1998, Número 4
Glutatión sanguíneo en gallinas ponedoras que consumieron diferentes pigmentos naturales y sudanes
López CM, Rocha HAE, Zentella de PM, Ávila GE, Arrieta AJM
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 36
Paginas: 323-328
Archivo PDF: 556.82 Kb.
RESUMEN
El objetivo de este trabajo fue medir la reserva de glutatión total (GT), glutatión reducido (GSH) y de glutatión oxidado (GSSG) sanguíneos, así como el color de la yema de huevo en gallinas tipo Leghorn (Dekalb Delta) de 59 semanas de edad. Los tratamientos por triplicado que se administraron durante 8 semanas fueron: Grupo I, alimento sin pigmento; grupo II, nueve ppm de xantofilas naturales amarillas (xna) de la flor de cempasuchil; grupo III, nueve ppM de xna + 4 ppm de xantofilas naturales rojas (xnr) de los frutos de cápsicum; grupo IV, nueve ppm de xnr + 2 ppm de xantofilas sintéticas rojas (xsr); y grupo V, nueve ppm de xna + 9 ppm de sudanes rojos. Las aves fueron asignadas al azar a 15 grupos con 12 gallinas cada uno, alojadas en jaula. Semanalmente se midió el GT mediante espectrometría, y sólo en la semana 8 el GSH y el GSSG mediante cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC). La coloración de la yema de huevo se midió en el total de huevos producidos el día 35 de experimentación mediante un abanico colorimétrico y con un colorímetro de reflectancia. El color obtenido con el abanico Roche fue de: 1.0, 3.8, 10.4, 10.7 y 13.9 para los cinco grupos, respectivamente. No se observaron diferencias (P›0.05) en los parámetros productivos: consumo de alimento/ave/día, porcentaje de postura, conversión alimenticia y peso del huevo. Se observó diferencia significativa (P‹0.05) en el GT sanguíneo del grupo I (1.19 µmolas/ml), respecto del resto de los grupos (2.37, 1.95, 2.11 y 2.55 µmolas/ml, respectivamente) en la primera semana de experimentación. En la semana 8, el GSSG sanguíneo fue significativamente mayor en los grupos I y IV (10 y 12 nmolas/ml), comparado con los grupos II y III (7 y 9 nmolas/ml, respectivamente), y altamente significativo (P‹0.01) respecto del grupo V (5 nmolas/ml). En GSH no hubo diferencias entre tratamientos. Se concluye que el sudan se elimina a través de la yema de huevo y que no existió una relación clara entre los cambios en los niveles de glutatión y el consumo de algunos pigmentos en gallinas ponedoras.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Morales BE, Ávila GE, Shimada MA. Efecto de niveles elevados de vitamina A en dietas de finalización sobre el comportamiento y la pigmentación del pollo de engorda. Téc Pecu Méx 1997;2:87-92.
De Blas BC, Mateos GG. Nutrición y alimentación de gallinas ponedoras. Barcelona, España: Aedos, 1991.
Tirado AFJ. Efecto pigmentante de las xantefilas en el pollo de engorda. Síntesis Avic 1990;3:28-35.
Williams WD. Origin and impact of color of consumer preference for food. Poultry Sci 1992;71:744-746.
Arce MJ, Vázquez PC, López CC, Avila GE. Xantofilas en dietas para pollos de engorda. Síntesis Avic 1990;6:16-18.
Necoechea RR, Márquez ML. Manual de aditivos y suplementos para la producción animal. México (DF): Manual Agrario, 1987.
North MO. Manual de producción avícola. México (DF): El Manual Moderno, 1986.
Ávila GE, Shimada SA, Llamas LG. Anabólicos y aditivos en la producción pecuaria. México (DF): Consultores en Producción Animal, 1990.
Cuca GM, Ávila GE, Pró MA. La alimentación de la aves. Montecillos, Edo. de México: Colegio de Postgraduados, 1990.
Merck Index. An encyclopedia of chemicals, drug and biologicals. 10th ed. Rahway (NJ): Merck & Co. Inc., 1993.
Secretaría de Salud. Ley general de salud. 5a ed. México (DF): Porrúa, 1987.
Jacobs MB. The chemical analysis of food and food products. 3rd ed. Princeton (NJ): Van Nostrand, 1965.
Secretaría de Salud. Reglamento de la Ley Federal de Salud en materia de control sanitario de actividades, establecimientos, productos y servicios. Diario Oficial de la Federación del 18 de enero de 1988.
Krinsky NI, Deneke SM. Interaction of oxygen and oxyradicals with carotenoids. J Natl Cancer Inst 1982;69:205-209.
Marusich WL, Bavernfeind ChJ. Carotenoids as colorants and vitamin A precursors: technological and nutritional applications. New York: Academic Press, 1981.
Peng BL, Nagao A, Terao J, Tanaka K, Suzuki T, Takama K. Antioxidant activity of xantophyll on peroxil radicalmediated phospholipid peroxidation. Acta Biochem Biophys 1992;1126:178-184.
Marchand LL, Yoshizawa CN, Kofonel LN, Hankin JH, Goodman MT. Vegetable consumption and lung cancer risk: a population based case-control study in Hawaii. J Natl Cancer Inst 1990;82:282-284.
Micozzi MS, Beecher GR, Taylor PR, Kachik F. Carotenoids analyses of selected raw and cooked food associated with a lower risk for cancer. J Natl Cancer Inst 1990;82:280-282.
Akerboom TPM. Assay of glutathione disulfide and glutathione mixed disulfide in biological samples. Met Enzymol 1981;77:372-382.
Winkler SB, Orselli MS, Rex ST. The redox couple between glutathione and ascorbic acid: a chemical and physiological perspective. Free Rad Biol Med 1994;17:333-349.
Anderson EM. Glutathione and glutathione delivery compounds. In: Sies H, editor. Advances in pharmacology. Vol 38. San Diego (CA): Academic Press, 1997:65-78.
Williamson WD, Boettcher B, Meisteer A. Intracellular cysteine delivery system that protects against toxicity by promoting glutathione synthesis. Proc Nat Acad Sci 1987;79:6246-6247.
Fujita T, Yamamoto T, Tabata M, Veno T, Fujimoto Y. Defects of reduced glutathione and cysteine on prostaglandine synthesis in rabbit kidney medulla slices. Biochem Physiol 1986;83:29-31.
Sen ChK. Nutritional biochemistry of cellular glutathione. J Nutr Biochem 1997;8:660-672.
Miyasaky S. Effect of chemicals on glutathione peroxidase of chick liver. Res Vet Sci 1991,51:120-122.
Miyazaky S, Motoi Y. Tissue distrihution of monomeric glutathione peroxidase in broiler chicks. Res Vet Sci 1992;53:47-51.
Richie JP, Abraham P, Leutzinger Y. Long-term stability of blood glutathione and cysteine in humans. Clin Chem 1996;42:1100-1105.
National Research Council. Nutrient requirements of poultry. 8th ed. Washington (DC): National Academy Press, 1994.
Asensi M, Sastre J, Pallardó FV, De la Garcia A J, Estrela JM, Vina J. A high performance liquid chromatography method for measurement of oxidized glutathione. Anal Biochem 1994;217:323-338.
Snedecor WG, Cochran GW. Statistical methods. 6th ed. Ames (IO): The Iowa State University Press, 1971.
Enkvetchakul B, Anthony NB, Bottje WG. Liver and blood glutathione in male broiler chickens, turkeys and quail. Poultry Sci 1995;74:885-889.
White CA, Thannickal VJ, Fanburg BL. Glutathione deficiency in human disease. J Nutr Biochem 1994;5:218-226.
Enkvetchakul B, Bottje WG. Influence of diethyl maleate and cysteine on tissue glutathione and growth in broiler chickens. Poultry Sci 1995;74:864-873.
Beutler E. Nutritional and metabolic aspects of glutathione. Ann Rev 1989;9:287-302.
Halliwell B. Oxidants and human disease: some new concepts. FASEB J 1987;1:348.352.
Ziengler DM. Role of reversible oxidation-reduction of enzyme thiols-disulfides in mctabolic regulation. Ann Rev Biochem 1985;54:305-329.