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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2022, Número 2

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Rev Cubana Plant Med 2022; 27 (2)


Evaluación de la actividad angiogénica y embriotóxico del extracto de Anadenanthera peregrina (angico-do-Cerrado)

Augusto MT, Alves GR, Silva NP, de Souza LJR, de Melo RPR, Rodrigues FMM, Silva JNJ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 32
Paginas:
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RESUMEN

Introducción: El género Anadenanthera ha sido reportado en la literatura con efecto antioxidante, antiinflamatorio, antimicrobiano y acción curativa en el tratamiento de heridas.
Objetivo: Evaluar las actividades angiogénicas y embriotóxicas in vivo del extracto de Anadenanthera peregrina (angico-do-cerrado).
Métodos: Se recolectó e identificó material vegetal. Posteriormente se preparó el extracto de corteza de Anadenanthera peregrina. Los experimentos realizados fueron angiogénesis en la membrana corioalantoidea de huevos de gallina embrionados y embriotoxicidad en el ensayo de pez cebra. Los datos de actividad angiogénica y embriotoxicidad se analizaron utilizando SPSS versión 24.0 y GraphPadPrism versión 7.0.
Resultados: Con respecto a la angiogénesis, se observó una diferencia estadísticamente significativa (valor p<0,001) entre los grupos de prueba y control para todos los parámetros analizados. El extracto de Anadenanthera peregrina a las concentraciones EX2 (62 mg/ml) y EX3 (124 mg/ml) fueron angiogénicos en comparación con el control de inhibición e inducción. Para la embriotoxicidad, la tasa de mortalidad aumentó con el aumento de la concentración y se observó un aumento de la dosis y la embriotoxicidad dependiente del tiempo. La concentración letal (CL50) varió de 0,331 mg/ml durante el periodo de 24 hpf a 0,007 mg/ml a 168 hpf (Δ%=-97,9), disminuyendo con el aumento de la exposición (valor p=0,001). La frecuencia cardíaca disminuyó progresiva y significativamente con el aumento de la concentración en todos los tiempos de exposición probados. En comparación con el control, presentó una baja tasa de eclosión y ninguna eclosión de la concentración de 0,0605 mg/mL para todos los periodos.
Conclusiones: Se evidenció que el extracto de Anadenanthera peregrina tiene actividad angiogénica como se describe para el uso popular en la curación de heridas. No obstante, se observaron efectos embriotóxicos a altas concentraciones.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. World Health Organization. WHO global report on traditional and complementary medicine. WHO. 2019 [acceso: 05/07/2022];46(26). Disponible en: https://apps.OMS.int/iris/bitstream/handle/10665/312342/9789241515436-eng.pdf?ua=1

  2. Cerqueira TM, Correia AC, Santos RV, Lemos RP, Silva SA, Barreto E. The Use of Medicinal Plants in Maceió, Northeastern Brazil: An Ethnobotanical Survey. Medicines (Basel). 2020;7(2):1-12. DOI: http://dx.doi:10.3390/medicines7020007

  3. Pessoa WS, Estevão LR, Simões RS, Barros ME, Mendonça FD, Baratella Evêncio L, Evêncio Neto J. Effects of angico extract (Anadenanthera colubrina var. cebil) in cutaneous wound healing in rats. Acta Cir Bras. 2012;27:655-670. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-86502012001000001

  4. Pessoa WS, Estevão LR, Simões RS, Mendonça FD, Evêncio Luz L, Baratella Evêncio L, et al. Fibrogenesis and epithelial coating of skin wounds in rats treated with angicoextract (Anadenanthera colubrina var. cebil). Acta Cir Bras. 2015;30:353-358. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-865020150050000007

  5. Junior OC, Lima NM, Silva MG, Aguiar VB, Carli GP, Scherrer EC, et al. In vitro and in vivo evaluation of anti-inflammatory activity and free radical scavenging potential of leaves extract from Anadenanthera colubrina. Nat Prod Res. 2021;35(22):4819-4823. DOI: https://doi.org/10.1080/14786419.2020.1727472

  6. Gama AD, De Paula M, Da Silva RR, Ferreira Júnior WS, Medeiros PM. Exotic species as models to understand biocultural adaptation: Challenges to mainstream views of human-nature relations. PLoS ONE. 2018;13:1-18. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.019609

  7. Mota GS, Sartori CJ, Miranda I, Quilhó T, Mori FA, Pereira H. Bark anatomy, chemical composition and ethanol-water extract composition of Anadenanthera peregrina and Anadenanthera colubrina. PLoS One. 2017;12(12):1-14. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0189263

  8. Monika P, Chandraprabha MN, Rangarajan A, Waiker PV, Chidambara Murthy KN. Challenges in Healing Wound: Role of Complementary and Alternative Medicine. Front Nutr. 2022;8:1-13. DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2021.791899

  9. Jayasinghe CD, Jayawardena UA. Toxicity Assessment of Herbal Medicine Using Zebrafish Embryos: A Systematic Review. Evid Based Complement Alternat Med. 2019;1-17. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/7272808

  10. Thiagarajan SK, Rama Krishnan K, Ei T, Husna Shafie N, Arapoc DJ, Bahari H. Evaluation of the Effect of Aqueous momordica charantia Linn. Extract on Zebrafish Embryo Model through Acute Toxicity Assay Assessment. Evid Based Complement Alternat Med. 2019;1-9. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/9152757

  11. Niemistö A, Dunmire V, Yli-Harja O, Zhang W, Shmulevich I. Robust Quantification of in vitro Angiogenesis Through Image Analysis. IEE Trans Med Imaging. 2005;24:549-553. DOI: https://doi.org/10.1109/tmi.2004.837339

  12. Nagel R. DarT: the embryo test with the zebrafish Danio rerio - a general model in ecotoxicology and toxicology. ALTEX. 2002 [acceso: 05/07/2022];19:38-48. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12096329/

  13. Razali NM, Wah YB. Power comparisons of Shapiro-Wilk, Kolmogorov-Smirnov, Lilliefors and Anderson-Darling tests. J Stat Model Analytics. 2011;2:21-33.

  14. Kruskal WH, Wallis A. Use of ranks in one-criterion variance analysis. J Am Stat Assoc. 1952;47:583-621. DOI: https://doi.org/10.2307/228077

  15. Dunn OJ. Multiple comparisons using rank sums. Technometrics. 1964;6:241-252. DOI: https://doi.org/10.2307/1266041

  16. Araújo ER, Oliveira DC, Soares TC, Langassner SM, Tavares JC, Silva DG. Avaliação do potencial antimicrobiano de extrato hidroalcoólico e aquoso da espécie Anadenanthera colubrina frente à bactérias gram negativa e gram positiva. Biota Amazônia. 2015;5:66-71. DOI: https://doi.org/10.18561/2179-5746/biotaamazonia.v5n3p66-71

  17. Barreto HM, Coelho KM, Ferreira JH, Dos Santos BH, De Abreu AP, Coutinho HD, et al. Enhancement of the antibiotic activity of aminoglycosides by extracts from Anadenanthera colubrine (Vell.) Brenan var. cebil against multi-drug resistant bacteria. Nat Prod Res. 2016;30:1289-1292. DOI: https://doi.org/10.1080/14786419.2015.1049177

  18. Volpato LE, Trigueiro PG, Aranha AM, Violante IM, Silva RA, Oliveira RC. Antimicrobial potential of plant extracts from the Brazilian Cerrado. Braz Dent J. 2022;33(1):96-104. DOI: https://doi.org/10.1590/0103-6440202204705

  19. Lima RD, Alves EP, Rosalen PL, Ruiz AL, Teixeira Duarte MC, Góes VF, et al. Antimicrobial and Antiproliferative Potential of Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan. Evid-Based Complementary Alter Med. 2014;1-7. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/802696

  20. Maia CM, Pasetto S, Nonaka CF, Costa EM, Murata RM. Yeast-Host Interactions: Anadenanthera colubrina Modulates Virulence Factors of C. albicans and Inflammatory Response in vitro. Front Pharmacol. 2021;12:629778. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2021.629778

  21. Santos JS, Marinho RR, Ekundi Valentim E, Rodrigues L, Yamamoto MH, Teixeira SA, et al. Beneficial effects of Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan extract on the inflammatory and nociceptive responses in rodent models. J Ethnopharmacol. 2013;148:218-222. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2013.04.012

  22. Farias DF, Cavalheiro MG, Viana MP, Queiroz VA, Rocha Bezerra LC, Vasconcelos IM, et al. Water extracts of Brazilian leguminous seeds as rich sources of larvicidal compounds against Aedes aegypti L. An Acad Bras Cienc. 2010;82:585-594. DOI: https://doi.org/10.1590/S0001-37652010000300006

  23. Lima CR, Costa Silva JH, Lyra MM, Araújo AV, Arruda VM, Dimech GS, et al. Atividade cicatrizante e estudo toxicológico pré-clínico do fitoterápico Sanativo®. Acta Farmacol Bonaerense. 2006 [acceso: 05/07/2022];25:544-549. Disponible en: http://www.latamjpharm.org/trabajos/25/4/LAJOP_25_4_1_10_F63G1173DB.pdf

  24. D’abadia PL, Bailão EF, Lino Junior RS, Oliveira MG, Silva VB, Oliveira LA, et al. Hancornia speciosa serum fraction latex stimulates the angiogenesis and extracellular matrix remodeling processes. An Acad Bras Cienc. 2020;92:2-17. DOI: https://doi.org/10.1590/0001-3765202020190107

  25. García Badillo PE, Avalos Soriano A, López Martínez J, García Gasca T, Castro Ruiz JE. Proangiogenic Effect of Affinin and an Ethanolic Extract from Heliopsis longipes Roots: ex vivo and in vivo Evidence. Molecules. 2021;26:7670. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26247670

  26. Koshak AE, Algandaby MM, Mujallid MI, Abdel Naim AB, Alhakamy NA, Fahmy UA, et al. Wound Healing Activity of Opuntia ficus-indica Fixed Oil Formulated in a Self-Nanoemulsifying Formulation. Int J Nanomedicine. 2021;16:3889-3905. DOI: https://doi.org/10.2147/IJN.S299696

  27. Alafiatayo AA, Lai KS, Syahida A, Mahmood M, Shaharuddin NA. Phytochemical Evaluation, Embryotoxicity, and Teratogenic Effects of Curcuma longa Extract on Zebrafish (Danio rerio). Evid Based Complement Alternat Med. 2019;1-10. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/3807207

  28. Chen L, Xu M, Gong Z, Zonyane S, Xu S, Makunga NP. Comparative cardio and developmental toxicity induced by the popular medicinal extract of Sutherlandia frutescens (L.) R.Br. detected using a zebrafish Tuebingen embryo model. BMC Complement Altern Med. 2018;18:1-11. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-018-2303-9

  29. Ismail HF, Hashim Z, Soon WT, Rahman NS, Zainudin AN, Majid FA. Comparative study of herbal plants on the phenolic and flavonoid content, antioxidant activities and toxicity on cells and zebrafish embryo. J Tradit Complement Med. 2017;7:452-465. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2016.12.006

  30. Khan MF, Abutaha N, Nasr FA, Alqahtani AS, Noman OM, Wadaan MA. Bitter gourd (Momordica charantia) possess developmental toxicity as revealed by screening the seeds and fruit extracts in zebrafish embryos. BMC Complement Altern Med. 2019;19:1-13. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-019-2599-0

  31. Bowley G, Kugler E, Wilkinson R, Lawrie A, van Eeden F, Chico TJA, et al. Zebrafish as a tractable model of human cardiovascular disease. Br J Pharmacol. 2022;179(5):900-917. DOI: https://doi.org/10.1111/bph.15473

  32. Ismail HF, Hashim Z, Soon WT, Ab Rahman NS, Zainudin AN, Majid FA. Comparative study of herbal plants on the phenolic and flavonoid content, antioxidant activities and toxicity on cells and zebrafish embryo. J Tradit Complement Med. 2017;7(4):452-465. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2016.12.006




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