-239
Archivo PDF: 102.18 Kb.
RESUMEN
Introducción: Los autoinjertos vasculares más utilizados son los de venas o arterias, sin embargo, en grandes vasos sólo se pueden emplear injertos sintéticos, los cuales poseen la desventaja de ser más trombogénicos. Nos propusimos evaluar la factibilidad y viabilidad de un injerto vascular autólogo en aorta, utilizando un modelo animal experimental.
Material y métodos: Se incluyeron siete perros. Bajo anestesia se abordó cavidad abdominal, se obtuvo una lámina de 6 cm2 de tejido formado por peritoneo parietal y aponeurosis posterior del músculo recto anterior, con la cual se construyó un injerto tubular de 4 cm de largo; la parte interna la constituía el peritoneo. Seccionando una porción de 2 cm de la aorta, se realizó anastomosis término-terminal y se colocaron tres anillos de seda alrededor del injerto. No se presentaron problemas técnicos en la construcción del injerto. Los animales fueron observados por siete semanas para valorar clínicamente la viabilidad mediante datos de insuficiencia arterial.
Resultados: Ningún animal presentó evidencia clínica de insuficiencia vascular y la aortografía no mostró defectos de opacificación. Los animales fueron sacrificados para extirpar el injerto en busca de oclusión o aneurismas. Al seccionar los injertos, se encontraron permeables.
Conclusiones: Este injerto es de fácil construcción, resistente al flujo de la aorta, presenta buena permeabilidad y baja trombogenicidad, por lo que podría ser útil en diversos tipos de cirugía vascular. Son necesarias más investigaciones para determinar permeabilidad y cambios morfológicos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
1. Turcotte JG, Campell DA, Dafoe DC, Behrendt DM, Kirsh MM, Marks WH. Transplante. En: David CS, ed. Principios de Cirugía. México: McGraw-Hill;1991. p. 261
2. Hughes CW. Arterial repair during the Korean war. Ann Surg 1958;147:555-561.
3. Thomas JH, Pierce GE, Iliopoulos JI, Hemreeck AS. Selección de injertos vasculares. Clin Quir Norteam 1988;4:937-947.
4. Pötzsch B, Grulich-Henn J, Rössing R, Wille D, Müller-Berghaus G. Identification of endothelial and mesothelial cell in human omental tissue and in omentum-derived cultured cells by specific cell markers. Lab Invest 1990;63:841-852.
5. Whitaker D, Papadimitriou JM, Walters MN. The mesothelium: its fibrinolytic properties. J Pathol 1992;136:291-296.
6. Van Hinsbergh VW, Kooistra T, Scheffer MA, van Bockel JH, van Muijen GN. Characterization and fibrinolytic properties of human omental tissue mesothelial cells: comparison with endothelial cells. Blood 1990;75:1490-1497.
7. Pronk A, de Groot PG, Hoynck van Papendrecht AA, Verbrugh HA, Leguit P, van Vroonhoven TJ, et al. Thrombogenicity and procoagulant activity of human mesothelial cells. Arterioscler Thromb 1992;12:1428-1436.
8. Hoenig MR, Campbell GR, Rolfe BE, Campbell JH. Tissue-engineered blood vessels. Alternative to autologous grafts? ATVB 2005;25:1128-1144.
9. Sterpetti AV, Hunter WJ, Schultz RD. Seeding with endothelial cells derived from the microvessels of the omentum and from the jugular vein: a comparative study. J Vasc Surg 1988;7:677-683.
10. Sitter T, Toet K, Fricke H, Schiffl H, Held E, Kooistra T. Modulation of procoagulant and fibrinolytic system components of mesothelial cells by inflammatory mediators. Am J Physiol 1996;271:1256-1263.
11. Richardson JV, Wright CB, Creighton BW, Hiratzka LF. The role of endothelium in the patency of small venous substitutes. J Surg Res 1980;28:556-562.
12. Vipond MN, Whawell SA, Thompson JN, Dudley HA. Peritoneal fibrinolytic activity and intra-abdominal adhesions. Lancet 1990;335:1120-1122.
13. Hernando A, García-Honduvilla N, Bellon JM, Bujan J, Navlet J. Coating for vascular prostheses: mesothelial cells express specific markers for muscle cells and have biological activity similar to that of endothelial cells. Eur J Vasc Surg 1994;8:531-536.
Sparks SR, Tripathy U, Broudy A, Bergan JJ, Kumins NH, Owens EL. Small-caliber mesothelial cell-layered polytetrafluoroethylene vascular grafts in New Zealand white rabbits. Ann Vasc Surg 2002;16:73-76.
15. Campbell JH, Efendy JL, Campbell GR. Novel vascular graft grown within recipient’s own peritoneal cavity. Circ Res 1999;85:1173-1178.
16. Cekirdekci A, Bayar MK, Yilmaz S, Cihangiroglu M, Ayan E, Duran M, et al. Reconstruction of vena cava with the peritoneum: the effect of temporary distal arteriovenous fistula on patency. Eur J Vas Endovasc Surg 2004;27:84-88.
17. Chin PT, Gallagher PJ, Stephen MS. Inferior vena cava resection with autogenous peritoneo-fascial patch graft cava repair: a new technique. Austr NZ J Surg 1999;69:391-392.
18. Akimura K, Onda M, Tajiri T, Yoshida H, Yokomoro S, Mamada Y, et al. Middle hepatic vein reconstruction using a peritoneal match: report of a case. Surg Today 2002;32:75-77.
19. Ribbe EB, Alm P, Hallberg E, Norgren LE. Evaluation of peritoneal tube grafts in the inferior vena cava of the pig. Br J Surg 1988;75:357-360.
20. Gardner E, Gray DJ, O’Rahilly R. Anatomía. 2a. ed. México: Salvat;1978.
21. Pacholewicz JK, Daloisio C, Shawarby OA, Dharan SM, Gu J, McGrath LB. Efficacy of autologous peritoneum as a biological membrane in cardiac surgery. Eur J Cardiothorac Surg 1994;8:563-565.
22. Kobori L, Dallos G, Gouw AS, Nemeth T, Nemes B, Fehervari L, et al. Experimental autologous substitute vascular graft for transplantation surgery. Acta Vet Hung 2000;48:355-360.
23. Kobori L, Doros A, Németh T, Fazakas J, Nemes B, Slooff MJ, et al. The use of autologous rectus facia sheath for replacement of inferior cava vein defect in orthotopic liver transplantation. Transpl Int 2005;18:1376-1377.