medigraphic.com
ISSN 1027-2852 (Digital)
ISSN 0864-4551 (Impreso)

2022, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Biotecnol Apl 2022; 39 (2)


Detección e identificación molecular de patógenos transmitidos por garrapatas en Equus caballus y garrapatas del occidente de Cuba

Díaz-Sánchez AA, Corona-González B, Chilton NB, Lobo-Rivero E, Vega-Cañizares E, Yrurzun EC, Cabezas-Cruz A, Fonseca-Rodríguez O, Roblejo-Arias L, Marrero-Perera R, da Fonseca AH, Massard CL, Pires MS, del Castillo DSL

Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 37
Paginas: 2501-2505
Archivo PDF: 359.42 Kb.


RESUMEN

Babesia caballi, Theileria equi y varias especies de rickettsias son agentes de enfermedades transmitidas por vectores que afectan a los equinos. El objetivo del presente estudio fue detectar infecciones por B. caballi y T. equi en caballos e identificar rickettsias en caballos y garrapatas en la región occidental de Cuba. Se estandarizaron 2 ensayos de nPCR para la detección de B. caballi y T. equi. Se colectaron muestras de sangre de caballos, y garrapatas. Se realizó identificación por frotis sanguíneo y detección e identificación molecular de B. caballi, T. equi y Rickettsia sp. Se observaron formaciones intraeritrocíticas compatibles con B. caballi y T. equi. El nPCR mostró que el 25 % de las muestras fueron positivas para B. caballi, 73 % para T. equi y 20 % mostraron coinfección. Los resultados se confirmaron con la secuenciación parcial de los genes bc48 (B. caballi) y ema-1 (T. equi). La secuenciación del gen 18S de ARNr de T. equi demostró la presencia de al menos 2 genotipos de aislados de T. equi en Cuba. El ensayo de PCR en tiempo real y la secuenciación revelaron la presencia de Rickettsia amblyommatis en A. mixtum y Rickettsia felis en D. nitens. Como conclusiones estos resultados constituyen la primera evidencia molecular de B. caballi y T. equi en equinos y el primer reporte de R. felis en D. nitens en Cuba, lo que amplía el conocimiento sobre la distribución de patógenos y el espectro de vectores potenciales contribuyendo al fortalecimiento de los programas de manejo y control.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Scoles GA, Ueti MW. Vector ecology of equine piroplasmosis. Annu Rev Entomol. 2015;60:561-80.

  2. Salabarria FF, Godshaev A, Ferrer J, Jimenez T, Villalba G, Jorge J. Babesia equi and Babesia caballi in zebras. Morphological and serological diagnosis. Rev Cubana Cienc Vet. 1982;12:171-6.

  3. Battsetseg B, Xuan X, Ikadai H, BautistaJLR, Byambaa B, Boldbaatar D, et al.Detection of Babesia caballi and Babesiaequi in Dermacentor nuttalli adult ticks. IntJ Parasitol. 2001;31:384-6.

  4. Rampersad J, Cesar E, Campbell MD,Samlal M, Ammons D. A field evaluationof PCR for the routine detection ofBabesia equi in horses. Vet Parasitol.2003;114:81-7.

  5. Baptista C, Lopes MS, Tavares AC, RojerH, Kappmeyer L, Mendonca D, et al. Diagnosisof Theileria equi infections in horsesin the Azores using cELISA and nested PCR.Ticks Tick Borne Dis. 2013;4:242-5.

  6. Ayala Valdovinos MA, Lemus FloresC, Galindo García J, Banuelos Pineda J,Rodríguez Carpena JG, Sanchez Chipres D,et al. Diagnosis and prevalence of Theileriaequi horses in western Mexico by nestedPCR. Parasitol Int. 2016;66:821-4.

  7. Noda AA, Rodríguez I, Miranda J, MattarS, Cabezas Cruz A. First report of spottedfever group Rickettsia in Cuba. Ticks TickBorne Dis. 2016;7:1057-8.

  8. Corona BG, Díaz Sánchez AA, Meli ML,Cañizares EV, Arias LR, Dorta YL, et al.Occurrence of tickborne pathogens in straydogs from Havana, Cuba. Acta BiomedicaScientifica. 2018;3:158-9.

  9. Díaz Sánchez AA, Fonseca Rodríguez O,Castillo Domínguez S, López Dorta Y, LoboRivero E, Corona González B, et al. Hematologicalalterations found in horses (Equuscaballus) infected with Babesia caballi andTheileria equi. Rev Salud Anim. 2018;40:1.ISSN: 2224-4667.

  10. OIE TM. Equine piroplasmosis. NB:Version adopted by the World Assemblyof Delegates of the OIE. 2014.

  11. Barros Battesti DM, HernándezMR, Famadas KM, Onofrio VC, BeatiL, Guglielmone AA. The ixodid ticks(Acari: Ixodidae) of Cuba. Syst Appl Acarol.2009;14(2):101-28.

  12. Hervada VX, Santiago PM, Vázquez FE,Castillo SC, Loyola EE, Silva ALC. Epidat3.0 programa para análisis epidemiológicode datos tabulados. Rev Esp Salud Públ.2004;78(2):277-80.

  13. Di Rienzo JA, Casanoves F, BalzariniMG, Gonzalez L, Tablada M, Robledo CW.InfoStat, versión 24-03-2011 [programade cómputo]. Córdoba, Argentina: UniversidadNacional de Córdoba; 2011 [cited2020 Oct 16]. Available from: http://www.infostat.com.ar

  14. Díaz Sánchez AA, Sandes M, YrurzunC, Vega Cañizares E, Castillo DomínguezS, Cabezas Cruz A, et al. First molecularevidence of Babesia caballi and Theileriaequi infections in horses in Cuba. ParasitolRes. 2018;117:3109-18.

  15. Liu Q, Zhao JL, Zhou YQ, Liu EY,Yao BA, Fu Y. Study on some molecularcharacterization of Babesia orientalis. VetParasitol. 2005;130:191-8.

  16. Kumar S, Stecher G, Tamura K.MEGA7: Molecular Evolutionary GeneticsAnalysis version 7.0 for bigger datasets.Mol Biol Evol. 2016;33:1870-4.

  17. Altschul SF, Gish W, Miller W, Myers EW,Lipman DJ. Basic local alignment searchtool. J Mol Biol. 1990;215:403-10.

  18. Larkin MA, Blackshields G, Brown NP,Chenna R, McGettigan PA, McWilliam H,et al. Clustal W and Clustal X version 2.0.Bioinformatics. 2007;23:2947-8.

  19. Tamura K, Nei M. Estimation of thenumber of nucleotide substitutions in thecontrol region of mitochondrial DNA inhumans and chimpanzees. Mol Biol Evol.1993;10:512-26.

  20. Díaz Sánchez AA, Chilton NB, RoblejoArias L, Fonseca Rodríguez O, MarreroPerera R, Diyes ChP, et al. Moleculardetection and identification of spottedfever group rickettsiae in ticks collectedfrom horses in Cuba. Med Vet Entomol.2020;35(2):207-12.

  21. Nava S, Venzal JM, González AcuñaD, Martins TF, Guglielmone AA. Chapter2 - Genera and Species of Ixodidae. In:Nava S, Venzal JM, González-Acuña D,Martins TF, Guglielmone AA, editors. Ticksof the Southern Cone of America. London:Academic Press. 2017. p. 25-267.

  22. Jiang J, Stromdah, EY, Richards AL.Detection of Rickettsia parkeri and CandidatusRickettsia andeanae in Amblyommamaculatum Gulf Coast ticks collected fromhumans in the United States. Vector-BorneZoonotic Dis. 2012;12:175-82.

  23. Labruna MB, Whitworth T, Horta MC,Bouyer DH, McBride JW, Pinter A, et al.Rickettsia species infecting Amblyommacooperi ticks from an area in the state ofSão Paulo, Brazil, where Brazilian spottedfever is endemic. J Clin Microbiol.2004;42:90-8.

  24. Kang SW, Doan HT, Choe SE, NohJH, Yoo MS, Reddy KE, et al. Molecularinvestigation of tick-borne pathogens inticks from grazing cattle in Korea. ParasitolInt. 2013;62:276-82.

  25. Braga M, Costa FN, Gomes DRM,Xavier DR, Andre MR, Goncalves LR, etal. Genetic diversity of piroplasmids speciesin equids from island of Sao Luis,northeastern Brazil. Rev Bras Parasitol Vet.2017;26:331-9.

  26. Munkhjargal T, Sivakumar T, BattsetsegB, Nyamjargal T, Aboulaila M, PurevtserenB, et al. Prevalence and genetic diversity ofequine piroplasms in Tov province, Mongolia.Infec Genet Evol. 2013;16:178-85.

  27. Peckle M, Pires MS, Dos Santos TM,Roier EC, da Silva CB, Vilela JA, et al.Molecular epidemiology of Theileria equi inhorses and their association with possibletick vectors in the state of Rio de Janeiro,Brazil. Parasitol Res. 2013;112:2017-25.

  28. Sumbria D, Moudgil AD, Singla LD.Equine Piroplasmosis: Current status.Veterinaria. 2014;1:9-14.

  29. Bhoora R, Franssen L, ClosthuizenMC, Guthrie AJ, Zweygarth E, PenzhornBL, et al. Sequence heterogeneity in the18S rRNA gene within Theileria equi andBabesia caballi from horses in South Africa.Vet Parasitol. 2009;159:112-20.

  30. Qablan MA, Obornik M, PetrzelkovaKJ, Sloboda M, Shudiefat MF, Horin P,et al. Infections by Babesia caballi andTheileria equi in Jordanian equids: epidemiologyand genetic diversity. Parasitol.2013;140:1096-103.

  31. Chitimia-Dobler L, Schaper S, MansfeldP, Gonschorrek J, Bröker M, Nava S.Detection of Amblyomma mixtum (Acari:Ixodidae) in Germany on a human travelerreturning from Cuba. J Med Entomol.2020;57:962-4.

  32. Apperson CS, Engber B, NicholsonWL, Mead DG, Engel J, Yabsley MJ, et al.Tick-borne diseases in North Carolina: Is“Rickettsia amblyommii” a possible causeof rickettsiosis reported as Rocky Mountainspotted fever? Vector-Borne Zoonotic Dis.2008;8:597-606.

  33. Billeter SA, Blanton HL, Little SE, LevyMG, Breitschwerdt EB. Detection of “Rickettsiaamblyommii” in association with atick bite rash. Vector-Borne Zoonotic Dis.2007;7:607-10.

  34. Walker DH, Valbuena GA, OlanoJP. Pathogenic mechanisms of diseasescaused by Rickettsia. Ann New York AcadSci. 2003;990:1-11.

  35. Znazen A, Sellami H, Elleuch E,Hattab Z, Ben Sassi L, Khrouf F, et al.Comparison of two quantitative real timePCR assays for Rickettsia detection in patientsfrom Tunisia. PLOS Negl Trop Dis.2015;9:e0003487.

  36. Dantas-Torres F. Biology and ecology ofthe brown dog tick, Rhipicephalus sanguineus.Parasit Vectors. 2010;3:26.

  37. Medrano Bugarini RA, Figueroa MillánJV, Rivera Chavira BE, Lira Amaya JJ,Rodríguez Alarcón CA, Beristain Ruiz DM,et al. Detection of Theileria equi, Babesiacaballi, and Anaplasma phagocytophilumDNA in soft ticks and horses at CiudadJuarez, Mexico. Southwest Entomol. 2019;44:647-58.




2020     |     www.medigraphic.com